-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

HE

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

he_IL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
שיטת פלט גבוהה כדי לבודד קרום הלב של מוחין מהעכבר
שיטת פלט גבוהה כדי לבודד קרום הלב של מוחין מהעכבר
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
A High Output Method to Isolate Cerebral Pericytes from Mouse

שיטת פלט גבוהה כדי לבודד קרום הלב של מוחין מהעכבר

Full Text
8,999 Views
06:49 min
January 14, 2020

DOI: 10.3791/60588-v

Anupriya Mehra1, Lucie Dehouck1, Elodie Vandenhaute1, Marc Fatar2, Laurence Fenart1, Fabien Gosselet1

1Laboratory of the Blood Brain Barrier,University of Artois, 2Department of Neurology, Universitätsmedizin Mannheim,Heidelberg University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a reliable protocol for the extraction of murine cerebral pericytes, which are essential for understanding their role in neurological disorders and brain function. The method emphasizes an antibiotic-free enrichment approach that yields high purity and high cell counts, minimizing the number of experimental animals required.

Key Study Components

Research Area

  • Cerebral pericytes
  • Neurological disorders
  • In vitro cellular studies

Background

  • The significance of cerebral pericytes in brain health
  • Need for reliable cell culture methods
  • Challenges in existing extraction protocols

Methods Used

  • Antibiotic-free cell extraction
  • Murine model (C57BL/6 mouse)
  • Centrifugation, enzymatic digestion, and cell culture

Main Results

  • High purity and viability of isolated pericytes
  • Clear morphological differentiation between pericytes and endothelial cells
  • Evaluation of cell culture purity by NG2, CD146, and PDGFR beta markers

Conclusions

  • The protocol provides a dependable method for isolating and culturing murine cerebral pericytes
  • This study enhances the understanding of pericyte function in neurological contexts

Frequently Asked Questions

What are cerebral pericytes?
Cerebral pericytes are contractile cells found in the walls of capillaries in the brain, playing crucial roles in neurovascular regulation.
Why is an antibiotic-free protocol important?
An antibiotic-free protocol minimizes potential impacts on cell health and function, ensuring more physiological relevance in experimental studies.
How is cell purity assessed in this study?
Cell purity is assessed using molecular markers NG2, CD146, and PDGFR beta through quantitative PCR and immunocytochemistry.
What age of mice is used for pericyte extraction?
The protocol utilizes 4 to 6-week-old male C57BL/6 mice for optimal yields of cerebral pericytes.
How often should the culture medium be changed after isolation?
The culture medium should be changed every 48 hours after the initial seeding of the pericytes.
What is the significance of this research?
This research enhances methodologies for studying cerebral pericytes, which can lead to a better understanding of their roles in neurological health and diseases.
What are the main applications of isolated pericytes?
Isolated pericytes can be used for in vitro studies to explore their roles in vascular biology and neurological disorders.

אנחנו מציגים פרוטוקול להפקת. קרום המוח של מורציטים פרוטוקול זה הינו כלי רב ערך עבור מחקרים בלתי מתורבת המספקים טוהר גבוה ותשואה גבוהה, ובכך מקטין את מספר החיות הנסיוניות המשמשות.

לאחרונה, התפקיד של pericytes מוחית הפך ניכר הפרעות נוירולוגיות ותפקוד המוח. לכן, הפיתוח של שיטת תרבות אמינה עבור תאים אלה הוא הכרחי. הפרוטוקול שלנו להפקת pericytes מוחי מורין מייצג כלי אמין עבור מחקרים במבחנה ולספק pericytes עם טוהר גבוה ותפוקת תאים.

הדגימה של ההליך עם אנופרייה מהרה תהיה לוסי דהוק, טכנאית מהמעבדה שלי. התחל על ידי הצבת המוח מעכבר C57BL/6 זכר מסוים ללא פתוגן על גבי מגבון סטרילי יבש ללא מוך ושימוש במטלות קצה מעוגלים להסרת העצבים המוח הקטן, הסטריאטום והעורפי. השתמש ספוגית כותנה כדי להסיר את כל קרום המוח גלוי ולהפוך את רקמת המוח במהופך.

פתח את האונות עם משיכות אור כלפי חוץ ולהסיר את כל כלי הדם הנראים לעין. לאחר מכן מניחים את רקמת המוח ללא קרום המוח בצלחת פטרי 100 מילימטר המכיל 15 מיליליטר של חיץ כביסה קר B.To הומוגניזציה של הרקמה, להעביר את דגימת המוח לתוך צינור מרגמה מטחנת רקמות Dounce ולהוסיף שלושה עד ארבעה מיליליטר של חיץ כביסה B לצינור. השתמש עלה רופף כדי לטחון את הרקמה 55 פעמים, ולאחר מכן לשטוף את העלי עם חיץ כביסה B טחון תרחיף הרקמה עם עלה הדוק 25 פעמים.

בסוף ההומוגניזציה, באותה מידה aliquot תרחיף בין שני צינורות 50 מיליליטר ולהוסיף 1.5 פעמים את הנפח של קר 30% בסרום בסרום dextran. ואז במרץ לנער את הצינורות כדי לערבב את תרחיף. כדי לבודד את שבר כלי הדם, מסיסים את התאים על ידי צנטריפוגה ומעבירים את העל-טבעיים לשני צינורות חדשים.

אחסן את גלולה במאגר כביסה B על קרח. תן את הכדורים בשלושה מיליליטר של חיץ כביסה קר B על קרח. צנטריפוגה supernatants שנקטפו ולחזור על צעד זה עוד פעם אחת.

להשליך את supernatants ו resuspend את כדורי בשלושה מיליליטר של חיץ כביסה B.Then בריכה כדורי resuspended ולהביא את הנפח הסופי של ההשעיה תא במאגר ל 10 מיליליטר עם מאגר כביסה קרה טרי B.עוד לנטרל את התאים עם פיפט 10 מילימטר שש פעמים עד גושים שנותרו של כדורי גלויים ולהשתמש הרכבה מסנן ואקום ו זן רשת ניילון כדי לסנן את התא מניחים את מסננת בצלחת פטרי ולנקה את רשת עם חיץ כביסה טרי B וגירוד כדי לשחזר את כל נימים. לאחר מכן בצע סינון שני עם מסנן טרי.

מחלקים את הסינון באופן שווה בין שני צינורות ולאסוף את התאים על ידי צנטריפוגה. לאחר השלכת supernatants, בריכת כדורי לתוך צינור יחיד המכיל מאגר כביסה מראש המלחמה B עם אנזימים ולהוסיף קולגנס / Dispase מראש לצינור. מניחים את הצינור באמבט מים שולחן רועד בדיוק 33 דקות ב 37 מעלות צלזיוס לפני עצירת התגובה עם 30 מיליליטר של חיץ כביסה קר B.Collect התאים על ידי צנטריפוגה בזהירות להשליך את supernatant.

במהירות אך בזהירות resuspend את גלולה במאגר כביסה B שש פעמים צנטריפוגה ההשעיה שוב. לאחר השלכת supernatant, resuspend את גלולה ב 18 מיליליטר של מדיום DMEM מלא וזרע שני מיליליטר של השעיה התא ב DMEM מלא בתשע בארות של שלוש צלחות מטריגל מצופה שש בארות. מניחים את תרבות התאים באינקובטור סטרילי של 37 מעלות צלזיוס 5% פחמן דו חמצני במשך 24 שעות לפני הסרת הפסולת בזהירות מכל באר ומוסיפים מדיית DMEM טרייה.

לאחר 48 שעות, לשנות את המדיום בכל באר כל 48 שעות. ביום שמונים עד עשר, כשהתאים מגיעים ל-100%, מעבר התאים במדיום תרבות פריסייט אל ג'לטין חדש מצופה שש בארות ולהחזיר את התאים לאממה לתרבות התאים למשך שישה עד שבעה ימים נוספים עם ניטור. ואז לפצל את התאים שוב ביום 17 במדיום pericyte לתוך צלחות מצופות ג'לטין חדש.

ממעבר אפס למעבר 2, ישנם מאפיינים מורפולוגיים ספציפיים שבהם ניתן לזהות את תאי ה אנדותל ואת העלייה ההדרגתית הבאה של pericytes. בתרבות אפס קטע, תאים אנדותל מוארכים המתפתחים ממיקרו-אווסל נמצאים בשפע. שפע זה מצטמצם לאחר מעבר אחד ונעדר לאחר מעבר 2.

להיפך, pericytes מופיעים כתאים מרובעים נדירים בתרבויות מוקדמות ולהיות בשפע על ידי מעבר שני. הערכה של הביטוי של NG2, CD146, ו PDGFR בטא ניתן להשתמש כדי להעריך את הטוהר של תרבות pericyte על ידי PCR כמותי, אימונוציטוכימיה, כתם מערבי. עיכול האנזים הוא צעד קריטי להצלחת הפרוטוקול.

הקפד לעקוב בקפדנות אחר ריכוזי האנזימים ותזמן הדגירה.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

ביולוגיה סוגיה 155 קרום הלב של המוח הראשי בידוד עכבר דקטרן

Related Videos

בידוד ותרבית של פריציטים ראשוניים במוח: הליך לבידוד ותרבית פריציטים מנימי מוח בקר ללא זיהום בתאי אנדותל

04:21

בידוד ותרבית של פריציטים ראשוניים במוח: הליך לבידוד ותרבית פריציטים מנימי מוח בקר ללא זיהום בתאי אנדותל

Related Videos

2.8K Views

בידוד כלי דם במוח של עכבר: פרוטוקול לבידוד כלי דם שלמים מדגימת מוח מורין

04:20

בידוד כלי דם במוח של עכבר: פרוטוקול לבידוד כלי דם שלמים מדגימת מוח מורין

Related Videos

3.4K Views

טכניקה פשוטה לבידוד ותרבית אסטרוציטים מורינים

04:51

טכניקה פשוטה לבידוד ותרבית אסטרוציטים מורינים

Related Videos

805 Views

בידוד וטיפוח פריציטים מוחיים של עכברים

05:43

בידוד וטיפוח פריציטים מוחיים של עכברים

Related Videos

610 Views

בידוד ותרבות של האסטרוציטים עכבר קליפתיים

11:25

בידוד ותרבות של האסטרוציטים עכבר קליפתיים

Related Videos

94.1K Views

בידוד של תאים הראשוניים Murine מוח כלי הדם האנדותל

08:14

בידוד של תאים הראשוניים Murine מוח כלי הדם האנדותל

Related Videos

33.8K Views

טיהור של כלי מוח עכבר

07:32

טיהור של כלי מוח עכבר

Related Videos

24.7K Views

הקפאה-מקטעי רשתית, שלם-טעינות, וההכנות להערכת מבודד היפוטוניק להמחשת Immunohistochemical של Microvascular Pericytes

10:46

הקפאה-מקטעי רשתית, שלם-טעינות, וההכנות להערכת מבודד היפוטוניק להמחשת Immunohistochemical של Microvascular Pericytes

Related Videos

10.7K Views

מדידות סימולטני של סידן תאיים, פוטנציאל ממברנה אנדותל מוחי העכבר טרי מבודדת ללא פגע

09:45

מדידות סימולטני של סידן תאיים, פוטנציאל ממברנה אנדותל מוחי העכבר טרי מבודדת ללא פגע

Related Videos

8.6K Views

בידוד וטיהור של קרום הלב של מורלין

10:49

בידוד וטיהור של קרום הלב של מורלין

Related Videos

10K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code