-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

HE

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

he_IL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biochemistry
קרינה פלואורסצנטית Live-תא הדמיה של שלמה וגטטיבי תא מחזור של חיידק חברתית גידול איטי Myxococc...
קרינה פלואורסצנטית Live-תא הדמיה של שלמה וגטטיבי תא מחזור של חיידק חברתית גידול איטי Myxococc...
JoVE Journal
Biochemistry
This content is Free Access.
JoVE Journal Biochemistry
Fluorescence Live-cell Imaging of the Complete Vegetative Cell Cycle of the Slow-growing Social Bacterium Myxococcus xanthus

קרינה פלואורסצנטית Live-תא הדמיה של שלמה וגטטיבי תא מחזור של חיידק חברתית גידול איטי Myxococcus xanthus

Full Text
10,104 Views
11:45 min
June 20, 2018

DOI: 10.3791/57860-v

Dominik Schumacher1, Lotte Søgaard-Andersen1

1Department of Ecophysiology,Max Planck Institute for Terrestrial Microbiology

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a method for fluorescence live-cell imaging of slow-growing Myxococcus xanthus cells, allowing for high spatiotemporal resolution over several generations. The technique enables the observation of key proteins involved in chromosome segregation and cell division.

Key Study Components

Area of Science

  • Bacterial cell biology
  • Fluorescence microscopy
  • Cell division mechanisms

Background

  • Bacterial cells exhibit spatial organization.
  • Understanding DNA replication and cell division is crucial in microbiology.
  • Live-cell imaging techniques enhance the study of cellular processes.
  • Myxococcus xanthus serves as a model organism for these studies.

Purpose of Study

  • To develop a method for observing slow-growing bacterial cells.
  • To monitor the dynamics of proteins related to cell division.
  • To provide insights applicable to other bacterial species.

Methods Used

  • Resuspension of Myxococcus xanthus in a specific medium.
  • Preparation of agarose pads for microscopy.
  • Time-lapse microscopy to capture cellular processes.
  • Use of fluorescent markers for enhanced visualization.

Main Results

  • Successful monitoring of live bacterial cells for over 24 hours.
  • Observation of spatiotemporal dynamics of key proteins.
  • Method demonstrated applicability to other slow-growing bacteria.
  • High-resolution imaging provided insights into cell division.

Conclusions

  • The developed method is effective for studying bacterial cell biology.
  • It allows for real-time observation of critical cellular processes.
  • This technique can be adapted for various bacterial species.

Frequently Asked Questions

What is the significance of studying Myxococcus xanthus?
Myxococcus xanthus serves as a model organism for understanding bacterial cell division and organization.
How long can cells be monitored using this method?
Cells can be monitored for at least 24 hours under the microscope.
What are the advantages of this imaging technique?
The technique does not require special equipment and allows for high-resolution imaging of live cells.
Can this method be applied to other bacteria?
Yes, it can easily be adapted for other slow-growing bacterial species.
What are fiducial markers used for in this study?
Fiducial markers help in aligning and tracking the cells during imaging.
What is the role of fluorescent proteins in this method?
Fluorescent proteins allow for the visualization of specific proteins involved in cellular processes.

תאים חיידקיים במרחב מאוד מאורגנים. כדי לבצע את הארגון הזה לאורך זמן בתאים Myxococcus xanthus גדל לאט, פותחה מלכודת קרינה פלואורסצנטית הדמיה לחיות תאים עם רזולוציה גבוהה ייתכן במשך מספר דורות. באמצעות שיטה זו, ייתכן הדינמיקה של חלבונים חשובים על כרומוזום סגרגציה ועל חלוקת התא יכול להיקבע.

שיטה זו יכולה לסייע לענות על שאלות מפתח בתחום הביולוגיה של תא חיידקים, כמו למשל כיצד תאים משכפלים את הדנ"א שלהם, כיצד הם גדלים וכיצד הם מתחלקים. היתרון העיקרי של טכניקה זו הוא שניתן לנטר תאי חיידקים חיים לפחות 24 שעות תחת המיקרוסקופ והטכניקה אינה דורשת ציוד מיוחד. למרות ששיטה זו יכולה לספק תובנה לגבי הצמיחה והחלוקה של Myxococcus xanthus, ניתן ליישם אותה בקלות גם על חיידקים אחרים שגדלים לאט.

כדי להתחיל, יש להשעות מחדש מושבת M.xanthus בודדת ב-500 מיקרוליטר של 1% CTT, בתוספת אנטיביוטיקה, בצינור סטרילי ולהעביר את כל התרחיף לבקבוק ארלנמאייר של 50 מיליליטר המכיל חמישה מיליליטר של 1% CTT. הכן תמיסת מיקרוסקופיה של 1% אגרוז המכילה 0.2% CTT על ידי ערבוב גרם אחד של אגרוז עם 80 מיליליטר של מאגר TPM ו-20 מיליליטר של 1% מדיום CTT. מיקרוגל את התמיסה עד שהאגרוז נמס.

ממלאים צלחת פטרי בכ -60 מיליליטר אגרוז מותך ונותנים לה להתקרר לטמפרטורת החדר. יש לחמם מראש את פד האגרוז בחום של 32 מעלות צלזיוס למשך 15 דקות לפחות לפני השימוש. לאחר מכן, הנח כיסוי זכוכית סטרילית על מסגרת פלסטיק או מתכת שיש לה חור באמצע, ולאחר מכן השתמש בסרט כדי לקבע את הכיסוי למסגרת.

הוסף 10 עד 20 מיקרוליטר של תאי M.xanthus שגדלו באופן אקספוננציאלי על הכיסוי. כדי להוסיף מיקרוספירות פלואורסצנטיות כסמנים נאמנים של התאים, השתמש במאגר TPM כדי לדלל את המיקרוספירות ל-1:100. יש לנער היטב את תרחיף החרוזים ולהוסיף חמישה עד 10 מיקרוליטר לתאים.

מכרית האגרוז הגדולה והמחוממת מראש, גזרו כרית קטנה בערך בגודל החלקת הכיסוי והניחו אותה על גבי התאים. לאחר מכן הנח החלקת כיסוי על גבי הכרית כדי למנוע אידוי ולשמור על תאים בסביבה לחה. דגרו את דגימת המיקרוסקופיה בטמפרטורה של 32 מעלות צלזיוס למשך 15 עד 20 דקות כדי לאפשר לתאים להיצמד לתחתית כרית האגרוז לפני הקלטות מיקרוסקופיה בזמן-lapse.

כדי לבצע מיקרוסקופיה של זמן-lapse, הפעל את המיקרוסקופ והפעל את תוכנת בקרת המיקרוסקופ. בחר את המטרה הנכונה ואת המראות והמסנן הנכונים כדי לרכוש תמונות ניגודיות פאזה וכן תמונות של חלבונים ירוקים-פלואורסצנטיים, אדומים-פלואורסצנטיים או צהובים-פלואורסצנטיים. הוסף טיפה של שמן טבילה איכותי על עדשת המטרה ולתחתית הדגימה שהודגרה מראש ב-32 מעלות צלזיוס.

כשצד החור פונה למטרה, הנח את מסגרת המתכת עם הדגימה על המיקרוסקופ stage, ולאחר מכן הדק את הדגימה היטב במחזיק הבמה. התמקדו בתאים על ידי הזזת הבמה בכיוון Z קרוב יותר למטרה. כאשר השמן על המטרה והדגימה יוצרים מגע, הזז את ה-stage בכיוון X/Y.

עבור לתוכנת Metamorph ופתח את הכלי Acquire. בחר ניגודיות פאזה ברשימה הנפתחת הגדרה והגדר את זמן החשיפה ל-100 אלפיות השנייה. לחץ על הצג בשידור חי, הכנס את התא למישור המוקד והזז את הבמה בכיוון X/Y עד שמספר תאים בודדים נראים בשדה הראייה.

ודא שלפחות מיקרוספירה פלואורסצנטית אחת נמצאת באזור הראייה כדי ליישר מאוחר יותר את התמונות שנרכשו. לאחר מכן, פתח את אשף הרכישה הרב-ממדית של תוכנת בקרת המיקרוסקופ כדי להגדיר ניסוי זמן-lapse המאפשר למיקרוסקופ לרכוש תמונות במספר אורכי גל ומיקומי במה במידת הצורך. בכרטיסייה ראשי, הפעל זמן-lapse ואורכי גל מרובים.

כרטיסיות נוספות יופיעו בצד הימני של החלון. לחץ על הכרטיסייה שמירה ובחר ספרייה כדי לבחור תיקיה ריקה בכונן הקשיח של המחשב לשמירת התמונות שנרכשו, ולאחר מכן הפעל את שם הבסיס הקבוע אם הקובץ קיים כדי לוודא שמערכי הנתונים הרצופים אינם מחליפים את הקודמים. תנו לניסוי שם עם תאריך ושם הזן או כותרת הניסוי.

לחץ על הכרטיסייה זמן-lapse כדי להתאים את פרמטרי הזמן-lapse, ולאחר מכן הגדר את מרווח הזמן ל-20 דקות והגדר את משך הזמן ל-24 שעות. מספר נקודות הזמן ישתנה באופן אוטומטי. כעת, לחץ על הכרטיסייה אורכי גל.

בחר את מספר אורכי הגל שיש להשיג עבור כל תמונה בכל נקודת זמן על-ידי שינוי המספר. בחר אפשר מיקום נפרד של מיקוד אוטומטי שנזכר בחומרה עבור כל אורך גל. לחץ על אורך גל ראשון הכרטיסייה מלמעלה.

ברשימה הנפתחת תאורה, בחר ניגודיות פאזה. בחר 100 אלפיות שנייה לחשיפה וברשימה הנפתחת רכישה, בחר בכל נקודת זמן. השבת את החשיפה האוטומטית ברשימה הנפתחת על-ידי בחירה באפשרות אף פעם ובחר כל רכישה ברשימה הנפתחת עבור פוקוס אוטומטי.

הגדר את החשיפה לכל אורך גל כפי שהודגם זה עתה באמצעות הפרמטרים הבאים. לאחר מכן, כדי להשיג תמונות ממספר עמדות במה, בכרטיסייה הראשית הפעל עמדות במה מרובות. לחץ על הכרטיסייה במה ולחץ על כפתור חי כדי להסתכל על שדה הראייה.

הזז את הבמה בכיוון X/Y עד שהחזר ROI יהיה בשדה הראייה. שמור את קואורדינטות X ו- Y בכרטיסיה שלב על-ידי לחיצה על סימן החיבור. הזז את הבמה שוב בכיוון X/Y עד למציאת החזר ROI חדש ושמור שוב את הקואורדינטות על ידי לחיצה על סימן הפלוס.

המשך עד לשמירת מספר האזורים הרצוי. בדוק פעם נוספת שהתאים נמצאים בפוקוס על ידי לחיצה על מיקומי ה-X וה-Y השונים שנשמרו והתחל את המיקוד האוטומטי של החומרה על ידי לחיצה על AFC hold כדי לשמור על מיקום Z שנשמר קבוע במהלך הניסוי. התחל את הקלטת זמן-lapse באשף הרכישה הרב-ממדית של תוכנת בקרת המיקרוסקופ על ידי לחיצה על רכוש.

בדוק שהתאים עדיין ממוקדים לאחר נקודות הזמן הראשונות בהקלטות דולג הזמן כדי למקסם את איכות התמונות ולהתמקד מחדש במידת הצורך. כדי ליצור סרטוני זמן-lapse ולבצע יישור תמונה, הפעל את תוכנת ניתוח ועיבוד התמונה. פתח/י את התמונות כערימה על-ידי לחיצה על ״סקירת נתונים רב-ממדיים״, ״בחר/י קובץ בסיס״, ״בחר/י ספריה״ ולאחר מכן פתח/י את התיקייה עם הנתונים הרב-ממדיים.

בדוק את מערך הנתונים ולחץ על תצוגה. מערך הנתונים יוצג כתמונות בודדות מנקודת הזמן הראשונה ועד הסוף. הפעילו את אורך הגל ליצירת אוסף, ולאחר מכן בחרו את כל התמונות שאמורות להיכלל באוסף ולחצו על 'טען תמונות'.

חזור על שלב זה עבור כל אורכי הגל ושמור ערימות שהושלמו. הפעל את ערימת התמונות שצריך לתקן עבור סחיפה. פתח את כלי היישור באמצעות אפליקציות, יישור אוטומטי.

סמנו את 'אוסף' כמקור לתמונות ואת 'מישור ראשון/נקודת זמן' כמישור הייחוס, ולאחר מכן בחרו באוסף בעזרת הלחצן 'אוסף מקור' ולחצו על 'החל'. לאחר השלמת היישור האוטומטי, שמור את הערימה המיושרת. כדי ליצור סרט בפורמטים MOV או AVI, פתח את צור סרט פונקציה באמצעות מחסנית, עשה סרט.

בחר את הקלטות קיטועי הזמן עם הלחצן ערימת מקור, ולאחר מכן בחר את פורמט הפלט, קצב הפריימים, מספר הפריימים ולחץ על שמור. בניסוי זמן-lapse זה עם תאים מסוג DK1622 ניידים, תמונות ניגודיות פאזה נרכשו כל חמש דקות למשך 24 שעות. כצפוי, התאים היו תנועתיים והוזזו בעיקר בקבוצות.

בהדמיית תאים חיים בניגוד פאזה עם תאי דלתא-mgIA שאינם נעים, עקבו אחר הצמיחה והחלוקה של תאים בודדים במהלך היווצרות מיקרו-מושבה. כאשר התמונות נרכשו כל חמש דקות במשך 24 שעות, ניתן היה לכמת את זמן החלוקה של 235 פלוס מינוס 50 דקות ברזולוציה של תא בודד. כדי לחקור אם תאים גדלים כרגיל תוך מעקב אחר חלבונים המסומנים ב-yfp לאורך תקופות ארוכות, עקבו אחר תאי M.xanthus המבטאים ParB-YFP.

ParB-YFP יצר בתחילה אשכול יחיד באזור התאים התת-קוטבי. זמן קצר לפני או אחרי חלוקת התא, האשכול השתכפל, כאשר אשכול אחד נשאר בקוטב התא הישן והשני עבר לקוטב התא החדש. בניסוי זה, תאים לא ניידים המבטאים FtsZ-gfp הראו הצטברות חזקה של FtsZ-gfp בתא האמצעי, מה שמכתיב את מיקום חלוקת התאים.

FtsZ-gfp יצר אשכול בתא האמצעי, בעיקר בתאים ארוכים יותר. שעתיים לאחר חלוקת התאים, FtsZ-gfp הצטבר באמצע התא בתאי הבת. לאחר שליטה בטכניקה זו ניתן לבצע באופן שגרתי על Myxococcus xanthus כמו גם על כל חיידק אחר הגדל לאט.

בעת הגדרת הליך זה עבור חיידק, חשוב להתאים את הרכב מצע הגידול בצלחת האגר כדי לעמוד בדרישות הגידול הספציפיות של אותו חיידק. עבור כל חיידק, חשוב לקבוע את תנאי ההדמיה האופטימליים כגון זמן חשיפה, עוצמת אור ותדירות הדמיה כדי למנוע פוטוטוקסיות. כמו כן, עבור כל חלבון עם תווית פלואורסצנטית, יש להתאים את תנאי ההדמיה כדי למנוע פוטוטוקסיות וגם פוטו-הלבנה.

Explore More Videos

ביוכימיה גיליון 136 Myxococcus xanthus חלוקת התא מחזור התא מיקרוסקופ זמן לשגות FtsZ כרומוזום סגרגציה ארגון-עתיים

Related Videos

הקלטה התנהגות תאיים ב Myxococcus xanthus Biofilms באמצעות זמן לשגות Microcinematography

10:59

הקלטה התנהגות תאיים ב Myxococcus xanthus Biofilms באמצעות זמן לשגות Microcinematography

Related Videos

12.7K Views

כמותי תא חי פלואורסצנטי, מיקרוסקופ ניתוח של שמרים ביקוע

06:52

כמותי תא חי פלואורסצנטי, מיקרוסקופ ניתוח של שמרים ביקוע

Related Videos

20.9K Views

הדמיית זמן-lapse פלואורסצנטית של מחזור החיים של Streptomyces venezuelae

05:46

הדמיית זמן-lapse פלואורסצנטית של מחזור החיים של Streptomyces venezuelae

Related Videos

329 Views

הכנת דגימות מיקסוקוקוס קסנתוס להדמיה של תאים חיים

03:24

הכנת דגימות מיקסוקוקוס קסנתוס להדמיה של תאים חיים

Related Videos

194 Views

לחיות תא הדמיה של אירועי autophagy מוקדמים: Omegasomes ומעבר

09:00

לחיות תא הדמיה של אירועי autophagy מוקדמים: Omegasomes ומעבר

Related Videos

19.4K Views

ויזואליזציה של תנועתיות מפרכסים אפיון תפקידו של PilG ב Fastidiosa Xylella

08:44

ויזואליזציה של תנועתיות מפרכסים אפיון תפקידו של PilG ב Fastidiosa Xylella

Related Videos

11.3K Views

זמן לשגות הדמיה הקרינה של השלם S. venezuelae מחזור החיים באמצעות מכשיר microfluidic

11:30

זמן לשגות הדמיה הקרינה של השלם S. venezuelae מחזור החיים באמצעות מכשיר microfluidic

Related Videos

14.5K Views

חיים התא מיקרוסקופ פלורסצנטיות לבחון תהליכים חיוניים במהלך צמיחת תאים מיקרוביאלי

07:28

חיים התא מיקרוסקופ פלורסצנטיות לבחון תהליכים חיוניים במהלך צמיחת תאים מיקרוביאלי

Related Videos

16.8K Views

מיקרוסקופ הקרינה הפלואורסצנטית החיה כדי לחקור את הלוקליזציה של חלבון Subcellular ושינויי מורפולוגיה של תאים בחיידקים

05:57

מיקרוסקופ הקרינה הפלואורסצנטית החיה כדי לחקור את הלוקליזציה של חלבון Subcellular ושינויי מורפולוגיה של תאים בחיידקים

Related Videos

7.9K Views

שימוש ב- Drosophila ילה S2 תאים עבור הדמיה חיה של חטיבת התא

06:17

שימוש ב- Drosophila ילה S2 תאים עבור הדמיה חיה של חטיבת התא

Related Videos

9.1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code