Name: Protocollo ottimizzato per Transfection efficiente delle cellule dendritiche, senza la maturazione delle cellule (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-07-08T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 8 s
Description: Impara un protocollo di nucleofezione ottimizzato per trasfettare cellule dendritiche umane con siRNA senza indurne la maturazione. Questo metodo consente il silenziamento genico efficace di RIG-I per studiare le risposte immunitarie.

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Il progetto è stato sostenuto da NIH Contratto NIAID No. HHSN2662000500021C. Ringraziamo Ming Chen per la sua assistenza tecnica.

1. Programmare il Amaxa 96 pozzetti navetta Nucleofector <ol><li> Aprire un nuovo file di parametri. </li><li> Selezionare il numero di pozzi che verrà utilizzato per la trasfezione di serie trascinando il cursore sul diagramma 96 pozzetti. Usare un minimo di 3 pozzi di piscina per ogni campione sperimentale. </li><li> Inserire il codice del programma: in part1 selezionare 'FF' e in part2 selezionare '168 'dal menu a discesa </li><li> Dalla soluzione casella di selezione 'Monocita, umano' </li><li> Secondo l'opzione di controllo, selezionare 'standard'. </li><li> Fare clic su Applica. </li><li> Per includere una no-transfezione di controllo, selezionare ulteriori pozzi dal diagramma come richiesto e poi scegliere 'No Control Program' Opzione di controllo e fare clic su Applica. </li><li> Selezionare qualsiasi pozzi rimasti inutilizzati sul diagramma piatto e cliccare su undefine. </li></ol> 2. Preparare DC per la trasfezione <ol><li> Tutto il lavoro dovrebbe essere fatto in condizioni di sterilità in una cappa di coltura cellulare, se possibile. Preparare la soluzione nucleofection con l'aggiunta di ben 96-supplemento al monociti umani a 96 pozzetti Soluzione Nucleofector nel rapporto di 450 al 2025. Mescolare e lasciare a temperatura ambiente. Avrete bisogno di 20μl di soluzione nucleofection per bene. Fai un eccesso del 10% per consentire pipettaggio errore. </li><li> Collocare il numero di moduli nucleocuvette è necessario nella piastra nucleocuvette nel corretto orientamento cioè inserendo la prima in a righe 1 e 2. </li><li> Determinare il numero di controller necessari per l'esperimento calcolo su 500.000 cellule per bene e pellet per centrifugazione a 400g per 10 minuti. Rimuovere con attenzione il sopranatante. </li><li> Risospendere le cellule nella soluzione nucleofection pipettando gentilmente su e giù un paio di volte. </li><li> Dividere la giusta quantità di cellule risospese in eppendorfs l'etichetta per il particolare trattamento ad esempio GLO e RIG-I. </li><li> Aggiungi siRNA 0.25μg per 500.000 cellule e mescolare pipettando. Uso non-targeting siRNA nel no-trasfezione campione di controllo. </li><li> Pipettare 20μl delle miscele sopra nel nucleocuvette moduli, in base al layout sperimentale, assicurando il liquido viene consegnato al fondo del pozzo. </li><li> Coprire la piastra nucleocuvette con il coperchio e toccare la piastra su una superficie dura un paio di volte per contribuire a garantire la rimozione di bolle d'aria. </li></ol> 3. Trasfezione DC <ol><li> Inserire la piastra nel cassetto Nucleofector navetta a 96 pozzetti, clicca su Carica e quindi avviare. </li><li> Seguire i progressi del processo di trasfezione sul display del computer portatile, una croce nera su sfondo verde significa una trasfezione di successo in quel pozzo, mentre una barra nera su sfondo rosso, significa che non ha avuto successo. </li><li> Al termine del processo di trasfezione, rimuovere la piastra e aggiungere 80μl di terreno di crescita continua in ciascun pozzetto utilizzando una pipetta multicanale. </li><li> Incubare piastra per 10 minuti a 37 ° C e 5% di CO 2. </li><li> Trasferire il volume di 100μl dal nucleocuvettes in provette contenenti 100μl di matrice pre-riscaldato medio DC crescita, mantenendo l'orientamento corretto. </li><li> Rimuovere e scartare quei tubi in cui la transfezione non si è verificato. </li><li> Incubare a 37 ° C e 5% di CO 2 per 24 ore o altri intervallo di tempo desiderato. </li></ol> 4. Infettare le cellule con NDV <ol><li> Rimuovere i tubi matrice dal termostato alla cappa di coltura cellulare e tubi in piscina per ogni campione sperimentale in eppendorfs </li><li> Agglomerare le cellule dolcemente facendo girare in una centrifuga da tavolo per 5 minuti e rimuovere il surnatante. </li><li> Risospendere le cellule nel siero senza mezzo di crescita contenente NDV ad una MOI di 1 e incubare a 37 ° C e 5% di CO 2 per 45 min, con eppendorfs vagamente coperto in maniera sterile. </li><li> Aggiungere 900μl di mezzo di crescita continua, e ri-incubare per 8-10 h. </li></ol> 5. Raccogliere cellule <ol><li> Celle a pellet dal giro eppendorfs in una centrifuga da tavolo e rimuovere il surnatante. </li><li> Celle di raccolta per l'RNA o l'estrazione di proteine ​​secondo il protocollo. </li></ol> 6. Rappresentante dei risultati: Usando il nostro protocollo ottimizzato abbiamo DC transfettate con RIGI-targeting siRNA per 24 ore e poi le cellule infettate con NDV (un paramyxovirus rilevato da RIG-I) per stimolare il percorso di risposta all'interferone. Da qRT-PCR abbiamo dimostrato abbattere del gene del 75% a livello di trascrizione. Abbiamo anche osservato una riduzione simile nell'espressione di IFNβ, che è un effettore a valle di RIG-I nella cascata IFN segnalazione. Inoltre, abbiamo osservato che l'espressione di IFNβ a non infette, controllo transfettate cellule non era rilevabile mentre quello di MxA, un gene IFNβ risposta a valle, è stato minimo (figura 1A). Una seconda trasfezione DC con RIGI-targeting siRNA è stata effettuata utilizzando cellule sufficiente per comprendere l'analisi Western Blot. Qualora ilRT-PCR risultati sono stati simili a quanto visto in precedenza (62% e il 66% di abbattere RIG-I ed espressione IFNβ rispettivamente) (Figura 1B), il Western Blot sondato per RIG-I ha rivelato che l'espressione di questo gene era stato completamente bloccato (Figura 1C). <img src="/files/ftp_upload/2766/2766fig1.jpg" alt="Figura 1A" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1A"> Figura 1. (A) MoDCs sono state trasfettate con siRNA o targeting RIG-I o siRNA GLO aspecifici e l'effetto sulla espressione di RIG-I, IFNβ e MxA determinato dalla qRT-PCR. Il protocollo di trasfezione usato un monociti-specifico buffer e programma nucleoporation FF168 (Lonza Walkersville Inc.) Dopo incubazione per 24 ore, le cellule transfettate erano o infettati con NDV (+) o sinistra non infetti (-). Dopo un ulteriore incubazione per 10 ore, le cellule sono state raccolte e dei livelli di trascrizione RNA estratto rappresentano i risultati di due esperimenti di replicare. Tratto da Bowles et al 16. (B) MoDCs ottenuti da una mano diversa buffy come usato per la figura 1A sono stati nuovamente trasfettate sia con RIG-I-targeting siRNA o siRNA GLO aspecifico utilizzando lo stesso protocollo di trasfezione come sopra. Un ulteriore controllo utilizzando MoDCs untransfected è stato incorporato l'esperimento. A seguito di una 24 ore di incubazione tutte le cellule sono state infettate con NDV e incubate per 10 h prima di essere raccolte sia per estrazione di RNA e proteine. I livelli di trascrizione di RIG-I, IFNβ e MxA come determinato dal qRT-PCR rappresentano i risultati di due esperimenti di replicare. Tratto da Bowles et al 16. (C) lisati da cellule descritto nella Figura 1B sopra sono stati analizzati mediante Western Blot. Corsie 1 e 2, lisati da cellule untransfected; corsie 3 e 4, lisati da cellule transfettate siRNA GLO, corsie 5 e 6, lisati da cellule transfettate con RIG-I-targeting siRNA. I campioni sono stati sondati per RIG-I e anche GAPDH (come controllo di carico) e sono stati eseguiti in duplicato. Tratto da Bowles et al 16.

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</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Trasfezione efficiente ingenuo cellule dendritiche primario è importante per l&#39;analisi di un elevato throughput e reverse engineering di cellulari vie infiammatorie in questa cellula fondamentale della mediazione innata-adaptive transizione del sistema immunitario. Tuttavia, la maggior investigatori scoprire che queste cellule sono di difficile trasfezione in modo efficiente e senza la maturazione di transfezione delle cellule procedura di induzione quando si utilizzano tecniche di trasfezione standard. Abbiamo stud...

<table border="1"><tbody><tr><th> Attrezzature / Reagente </th><th> Azienda </th><th> Catalogo # </th><th> Commenti </th></tr><tr><td> Amaxa Nucleofector 96-ben Shuttle </td><td> Lonza </td><td> 108S0109 </td><td> Numero di serie </td></tr><tr><td> Amaxa monociti umani a 96 pozzetti Kit Nucleofector </td><td> Lonza </td><td> VHPA-2007 </td><td> Contiene i monociti umani a 96 pozzetti Soluzione Nucleofector, il supplemento a 96 pozzetti e la Nucleocuvettes e piastre </td></tr><tr><td> RIG-I siRNA </td><td> Dharmacon </td><td> L-012511-00 </td><td></td></tr><tr><td> GLO siRNA </td><td> Dharmacon </td><td> D-001600-01-20 </td><td></td></tr><tr><td> RPMI 1640 </td><td> Invitrogen </td><td> 11875 </td><td> Supplementato con 10% FCS, 2 mM L-glutammina, 100 U / ml penicillina e 100 mg / ml di streptomicina per rendere terreno di crescita continua </td></tr><tr><td> DMEM </td><td> Invitrogen </td><td> 11965 </td><td></td></tr><tr><td> L-glutammina </td><td> Invitrogen </td><td> 25030081 </td><td></td></tr><tr><td> Penicillina / streptomicina </td><td> Invitrogen </td><td> 15070063 </td><td></td></tr><tr><td> Siero di vitello fetale </td><td> Hyclone </td><td> 3.070,03 </td><td></td></tr><tr><td> Le cellule dendritiche </td><td> New York Sangue centro </td><td></td><td> DC sono purificati da buffy coats utilizzando una procedura standard </td></tr></tbody></table>

protocollo ottimizzato per transfection efficiente delle cellule dendritiche, senza la maturazione delle cellule

Optimized Protocol for Efficient Transfection of Dendritic Cells without Cell Maturation

Le cellule dendritiche (DC) può essere considerato sentinelle del sistema immunitario che svolgono un ruolo critico nella sua iniziazione e la risposta alle infezioni 1. Rilevazione dell&#39;antigene patogeni da DC ingenuo è attraverso i recettori pattern recognition (PRR) che sono in grado di riconoscere specifiche strutture conservate denominate modelli molecolari patogeni associati (PAMPs). Rilevazione di PAMPs da DC innesca una cascata di segnalazione intracellulare con conseguente loro attivazione e la trasformazione di DC mature. Questo processo è tipicamente caratterizzata da produzione di interferone di tipo 1 insieme ad altre citochine proinfiammatorie, sovraregolazione di marcatori cellulari di superficie come MHCII e CD86 e la migrazione delle DC mature ai linfonodi drenanti, dove l&#39;interazione con le cellule T avvia la risposta immunitaria adattativa 2, 3. Così, DC collegare i sistemi immunitario innato e adattativo. La capacità di sezionare le reti molecolari alla base della risposta DC a vari agenti patogeni è fondamentale per una migliore comprensione del regolamento di queste vie di segnalazione e le loro geni indotti. Dovrebbe anche contribuire a facilitare lo sviluppo di DC-based vaccini contro le malattie infettive e tumori. Tuttavia, questa linea di ricerca è stato gravemente ostacolato dalla difficoltà di trasfezione primario DC 4. Metodi di trasduzione del virus, come il sistema lentivirale, sono tipicamente utilizzati, ma portano molti limiti come la complessità e bio-pericolosi rischio (con i costi associati) 5,6,7,8. Inoltre, la consegna dei prodotti gene virale aumenta l&#39;immunogenicità di coloro trasdotte DC 9,10,11,12. Elettroporazione è stata utilizzata con risultati alterni 13,14,15, ma siamo i primi a segnalare l&#39;utilizzo di un high-throughput protocollo di trasfezione e definitivamente dimostrare la sua utilità. In questa relazione si riassumono un protocollo ottimizzato commerciale high-throughput per la transfezione di DC umane primarie, con limitata tossicità delle cellule e l&#39;assenza di maturazione DC 16. L&#39;efficienza di trasfezione (di plasmide GFP) e la vitalità delle cellule erano più del 50% e 70% rispettivamente. FACS analisi stabilito l&#39;assenza di aumento di espressione della maturazione e MHCII marker CD86 in cellule trasfettate, mentre qRT-PCR ha dimostrato di non sovraregolazione IFNβ. Usando questo protocollo di elettroporazione, forniamo le prove per la trasfezione di successo di DC con siRNA ed efficace di abbattere genica mirata RIG-I, un recettore chiave riconoscimento virale 16,17, sia a livelli di mRNA e proteine.

Vi presentiamo il nostro sito ottimizzato high-throughput protocollo nucleofection come un modo efficace di trasfezione delle cellule dendritiche umane primarie derivate da monociti sia con DNA plasmidico o siRNA senza provocare la maturazione delle cellule. Abbiamo inoltre fornire le prove per il silenziamento del gene siRNA successo mirati RIG-I, sia a livelli di mRNA e proteine.

Protocollo ottimizzato per Transfection efficiente delle cellule dendritiche, senza la maturazione delle cellule

Le cellule dendritiche (DC) possono essere considerate le sentinelle del sistema immunitario, poiché svolgono un ruolo critico nella sua attivazione e nella risposta alle infezioni1. Il rilevamento ...

L'obiettivo generale di questa procedura è ridurre l'espressione del gene bersaglio nelle DCS mediante trasfezione con siRNA. Questo viene ottenuto programmando innanzitutto l'effettore AM Maxin Nucleo. Il secondo passaggio della procedura consiste nel mescolare insieme DCS e siRNA e pipettare la soluzione cellulare risultante nei moduli Nucleo QVE.Il terzo passaggio della procedura consiste nel posizionare la piastra nel vassoio del dispositivo Amaxa per iniziare il processo di trasfezione. L'ultimo passaggio della procedura è infettare le cellule con il virus per attivare la risposta all'interferone. Alla fine, è possibile ottenere risultati che mostrano un abbattimento genico mediante R-T-P-C-R quantitativa e analisi Western blot.Questa tecnica è utile per caratterizzare i percorsi di segnalazione nelle cellule dendritiche e potrebbe contribuire allo sviluppo di terapie immunitarie basate su cellule dendritiche. Per programmare il nucleofettore Maxon a 96 pozzetti per la trasfezione di DC, aprire un nuovo file di parametri. Selezionare il numero di pozzetti che si intende utilizzare per la trasfezione standard trascinando il cursore sulla figura della piastra a 96 pozzetti.Utili

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Questo video mostra una tecnica basata su piccoli RNA interferenti (siRNA) per interferire con il flusso autofagico. Un siRNA che ha come bersaglio l'mRNA di FIP200 viene introdotto in cellule dendritiche immature (iDC) derivate da monociti utilizzando l'elettroporazione, causando il knockdown dell'espressione di FIP200 e portando all'inibizione della distruzione della lamina nucleare attraverso l'autofagia. Dopo l'aggiunta del virus dell'herpes simplex (HSV), l'uscita nucleare della progenie...

Inibizione dell'autofagia basata su siRNA in cellule dendritiche immature infettate da virus dell'herpes simplex

Il metodo più comunemente utilizzato per generare un elevato numero di cellule dendritiche autologhe (DC) per uso in immunoterapia tumore è descritto. Il metodo utilizza IL-4 e GM-CSF per differenziare DC da monociti. Le DC immature sono stimolati a maturo e poi caricato con antigeni prima di essere iniettati nel paziente.

Preparazione del Tumor Antigen-caricati mature cellule dendritiche per l&#39;immunoterapia

Qui, usiamo trasduzione retrovirale e trasfezione concatemeric per creare una linea cellulare che può esprimere le componenti di un vettore lentivirale (LV) in assenza di tetraciclina. Questo LV codifica GFP ed è pseudotyped con una glicoproteina, SVGmu, che è specifico per un recettore sulle cellule dendritiche.

Una linea cellulare tetraciclina regolata produce vettori lentivirali ad alto titolo che si rivolgono specificamente cellule dendritiche

Questo protocollo rappresenta un metodo efficiente e affidabile per transfettare umani THP-1 macrofagi con siRNA o il DNA plasmidico mediante elettroporazione con alta efficienza di trasfezione, pur mantenendo alta la vitalità delle cellule e la piena capacità dei macrofagi per la differenziazione e la polarizzazione.

Trasfezione altamente efficiente di umani THP-1 da macrofagi Nucleofection

Esistono sottogruppi distinti di cellule dendritiche come popolazioni rare negli organi linfoidi, e quindi sono difficili da isolare in numero e purezza sufficienti per esperimenti immunologici. Qui descriviamo un metodo ad alta efficienza e ad alta resa per l'isolamento di tutti i principali sottogruppi attualmente noti di cellule dendritiche spleniche di topo.

Un metodo del rendimento efficiente e di alta per l&#39;isolamento di mouse dendritiche sottopopolazioni cellulari

Le cellule dendritiche immature possono essere differenziate selettivamente in cellule dendritiche tolleranti o mature per regolare l'equilibrio tra immunità e tolleranza. Questo lavoro presenta un mezzo per generare da cellule dendritiche immature derivate da monociti (moDC), moDC in vitro tollerogeniche e mature che differiscono nei fenotipi metabolici.

Generazione di Immaturo, matura e tollerogenico dendritiche cellule con differenti fenotipi metabolica

L'elettroporazione di nuova generazione è un metodo efficiente per trasfettare cellule Th17 umane con piccoli RNA per alterare l'espressione genica e il comportamento cellulare.

Piccolo RNA trasfezione in cellule primarie Th17 Human Next Generation elettroporazione

In questo articolo, forniamo che un protocollo dettagliato per l'espressione di proteine di fusione fluorescenti nel midollo osseo murino derivate macrofagi e cellule dendritiche. Il metodo si basa sulla trasduzione del midollo osseo progenitrici con retrovirali seguite da differenziazione in macrofagi e dendritiche cellule in vitro.

Espressione di proteine di fusione fluorescenti in macrofagi e cellule dendritiche derivate da midollo osseo Murine

Il dispositivo di transimmunizzazione (TI) o la piastra e i relativi protocolli sono stati sviluppati per replicare le caratteristiche chiave della fotochemioterapia extracorporea (ECP), in un ambiente sperimentale, permettendo la produzione di fisiologicamente attivato, Tunable dendritico cellule (DCs) per l'immunoterapia oncologica.

Nuovo protocollo per la generazione di cellule dendritiche fisiologiche immunogene

Qui, presentiamo un metodo economico ed efficiente per isolare e generare cellule dendritiche derivate dal midollo osseo ad alta purezza dai topi dopo 7 giorni di coltura con 10 ng / mL GM-CSF / IL-4.

Protocollo economico ed efficiente per l'isolamento e la coltura di cellule dendritiche derivate dal midollo osseo da topi

Questo protocollo descrive la riprogrammazione in vivo di cellule tumorali di topo in cellule dendritiche di tipo 1 all'interno del microambiente tumorale attraverso l'espressione forzata dei fattori di trascrizione PU.1, IRF8 e BATF3.

Riprogrammazione trattabile in vivo di cellule tumorali in cellule dendritiche convenzionali di tipo 1

Impara un protocollo di nucleofezione ottimizzato per trasfettare cellule dendritiche umane con siRNA senza indurne la maturazione. Questo metodo consente il silenziamento genico efficace di RIG-I per studiare le risposte immunitarie.

Protocollo ottimizzato per Transfection efficiente delle cellule dendritiche, senza la maturazione delle cellule

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