3 avril 2026
Ici, nous montrons un protocole standard qui combine des arbres de spectrométrie de masse à plusieurs étapes avec un processus de fragmentation basé sur le liquide oral Huoxiang Zhengqi.
Une méthode de fragmentation par spectrométrie de masse à plusieurs étapes a été développée pour identifier et caractériser les constituants complexes dans le liquide oral Huoxiang Zhengqi. La spectrométrie de masse en tandem traditionnelle ne peut pas résoudre les structures composées inconnues. La spectrométrie de masse à plusieurs étapes permet une fragmentation plus profonde pour une élucidation structurelle complète.
Pour la préparation à la chromatographie liquide ultra-performante, commencez par double-cliquer sur le logiciel Xcalibur pour l’ouvrir. Cliquez sur Prêt à télécharger, puis sur Contrôle direct. Dans la fenêtre contextuelle, cliquez sur la colonne Module de pompe et définissez le pourcentage B à 50, le pourcentage C à zéro et le pourcentage D à zéro.
Cliquez sur le bouton Moteur pour passer en état marché. Cliquez sur plus d’options, réglez le débit à cinq millilitres par minute et le temps à 180 secondes dans la fenêtre contextuelle. Cliquez sur Purger, puis sur Exécuter malgré l’avertissement dans la fenêtre contextuelle.
Retournez à la fenêtre principale du logiciel et cliquez sur Vue de configuration de séquence. Cliquez sur Ouvrir pour importer le modèle modifié. Faites un clic droit sur le nom de la méthode et cliquez sur Ouvrir le fichier pour ouvrir le fichier de méthode.
Dans la fenêtre principale du logiciel, réglez le premier rapport masse/charge de 100 et le dernier rapport masse/charge de 1200. Cliquez sur Enregistrer pour enregistrer la méthode. Cliquez sur Exécuter la séquence, sélectionnez Attendez dans le système d’après séquence définie, puis cliquez sur Ok dans la fenêtre contextuelle.
Attendez que l’injection de l’échantillon soit terminée. Cliquez sur Vue feuille de route, puis cliquez sur l’icône Navigateur de qualification pour ouvrir la fenêtre du Navigateur de qualification. Cliquez sur Ouvrir, sélectionnez le fichier de données au format RAW et double-cliquez pour l’ouvrir.
Faites un clic droit sur la fenêtre chromatogramme et cliquez sur Plages. Dans la section filtre de balayage, sélectionnez ESI full MS. Et dans la section type de plot, choisissez TIC, puis cliquez sur Ok. Observez le chromatogramme ionique total affiché.
Cliquez sur le bouton de goupille dans la fenêtre du spectre de masse. Dans la fenêtre du chromatogramme, cliquez et glissez pour sélectionner une région temporelle avec la plus forte abondance relative. Observez les ions du spectre de masse correspondants et enregistrez les valeurs du rapport masse/charge.
Ouvre la fenêtre de configuration des instruments. Localiser la colonne de masse parent de N égale à deux lignes et entrer la valeur du rapport masse/charge précédemment enregistrée. Cliquez sur Enregistrer pour enregistrer la méthode.
Retournez à la vue de configuration de la séquence dans la fenêtre logicielle, modifiez le nom du fichier et cliquez sur Enregistrer pour enregistrer la séquence. Cliquez sur Exécuter la séquence, puis cliquez sur Oker dans la fenêtre contextuelle. Attendez que l’injection de l’échantillon soit terminée.
Allez dans la fenêtre du Navigateur de Qua, cliquez sur Ouvrir, sélectionnez le fichier de données RAW et double-cliquez pour l’ouvrir. Faites un clic droit sur la fenêtre chromatogramme et cliquez sur Plages. Dans la section filtre de balayage, sélectionnez ESI complet MS.In la section type de trace, choisissez TIC et cliquez sur Okay pour afficher le chromatogramme.
Dans la fenêtre du spectre de masse, cliquez sur le bouton de la goupille. Sélectionnez une région temporelle avec la plus forte abondance relative et observez les ions du spectre de masse. Notez les valeurs du rapport masse/charge pour le niveau suivant de spectrométrie de masse.
Dans la fenêtre de configuration de l’instrument, localisez la colonne de masse parent de N égal à trois rangées et entrez la valeur du rapport masse/charge précédemment enregistrée. Cliquez sur Enregistrer pour enregistrer la méthode. Comme démontré précédemment, répétez la procédure de visualisation des données pour compléter l’injection et l’analyse de l’échantillon.
Après avoir ouvert le fichier de données brut, cliquez sur le bouton poussoir dans la fenêtre du spectre de masse et observez les pics d’ions fragments changeants. Dans la fenêtre de configuration de l’instrument, allez dans la colonne Type d’acte et cliquez sur CID. Ensuite, sélectionnez PQD ou ETD pour changer le mode collision.
Dans la colonne Énergie de collision normalisée, cliquez sur 35 et changez à 50 pour ajuster l’énergie de collision. Dessinez les ions parents et les ions de fragmentation dans le logiciel de dessin, y compris la structure ionique parent, le nom du composé et la valeur du rapport masse/charge. À titre d’exemple, identifiez le fragment au rapport masse/charge 461,15, et examinez l’ion précurseur avec le rapport masse/charge de 623,21 dans le spectre de la spectrométrie de masse tandem.
Calculez la différence de masse. Analysez la fragmentation supplémentaire de l’ion intermédiaire avec un rapport masse/charge de 461,15. Pour générer un ion produit avec un rapport masse/charge de 315,09 dans le cube MS, calculez la différence de masse à partir des analyses de position de liaison et de liaison de tous les fragments.
Déduisez la structure finale du composé inconnu avec un rapport masse/charge de 623,21. Le composé inconnu avec un rapport masse/charge de 623,21 a perdu une unité hexose et a produit un ion fragment avec un rapport masse/charge de 461,15. La fragmentation par spectrométrie de masse tertiaire de l’intermédiaire a produit un néobyakangelicol avec un rapport masse/charge de 315,09 après la perte d’une unité de rhamnose.
La quadruple spectrométrie de masse de neobyakangelicol a produit un ion fragment avec un rapport masse/charge de 135,09. La structure du composé inconnu a été déduite du motif de fragmentation à plusieurs étapes. Les composés inconnus avec des rapports masse/charge de 545,41 et 365,12 ont été déduits en utilisant la même méthode de fragmentation.
Ce protocole permet une analyse détaillée et une caractérisation structurelle de composés plus inconnus dans les plantes médicinales et les médicaments brevetés chinois. Une compréhension claire de la structure centrale des principaux composants est essentielle pour une fragmentation et une analyse précises utilisant ce protocole. Cette procédure permet le développement d’une base de données de fragmentation par spectrométrie de masse à plusieurs étapes pour améliorer l’identification des composés et l’analyse comparative.
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Cet article présente une technique complète pour l'exploration structurale de composés inconnus dans les composés à base de plantes médicinales chinoises (CHCs), en mettant l'accent sur le liquide oral Huoxiang Zhengqi. La méthode exploite la spectrométrie de masse avancée, en particulier la technologie de piège à ions linéaire, afin d'obtenir une fragmentation plus poussée et une caractérisation moléculaire plus détaillée que les approches traditionnelles. Le protocole développé s'applique à l'analyse de petites molécules bioactives dans la médecine traditionnelle chinoise.
L'élucidation structurale complète de petites molécules inconnues présentes dans des mélanges herbacés complexes est essentielle pour renforcer la confiance en découverte thérapeutique dérivée de la médecine traditionnelle. L'utilisation de la spectrométrie de masse avec piège à ions linéaire permet une fragmentation plus poussée et une caractérisation moléculaire plus détaillée, soutenant directement la validation des cibles et la réduction des risques mécanistiques en phase précoce de recherche et développement. Cette approche améliore la capacité à relier les constituants bioactifs aux mécanismes pharmacologiques, éclairant ainsi les décisions portefeuille et la continuité de la recherche translationnelle.
Cette technique d'analyse structurale s'inscrit à l'interface entre la phase de découverte précoce et l'identification de composés candidats, fournissant des données moléculaires fondamentales pour les études de criblage et de recherche translationnelle ultérieures.