ניתוח אופטימלי של חלבונים מביציות קסנופוס ועוברים על ידי Immunoblotting

במהלך חייו של בעל חיים, החלטות סולפטיות מתרחשות ללא הרף, המאפשרות התפתחות תקינה ובריאות אורגניזם בוגר. החלטות אלה תלויות בחלבונים ספציפיים המופנים לווסתים סולפטים. מטרת המחקר שלנו היא למצוא את המנגנונים השולטים בסינתזה של הרגולטורים הקריטיים הללו.

בנוסף למתן מתאר מפורט של ביציות ועוברים, הפרוטוקול שלנו נותן תובנה לגבי אתגרים המשותפים לאורגניזם מודל זה, כגון רכישת נוגדנים. באמצעות מחקר מעמיק של מנגנוני הקישור והדיכוי של Bicaudal C, המחקר שלנו עזר לבסס בסיס מידע שבאמצעותו ניתן להשוות מווסתים תרגומיים אחרים. כדי להתחיל בעיבוד תאים לאימונובלטינג, הוסף 10 מיקרוליטר של מאגר ליזה של תאים צוננים מדולל לריכוז חד פעמי עם מים נטולי יונים כפולים לכל עובר או ביצית.

בעזרת מיקרו-עלי, הומוגניזציה של הדגימות על קרח. הניחו את הצינורות בצנטריפוגה על ספסל וסובבו את הדגימות בטמפרטורה של 5,000 גרם בארבע מעלות צלזיוס למשך 10 דקות לפסולת גלולה, כולל חלמון ופיגמנטים בלתי מסיסים. העבירו את הסופרנטנט לצינור נקי של 1.5 מיליליטר, וודאו שהכדור לא יופרע במהלך ההעברה.

הוסף נפח שווה של מאגר דגימת Laemmli כפול בתוספת 5% משקל בנפח 2-מרקפטואתנול לסופרנטנט שנאסף. חממו את התערובת בחום של 95 עד 100 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות כדי לנטרל את החלבונים. כעת, הסר ג'ל טרומי SDS של 4 עד 12% bis-tris מאריזתו וקילף את המדבקה מתחתית הג'ל.

הכנס את הג'ל למכלול האלקטרודות מול סכר חיץ, והנח את כל המכלול למיכל אלקטרופורזה אנכי. לאחר מכן, מלאו גם את מכלול האלקטרודות וגם את תחתית המיכל במאגר ריצה Tris-MOPS-SDS. הסר בעדינות את מסרק הג'ל ואת מאגר הפיפטה הזורם לתוך הבארות כדי לסלק בועות ולאזן את המאגר.

כעת, טען חמישה מיקרוליטרים של תקני חלבון מוכתמים מראש לבאר הראשונה ו-10 מיקרוליטר מכל דגימה מוכנה לבארות הנותרות. הנח את המכסה על מיכל האלקטרופורזה וחבר אותו לאספקת חשמל. לאחר מכן, הגדר את המתח ל-200 וולט כדי להתחיל אלקטרופורזה.

הפסק את האלקטרופורזה ברגע שחזית הצבע של מאגר הדגימה יוצאת מהג'ל. לפני השלמת האלקטרופורזה, התחל להרכיב את כריך ההעברה בקליפ ההעברה. ממלאים תבנית אפייה מזכוכית במאגר העברה צונן וטובלים את כל חומרי ההעברה במאגר זה במהלך ההרכבה.

מניחים את קליפ ההעברה בצלחת כשהחצי השחור מונח על התחתית, החצי הלבן מופנה כלפי מעלה והקליפס נפתח שמאלה. הנח ספוג סיבים אחד או שניים שטוחים על החצי השחור של קליפ ההעברה. לאחר חיתוך שתי חתיכות נייר כרומטוגרפיה תאית 0.35 מילימטר לגודל, הניחו אחת על גבי הספוגים.

לאחר השלמת האלקטרופורזה, הסר את הג'ל ממיכל האלקטרופורזה. בעזרת ידית פתיחת קלטת הג'ל, יש להפריד בזהירות את צלחות הג'ל, תוך הקפדה על כך שהג'ל יישאר מחובר לצד אחד. חתוך את הבארות מהחלק העליון של הג'ל באמצעות משחרר הג'ל.

הנח את הג'ל, שעדיין מחובר למחצית קלטת הפלסטיק, על נייר הסינון, והסר את חצי הקסטה הנותרת כך שהג'ל יישאר שטוח על הנייר. לאחר מכן, חותכים חתיכה של קרום ניטרוצלולוזה של 0.45 מיקרומטר כך שיתאים למידות הג'ל. הסר את הממברנה מנייר המגן שלה, הרטיב אותה לזמן קצר במאגר העברה, והניח אותה בזהירות על גבי הג'ל.

לאחר מכן, הניחו פיסת נייר פילטר שנייה על גבי קרום הניטרוצלולוזה. בעזרת רולר, לחץ בעדינות אך בחוזקה החוצה את כל בועות האוויר. ערמו ספוג סיבים אחד או שניים נוספים על גבי נייר הסינון להשלמת הכריך.

סגור את קלטת ההעברה והצמד אותה היטב כדי לאטום את הכריך המורכב. לאחר מכן, הכנס את כריך ההעברה הסגור לליבת ההעברה כשהקליפ פונה כלפי מעלה, וודא שהצד השחור של הקליפ פונה לצד השחור של הליבה. הנח את ליבת ההעברה למיכל האלקטרופורזה.

הוסף למיכל שקית קרח ומוט ערבוב, כדי להבטיח שמוט הערבוב יכול להסתובב בחופשיות. מלאו את המיכל במאגר העברה צונן עד שהמנגנון שקוע במלואו, ואבטחו את המכסה מלמעלה. חבר את המכשיר לאספקת החשמל, התאם את צבעי האלקטרודות והגדר את התנאים ל-100 וולט למשך שעה כשמוט הערבוב מסתובב.

לאחר השלמת ההעברה, פתחו בזהירות את הקסטה ופרקו את הכריך. הסר את קרום הניטרוצלולוזה וסמן את הצד שהיה במגע עם הג'ל. לאחר מכן, הניחו את קרום הניטרוצלולוזה בכלי קטן כך שהוא ישכב שטוח על הקרקעית.

מכסים את הממברנה לחלוטין בכתם פונסו ומנדנדים בעדינות על נדנדה למשך 5 עד 10 דקות. לאחר שפיכת כתם פונסו, יש לשטוף את הממברנה מספר פעמים במים דה-יונים כפולים עד להסרת הכתם העודף ורצועות החלבון נראות בנתיבים. לאחר מכן, בצע שלבי חסימת ממברנה, דגירה של נוגדנים ושטיפה כפי שמוצג.

לאחר השלמת הדגירה והשטיפה של הנוגדנים המשניים, הממברנה מוכנה להדמיה. בחדר חשוך, הפעל את מפתח הסרטים ואפשר לו להתחמם. חותכים שני ריבועי ניילון נצמד גדולים מספיק כדי לכסות את הממברנה במלואה.

בעזרת מלקחיים, הניחו את קרום הניטרוצלולוזה עם הפנים כלפי מעלה על הריבוע הראשון של הניילון. בשפופרת של 1.5 מיליליטר, מערבבים נפחים שווים של הכימילומינסנציה המשופרת ולוריאגנטים משפרים. לאחר מכן, השתמש בכמיליליטר אחד מהתערובת כדי לכסות את רוב הממברנות.

בעזרת הניילון, תפעל בעדינות את הממברנה כדי להבטיח שכל המשטח מצופה באופן שווה ודגירה למשך דקה אחת. לאחר מכן, הסר עודף מגיב ECL על ידי אחיזת הממברנה במלקחיים וניעור קל של הנוזל. הנח את הממברנה עם הפנים כלפי מעלה על הריבוע השני של ניילון נצמד, קפל אותה באופן רופף מעל הממברנה והדביק את העטיפה היטב לקלטת אוטורדיוגרפיה.

לאחר מכן, דמו את הממברנה באמצעות סרט אוטורדיוגרפיה בחדר חשוך על ידי ביצוע השלבים המוצגים. לאחר השגת הדמיית החלבון הרצויה, יישר את הסרט שפותח עם סמני הזוהר בחושך, והשתמש בהם כמדריך לסימון המיקום של תקני החלבון המוכתמים מראש על הסרט. לאחר השלמת ההדמיה, הסר בזהירות את הממברנה מהניילון וטבל אותה ב-TBSTW כדי לשטוף את שאריות מגיב ה-ECL.

צביעת פונסו של הממברנה אישרה העברת חלבון מוצלחת. חלבון B1 אנדוגני לא זוהה בדגימות ביציות, אך זוהה בבירור בדגימות עובר בשלב 7 ושלב 10.5 בכ-107 קילודלטון. פס חלבון קטן יותר של 70 קילודלטון זוהה בדגימות שהוזרקו בכל השלבים באמצעות נוגדן Bicc1, מה שמצביע על ביטוי מוצלח של היתוך HA-Bicc1 C-terminal.

נוגדן ה-HA זיהה את אותה פס של 70 קילודלטון רק בדגימות שהוזרקו, מה שאישר את הספציפיות של נוגדן Bicc1 לחלבון ההיתוך. שתי רצועות בעלות משקל מולקולרי גבוה, כ-250 ו-270 קילודלטון, זוהו בכל הדגימות באמצעות נוגדן CNOT1. ביטוי של חלבון DDX6 במשקל 54 קילו-דלטון זוהה בכל הדגימות, אך הופחת באופן ניכר בעוברים בשלב 10.5.