Name: Un saggio di migrazione cellulare quantitativa per murini enterici neurali Progenitori (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-09-18T15:15:00.000+00:00
Duration: 8 min 26 s
Description: Scopri un saggio ex vivo per quantificare la migrazione dei progenitori neurali enterici murini in risposta a fattori di crescita. Questo metodo utilizza microscopia a fluorescenza per analizzare le cellule migranti.

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Ringraziamo Denis Flipo per consigli elaborazione delle immagini e analisi, e David W. Silversides nel cui laboratorio è stata generata la linea di topi Gata4p [5kb]-GFP. La ricerca in laboratorio Pilon è finanziato dal CIHR, NSERC, FRQS e FRQNT.

Dichiarazione etica Gli esperimenti che coinvolgono i topi sono stati eseguiti a seguito Canadian Consiglio di linee guida per la cura degli animali per la cura e la manipolazione di animali utilizzati nella ricerca medica. Protocolli che comportano la manipolazione di animali sono stati approvati dal comitato etico istituzionale dell&#39;Università del Quebec a Montreal (Comité de Protection des institutionnel Animaux, il numero di riferimento 0512-R3-650-0513). 1. Preparazione di Collagene Gel Lavorare in modo sterile, sotto una cappa di coltura tissutale. <ol><li> Preparare completa 5x DMEM (mezzo essenziale modificata di Eagle), compresi gli antibiotici standard. Sciogliere 3,37 g di polvere DMEM e 0,925 g di NaHCO3 in 20 ml di acqua. Sterilizzare passando attraverso un filtro di 0,22 micron. Aggiungere 2,5 ml di sterile 100x penicillina / streptomicina e 25 ml di siero fetale bovino sterile calore-inattivato. Conservare a 4 ° C. </li><li> Sul ghiaccio, mescolare 800 mldi soluzione di collagene I (3,77 mg / ml in 0,02 N di acido acetico, sterilizzata per filtrazione), 600 ml di DMEM completo 5x e 17 ml di 1 N NaOH. Diluire con acqua sterile fino ad un volume finale di 3 ml. Includere i fattori di crescita rilevanti nel mix. Usiamo tipicamente GDNF a 10 ng / ml per stimolare la migrazione enterico NCC. </li><li> Deposito di circa 480 microlitri in ciascun pozzetto di una singola riga in una piastra da 24 pozzetti. Evitare le bolle. Le righe rimanenti possono essere utilizzati per verificare l&#39;effetto di altri fattori di crescita sulla migrazione cellulare. </li><li> Sia il collagene polimerizzare almeno 1 ora in un incubatore sterile a 37 ° C. </li></ol> 2. Dissezione degli animali 16 <ol><li> Impostare accoppiamenti e controllare i tappi vaginali la mattina successiva. Giorno E0.5 essendo mezzogiorno del giorno la spina vaginale si trova, isolare la femmina e attendere 12 giorni fino E12.5. </li><li> Anestetizzare topi incinta con isoflurano e eutanasia da CO 2 inalazione. </li><li> Spruzzare il mouse con etanolo al 70%. Sollevare le s addomekin e aprire la cavità addominale con le forbici dissezione. </li><li> Rimuovere l&#39;utero in una piastra di Petri di vetro riempita con PBS freddo (soluzione salina tamponata con fosfato). Tagliare l&#39;utero trasversalmente tra i singoli gonfiori deciduum per isolare ogni sito di impianto dell&#39;embrione. </li><li> Lavorare su ciascun sito separatamente impianto in un altro Petri piatto di vetro riempito con ghiaccio-freddo PBS. Sotto un microscopio da dissezione, utilizzare una pinza sottile per rimuovere lo strato muscolare dell&#39;utero. </li><li> Aprire il sacco vitellino viscerale e amnion per rivelare l&#39;embrione. Fare attenzione quando recidere i vasi sanguigni che unisce l&#39;embrione alla placenta / viscerale sacco vitellino, in quanto si intrecciano con l&#39;intestino in via di sviluppo. </li><li> Tagliare la testa dell&#39;embrione al collo. </li><li> Inserire una pinza chiuse nella cavità addominale di un embrione, appena sopra il fegato di colore rosso scuro e lasciare le pinze aperto di sé (interrompere l&#39;applicazione di pressione) per fare un&#39;apertura trasversale nella cavità addominale. Tirare le pinze aperte versol&#39;estremità posteriore dell&#39;embrione per aprire completamente l&#39;addome. </li><li> Afferra il tessuto connettivo dietro il fegato e tirare le budella dell&#39;addome, facendo attenzione a non rompere l&#39;intestino (il colon è collegato al ano). </li><li> Tagliare il colon per liberare le viscere dal resto dell&#39;embrione. Il taglio può essere effettuato in qualsiasi posizione lungo il colon. Prenota la porzione di coda per più tardi. </li><li> Giro fuori il tessuto connettivo dal cieco, poi il resto degli intestini. Fare attenzione a non ferire l&#39;intestino, mentre farlo. </li><li> Tagliare il fegato e stomaco (all&#39;estremità rostrale del piccolo intestino), così come le mesonefro e creste genitali se alcuni sono presenti. </li><li> Isolare l&#39;intestino tenue. Anche in questo caso, fare attenzione a non stroncare l&#39;intestino. Da ora in poi, l&#39;orientamento rosrrocaudal del tessuto intestinale può essere rintracciato tramite la curvatura tagliente presente sulla fine rostrale. Lasciare il piccolo intestino in PBS a temperatura ambiente per il minor tempo possibile prima emBiancheria da letto (vedi punto 3.3). </li><li> Infine, registrare il numero di somiti coda per ogni embrione per determinare con precisione lo stadio di sviluppo embrionale. </li></ol> 3. Sezionamento dei embrionali Intestino <ol><li> Prima di procedere con dissezioni embrione, sciogliere 1,5 g di agarosio in 100 ml di PBS (tampone fosfato salino) e mantenerlo a 50 ° C. </li><li> Versare agarosio fuso in uno stampo embedding (ad esempio un chiuso 2 ml provetta che è stato tagliato longitudinalmente per asportare circa 1/4 della parete del tubo). Lasciare che il agarosio raffreddare a circa 42-45 ° C, dovrebbe essere solo leggermente caldo al tatto. </li><li> Incorporare l&#39;intestino embrionale poco prima delle solidifica agarosio (questo può essere valutata con una pinza punte e si verifica intorno a 36-38 ° C). Tenendo l&#39;intestino con una pinza per la fine rostrale piegata, tirare molto lentamente attraverso l&#39;agarosio lungo la lunghezza dello stampo. Ciò contribuisce a mantenere l&#39;intestino diritto mentre i set di agarosio. Rilasciare il temettere appena comincia a resistere spostato. Tenere traccia dell&#39;orientamento rostrale-caudale dell&#39;intestino. </li><li> Mettete lo stampo in frigorifero 2-3 minuti, al fine di garantire l&#39;agarosio si è completamente impostato. </li><li> Estrarre il agarosio dallo stampo (facendola scorrere fuori dal tubo Eppendorf aperto). Con una lama, estrarre l&#39;agarosio eccesso ad entrambe le estremità, tagli perpendicolari per l&#39;intestino. </li><li> Incollare la fine rostrale dell&#39;intestino / agarosio bloccare giù sul palco di metallo di un microtomo con lama vibrante. Tagliare il agarosio eccesso sui lati del blocco dell&#39;intestino / agarosio. </li><li> Montare la fase metallica sulla camera microtomo vibrante. Se necessario, regolare l&#39;angolo della fase così l&#39;intestino è più verticale possibile (quindi perpendicolare alla lama). Coprire il campione con PBS freddo. Portare la lama microtomo fino a pochi millimetri sotto la superficie buffer. </li><li> Rendere 200 micron vibratome tagli trasversali dell&#39;intestino caudale più a piccolo, assicurando che l&#39;each fetta agarosio contiene una sezione intestinale completa. </li></ol> 4. Cultura intestinale espianti <ol><li> Depositare delicatamente il fresco tagliato a fette intestino / agarosio piatto sul gel di collagene con una pinza, ponendo una fetta verso la metà di ogni bene. </li><li> Incubare 3 giorni a 37 ° C, in un umido 5% CO 2 atmosfera, per consentire la migrazione di NCC fuori l&#39;espianto. </li><li> Prendete le fette di intestino / agarosio il gel di collagene molto delicatamente con una pinza. Fate attenzione a non danneggiare il gel sotto. </li><li> Evitare di toccare il gel di collagene direttamente durante le successive fasi di incubazione e lavaggio, al fine di assicurare che il modello migrazione cellulare non è disturbato. Fissare con 500 ml di 4% PFA (paraformaldeide) (in PBS) per pozzetto 1 ora a temperatura ambiente. </li><li> Sostituire il fissativo con 500 ml di DAPI (4 &#39;,6-diamidino-2-fenilindolo) Soluzione (5 pg / ml in PBS) per pozzetto ed incubare 10 min a temperatura ambiente. </li><li> Lavare ogni pozzetto 3xcon 500 microlitri di PBS per 5 min. </li><li> Fotografare le cellule fluorescenti (canali GFP e DAPI) incorporati nel gel di collagene in ogni pozzetto. </li></ol> 5. Image Analysis Abbiamo fatto ampio uso di ImageJ 17 per elaborare e quantificare le immagini generate dopo coltura espianto. <ol><li> Inizia l&#39;immagine di un vetrino micrometrico allo stesso ingrandimento come le fotografie di cellule fluorescenti. Misurare la lunghezza di un micron in pixel (utilizzando lo strumento linea retta). </li><li> Impostare la scala (Analyze / Set Scala, il numero di ingresso di pixel / micron). </li><li> Per ogni fotografia fluorescenza GFP, modificare il formato dell&#39;immagine a 8-bit in scala di grigi (Image/Type/8-bit). </li><li> Regolare l&#39;intensità del segnale (Foto / Regola / Luminosità / Contrasto). </li><li> Sottrarre il rumore di fondo, se necessario (Process / Sottrarre sfondo, regolare il raggio della sfera di rotolamento). </li><li> Impostare una soglia per evidenziare cellule e grumi di cellule (Immagine / Regola / Threshold), iln applicare uno spartiacque per dividere i cespi (Process / Binario / Watershed). </li><li> Analizzare le particelle di specificare regioni di interesse (ROI) e generare statistiche numero di cellulare (Analizza / Analizza particelle; dimensione minima set di escludere pixel rimanenti). </li><li> Impostare le opzioni di misura per includere il diametro di Feret (Analyze / Set Misure). </li><li> Gruppo ROI e misurare nel suo complesso per determinare il diametro della Feret, un&#39;indicazione di spread cella (Analisi / Strumenti / ROI Gestore / info / O, quindi il ROI Gestore / Aggiungi, e il ROI Gestore / Measure). </li></ol>

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<li>Byth, K. F., Thomas, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AZD5438%2C+a+potent+oral+inhibitor+of+cyclin-dependent+kinases+1%2C+2%2C+and+9%2C+leads+to+pharmacodynamic+changes+and+potent+antitumor+effects+in+human+tumor+xenografts%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cancer+Ther%22%5BJournal%5D)">AZD5438, a potent oral inhibitor of cyclin-dependent kinases 1, 2, and 9, leads to pharmacodynamic changes and potent antitumor effects in human tumor xenografts.</a> Mol. Cancer Ther. 8 (7), 1856-1866 (2009).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Mostriamo come il nostro ex vivo espianto cultura tecnica può essere utilizzata per quantificare con precisione enterico migrazione potenziale NCC in presenza di GDNF. Tale quantificazione precisa è notevolmente semplificata ricorrendo a 200 micron di spessore sezioni vibratome budello invece di grandi pezzi di dimensioni approssimative, come descritto in precedenza 11,12,15. In effetti, questo ci permette di lavorare con un numero ragionevole di cellule in un ambiente altamente riproducibile. Da not...

Cellule della cresta neurale (NCC) sono un tipo di cellula transitoria unica di vertebrati che si forma molti derivati ​​durante lo sviluppo embrionale. Questa popolazione di cellule si pone al confine della placca neurale, adiacente al ectoderma non-neurale 1. Durante neurulazione, piegatura dei luoghi placca neurale NCC lungo il bordo dorsale del tubo neurale formatura. NCC poi subire una transizione epitelio-mesenchimale, segregazione e la migrazione dal tubo neurale. NCC colonizzare varie strutture embrionali compresi il tratto digestivo dove formano l&#39;intero sistema nervoso enterico (ENS), una rete interconnessa di gangli nervosi incorporato nella parete intestinale. Come recentemente rivisto 2,3, molti geni sono stati coinvolti nello sviluppo di questa intricata struttura. La maggior parte della ENS è derivato da una piccola piscina di NCC provenienti dal tubo neurale vagale (ossia circa il limite prospettico hindbrain / midollo spinale) 4.Questi progenitori neurali raggiungono il foregut intorno al giorno embrionale (e) 9.0 nei topi e poi migrano caudale all&#39;interno del mesenchima intestino fino a circa e15.0 a colonizzare l&#39;intero intestino embrionali. Un sottoinsieme minore di progenitori neurali colon è fornito anche da sacrale NCC, che invadono l&#39;intestino posteriore in direzione opposta fino al cieco 4. Sia vagale e sacrale NCC richiedere più migrazione, proliferazione, sopravvivenza e spunti-differenziazione promuovere per garantire la formazione completa della ENS. A questo proposito, i modelli animali - topi geneticamente modificati, in particolare - sono state fondamentali per l&#39;identificazione dei vari ligandi extracellulari essenziali: GDNF (glial cellule fattore neurotrofico derivato), dell&#39;endotelina-3, neurotrofina-3, (proteine ​​morfogenetiche dell&#39;osso) BMP, Netrin , così come Sonic e indiano Hedgehog (Shh e Ihh) 5-10. Di questi, GDNF segnalazione attraverso il RET recettore transmembrana tirosin chinasi (Risistemato durante la transfezione), è riconosciuto come esimoe percorso più critico per l&#39;attrazione e la guida di NCC da e all&#39;interno dell&#39;intestino embrionale. GDNF è secreto dal mesenchima intestino e forma un gradiente rosrrocaudal controllato spatiotemporally che è direttamente chemoattractive a enterico NCC, che esprimono RET 11,12. Fra le altre funzioni, l&#39;ENS regola il movimento all&#39;interno del tubo digerente attraverso la sua interazione con la muscolatura liscia della parete intestinale. Assenza di gangli nervosi nella regione terminale dei risultati intestinali nella malattia di Hirschsprung: contrazione tonica del segmento interessato conduce al blocco, l&#39;accumulo a monte del materiale digerito e massiccia distensione dell&#39;intestino e dell&#39;addome. La malattia di Hirschsprung si verifica circa uno su 5.000 nati vivi. Il modello migratorio rostro-caudale enterico NCC si crede di essere il principale fattore che contribuisce alla eziologia della malattia di Hirschsprung. Il colon, più lontana dalla fonte di migrazione NCC e ultima porzione di bowel ad essere colonizzato, è più suscettibile a difetti nella formazione ENS. In conformità con il suo ruolo cruciale nella migrazione enterico NCC, interruzione del segnale GDNF / RET è la principale causa conosciuta genetica della malattia di Hirschsprung 13. Per studiare meglio NCC e sviluppo ENS, abbiamo generato una linea di topi transgenici - chiamato Gata4p [5kb]-GFP 14 - in cui migratori NCC sono etichettati con la Green Fluorescent Protein (GFP). Abbiamo poi messo a punto un saggio ex vivo migrazione cellulare, adattato dal lavoro pubblicato da altri gruppi 11,12,15, che ora consente una precisa quantificazione della enterico potenziale migrazione NCC in presenza di vari fattori di crescita, quali GDNF.

<table><tbody><tr><td>Polvere DMEM</td><td>Wisent</td><td>219-010-XK</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Bioshop</td><td>SOB999</td><td></td></tr><tr><td>Sistema di filtrazione sottovuoto Steriflip di grado biotecnologico (0,22 micron)</td><td>EMD Millipore</td><td>SCGP00525</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Soluzione di penicilina-streptomicina, 100x</td><td>Wisent</td><td>450-201-EL</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Siero fetale bovino</td><td>Wisent</td><td>095-150</td><td>Collagene di alta qualità</td></tr><tr><td>I</td><td>BD biosciences</td><td>354236</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>NaOH</td><td>Bioshop</td><td>SHY700</td><td>Diluito da stock 10 N poi filtrato sterile,</td></tr><tr><td>GDNF</td><td>Cedarlane</td><td>CLCYT305</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Falcon 24-well Plate</td><td>BD biosciences</td><td>353047</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Forbici da dissezione</td><td>Fisher Scientific</td><td>089515</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>piastra Petri in vetro</td><td>VWR</td><td>89000-306</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Sigma</td><td>P5493</td><td>Microscopio</td></tr><tr><td>da dissezione</td> per colture cellulari <td>Leica</td><td>M125</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Dumont #5 Pinze</td><td>Strumenti per la scienza</td><td>11251-20</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Agarosio</td><td>Bioshop</td><td>AGA001</td><td>Lama chirurgica di grado biotecnologico</td></tr><tr><td></td><td>Feather</td><td>21</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Penna per colla Krazy istantanea per tutti gli usi</td><td>Colla Krazy</td><td>KG824</td><td></td></tr><tr><td>HM 650V Microtomo a lama vibrante</td><td>Thermo Scientific</td><td>920110</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Paraformaldeide</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6148</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D9564</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td colspan="4">Tabella dei reagenti e delle attrezzature specifiche.</td></tr></tbody></table>

un saggio di migrazione cellulare quantitativa per murini enterici neurali progenitori

A Quantitative Cell Migration Assay for Murine Enteric Neural Progenitors

Cellule della cresta neurale (NCC) sono una popolazione transitoria e multipotenti cellule che proviene dal tubo neurale dorsale e migra ampiamente in tutto il vertebrato sviluppo dell&#39;embrione. Oltre a fornire glia e neuroni periferici, NCC generare melanociti nonché la maggior parte dello scheletro cranio-facciale. Migrazione NCC e la differenziazione è controllata da una combinazione della loro origine assiale lungo il tubo neurale e la loro esposizione ai segnali extracellulari regionale distinti. Tale contributo di ligandi extracellulari è particolarmente evidente durante la formazione del sistema nervoso enterico (ENS), una complessa rete interconnessa di gangli neurale che controlla localmente (tra le altre cose) movimento intestinale muscolare e la motilità intestinale. La maggior parte della ENS è derivato da una piccola piscina iniziale di NCC che intraprendere un lungo viaggio per colonizzare - in un rostrale alla moda caudale - l&#39;intera lunghezza del futuro dell&#39;intestino. Tra le varie vie di segnalazione noti perinfluenza enterico colonizzazione NCC, GDNF segnalazione / RET è riconosciuto come il più importante. Infatti, la secrezione controllata spatiotemporally della RET ligando GDNF dal mesenchima intestino è principalmente responsabile per l&#39;attrazione e la guida di-RET esprimere enterico NCC da e all&#39;interno dell&#39;intestino embrionale. Qui, descriviamo un ex vivo saggio migrazione cellulare, facendo uso di una linea di topi transgenici in possesso fluorescente NCC, che permette una precisa quantificazione della enterico potenziale migrazione NCC in presenza di vari fattori di crescita, tra GDNF.

I seguenti risultati sono rappresentativi di quello ottenibile con la tecnica descritta qui (Figura 1). L&#39;impiego di fattori di crescita (cioè GDNF) stimola la migrazione di GFP che esprimono enterico NCC dal espianto intestinale e nel gel di collagene (Figura 2). Sebbene alcune cellule escono espianto in assenza di fattori di crescita, questi non sono per lo GFP-etichettata e rappresentano entrata passiva. È necessario rimuovere la fetta intestinale dal gel di collagene pe...

Presentiamo un ex vivo delle cellule saggio di migrazione che permette una precisa quantificazione della enterico potenziale migrazione delle cellule della cresta neurale in presenza di vari fattori di crescita.

Un saggio di migrazione cellulare quantitativa per murini enterici neurali Progenitori

Neural crest cells (NCC) are a transient and multipotent cell population that originates from the dorsal neural tube and migrates extensively throughout ...

L'obiettivo generale di questa procedura è quantificare il potenziale di migrazione dei progenitori neuroenterici in presenza di diversi fattori di crescita. Questo viene ottenuto innanzitutto dissezionando l'intestino tenue di embrioni di topo, popolato da cellule neurocristiche fluorescenti. Il secondo passaggio consiste nell'utilizzare un microtomo vibrante per ottenere fette di intestino dello spessore di 200 micron.Successivamente, queste fette vengono incubate sopra un gel di collagene contenente fattori di crescita. Il passaggio finale consiste nello staccare delicatamente le fette per rivelare le cellule migranti sottostanti. Infine, la microscopia a fluorescenza viene utilizzata per visualizzare il modello delle cellule migranti all'interno del gel di collagene.Questo metodo può contribuire a rispondere a una domanda fondamentale nella biologia dello sviluppo, ad esempio fornendo una comprensione più approfondita dell'interazione tra i diversi percorsi di segnalazione coinvolti nella formazione del sistema nervoso periferico. Dodici giorni dopo la comparsa del tappo vaginale, si eutanasia il topo femmina e si rimuove l'utero, posizionandolo in una capsula di Petri di vetro contenente ghiaccio. Con PBS freddo, si taglia l'utero trasversalmente tra i singoli rigonfiamenti embrionali per isolare ciascun sito di impianto embrionale al microscopio stereoscopico; si utilizzano pinzette fini per rimuovere lo strato muscolare dell'utero.Aprire la sacca vitellina viscerale e l'amnios per esporre l'embrione. Prestare attenzione quando si recidono i vasi sanguigni che collegano l'embrione alla sacca vitellina, poiché sono intrecciati con gli intestini in via di sviluppo. Successivamente, inserire pinze chiuse nella cavità addominale appena al di sopra del fegato di colore rosso scuro e permettere loro di aprirsi.Questo crea un'apertura trasversale nella cavità addominale. Tirare le pinze aperte verso la parte posteriore dell'embrione per aprire completamente l'addome. Una volta aperto, afferrare il tessuto connettivo dietro il fegato ed estrarre le viscere.Avendo cura di non rompere gli intestini. Tagliare il colon in qualsiasi punto per liberare l'intestino dal resto dell'embrione. Conservare la porzione della coda per un uso successivo.Separare con cura il tessuto connettivo dal cieco e quindi dall'intestino, facendo attenzione a non ferire l'estremità rostrale dell'intestino tenue. Rimuovere il fegato e lo stomaco, nonché il meso, i nefrotomi e le creste genitali, se presenti. Infine, isolare l'intestino tenue rimuovendo il cieco, il colon e il tessuto connettivo residuo.Come in precedenza, prestare attenzione a non danneggiare l'intestino. Lasciare l'intestino tenue nel PBS a temperatura ambiente per il minor tempo possibile prima dell'inclusione. Dopo aver reciso l'embrione al livello del collo, registrare il numero di somiti caudali per determinare con precisione lo stadio di sviluppo embrionale.Prima di procedere con le dissezioni degli embrioni, sciogliere 1,5 grammi di agros in 100 millilitri di PBS e mantenere a 50 gradi Celsius. Preparare lo stampo per l'inclusione tagliando longitudinalmente una provetta microcentrifuga da due millilitri per rimuovere circa un quarto della parete della provetta. Versare l'agros fuso nello stampo e lasciarlo raffreddare fino a quando non è appena tiepido al tatto.Quando si è pronti, tenere l'intestino con una pinzetta per l'estremità rostrale ripiegata e tirarlo molto lentamente attraverso l'agarosio, lungo tutta la lunghezza del modello. Questo aiuta a mantenere l'intestino dritto mentre l'agarosio si solidifica; rilasciare il tessuto non appena inizia a opporre resistenza al movimento e tenere traccia dell'orientamento rostrale dell'intestino. Successivamente, collocare il modello in frigorifero per due o tre minuti affinché si solidifichi completamente.Dopo averlo fissato, rimuovere l'agarosio dallo stampo e tagliare l'agarosio in eccesso alle due estremità, effettuando tagli perpendicolari all'intestino. Incollare l'estremità rostrale del blocco di agarosio alla piattaforma metallica di un microtomo e tagliare l'agarosio in eccesso su tutti i lati. Successivamente, montare la piattaforma metallica nella camera del microtomo vibrante.Se necessario, regolare l'angolo della piastra in modo che l'intestino sia il più verticale possibile. Coprire il campione con PBS ghiacciato prima di abbassare la lama del microtomo a pochi millimetri al di sotto della superficie del buffer. Quando pronto, effettuare tagli trasversali di 200 micron della porzione più piccola dell'intestino tenue.Assicurarsi che ogni fetta di agro contenga un'intera sezione intestinale. Depositare delicatamente le fette appena tagliate su un gel di collagene precedentemente preparato. Posizionare una fetta verso il centro di ogni pozzetta per consentire la migrazione delle cellule della cresta neurale fuori dalle melanzane, quindi incubare le fette per tre giorni.Dopo questo periodo, rimuovere delicatamente le sezioni dal gel di collagene con pinzette, avendo cura di non danneggiare il gel sottostante. Per garantire che il modello di migrazione cellulare non venga alterato, è importante evitare di toccare direttamente il gel di collagene durante le successive fasi di incubazione e lavaggio. Innanzitutto, fissare le cellule con 500 microlitri di PFA al 4% per pozzetto per un'ora a temperatura ambiente.Successivamente, sostituire il fissativo con 500 microlitri di soluzione DPI per ogni pozzetto e incubare per 10 minuti. A temperatura ambiente, rimuovere con attenzione la soluzione DPI e lavare ogni pozzetto tre volte con 500 microlitri di PBS per cinque minuti. Infine, acquisire le immagini delle cellule fluorescenti incorporate nel gel di collagene all'interno di ciascun pozzetto.In questo esempio, i fattori di crescita sono stati utilizzati per stimolare la migrazione delle cellule della cresta neuroenterica esprimenti GFP. La linea tratteggiata rappresenta la dimensione e la posizione approssimative dell'espianto. Prima che fosse rimosso dal gel, il numero e la distribuzione delle cellule esprimenti GFP che migravano fuori dall'espianto intestinale risultavano significativamente maggiori nelle condizioni trattate rispetto a quelle non trattate.Dopo aver visionato questo video, dovresti avere una buona comprensione di come determinare il potenziale di migrazione dei progenitori neurali enterici incubando fette intestinali su un gel di collagene contenente fattori di crescita.

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Valutare motilità delle cellule staminali neurali L&#39;utilizzo di un gel a base di Agarose dispositivo a microfluidi

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Un saggio Slice organotipica per High-Resolution Time-Lapse Imaging della migrazione neuronale nel cervello postnatale

In questo protocollo si dimostra come costruire camere personalizzate che consentono l'applicazione di un campo di corrente elettrica diretta a consentire time-lapse imaging del cervello adulto derivato neurale traslocazione cellula precursore durante galvanotaxis.

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Qui descriviamo una delle cellule di Schwann (SC) saggio transizione, in cui SC sono in grado di sviluppare lungo gli assoni si estendono.

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Migrazione neuroblasti è un passo fondamentale nella neurogenesi postnatale. Il protocollo qui descritto può essere utilizzato per studiare il ruolo dei regolatori candidati migrazione neuroblasti impiegando DNA / piccolo tornante RNA (shRNA) nucleofection e un saggio di migrazione 3D con neuroblasti isolati dal flusso migratorio rostrale roditore postnatale.

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La transizione da epiteliale a mesenchimale (EMT) consente ai tumori di diventare invasivi. Per studiare l'EMT, viene descritto un modello in vitro basato su cellule staminali neurali (NSC) privo di siero ed enzimi. Questo sistema standardizzato consente la valutazione quantitativa e qualitativa della migrazione cellulare, dell'espressione genica e proteica. Il modello è adatto per la scoperta di farmaci.

Un modello enzima e Neural Stem Cell Culture siero-libero per EMT Investigation Adatto per Drug Discovery

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Rilevamento rapido dei fenotipi di Neurodevelopmental in cellule precursori neurali umane (NPC)

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