Name: Derivate dal midollo osseo macrofagi Production (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-11-22T14:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 6 s
Description: Impara a differenziare macrofagi dal midollo osseo di topo per studi di immunologia e biologia cellulare. Questo metodo fornisce grandi quantità di macrofagi primari per analisi sperimentali accurate.

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Questo lavoro è stato supportato dal CNRS (PICS 2012-2014 a EG), e da una sovvenzione della Regione Campania (LR n.5, 28.03.2002 a Giovanna Mottola). Filippo Conti è un collega della Cooperazione Scientifica Fondazione&#39;&#39; Infectiopole Sud&#39;&#39;. Nicola Boucherit è un collega del Ministero francese per la Ricerca e la Tecnologia. Le fonti di finanziamento hanno avuto alcun ruolo nel disegno dello studio, raccolta dati, analisi dei dati, la decisione di pubblicare, o preparazione del manoscritto.

Dichiarazione Etica Il protocollo per la gestione degli animali è stato approvato dal nostro Comitato Etico istituzionale Animal &quot;Conseil Scientifique du Centre de Formation et de Recherche Sperimentale Médico-Chirurgical&quot; (CFREMC, permesso Progetto 10-300.122.013 a Eric Ghigo) da Aix-Marseille University in accordo con le regole di Décret N ° 87-848 del 1987/10/19. Gli esperimenti sono stati condotti presso la Faculté de Médecine de la Timone (permesso Sperimentazione numero 13,385 a Eric Ghigo). 1. Materiali e Culture Media Preparazione <ol><li> Sterilizzare due pinze, due forbici, due lame chirurgiche, un mortaio e un pestello. </li><li> Ottenere DMEM completo contenente 10% di siero fetale bovino (FCS), glutammina 2 mM, 100 U / ml di penicillina e 100 pg / ml streptomicina. </li><li> Diluire 10x PBS in acqua distillata sterile per ottenere 1x PBS. </li><li> Ottenere ghiacciata 1x PBS, DMEM completo ghiacciata, completi wa DMEMrmed a 37 ° C. </li></ol> 2. Preparazione di L929 surnatanti cellulari <ol><li> Crescere cellule L929 a confluenza (venti 175 centimetri 2 beute) in DMEM completo a 37 ° C, 5% CO 2. </li></ol> Nota: granulociti-macrofagi colonie factor (GM-CSF), stimola è necessario per indurre la differenziazione delle cellule ematopoietiche in macrofagi 12. L929 cellule producono GM-CSF. <ol start="2"><li> Alla confluenza, sostituire coltura con DMEM fresco completo. Trasferire beute a 32 ° C, 5% CO 2 per 10 giorni. </li><li> Raccogliere, piscina e centrifugare il surnatante a 750 xg per 10 min. Gettare pellet cellulari. </li><li> Conservare surnatanti in provette da 15 ml e conservare a -20 ° C. </li></ol> 3. Derivate dal midollo osseo macrofagi (BMDM) Preparazione <ol><li> Sacrifica 1 mouse dislocazione cervicale. <ol><li> Utilizzare lame chirurgiche sterili tutto l&#39;esperimento. Disinfettare la pelle con il 70% AlcoHol. Fare un&#39;incisione nella parte superiore di entrambe le zampe posteriori e tirare la pelle verso il piede per esporre il muscolo. </li><li> Tagliare le zampe posteriori, togliere la pelle con le forbici sterili e pinze sterili. Posizionare gambe di un piastra di Petri sterile (35/10 mm) contenente sterile, ghiacciata PBS 1x (5 ml). </li><li> Togliere la carne e muscoli che sono aderente alle ossa con le forbici sterili e pinze. </li></ol></li><li> Trasferire le ossa in una nuova piastra di Petri sterile (35/10 mm) contenente ghiacciata, sterile PBS 1x (5 ml). Lavare le ossa due volte con 5 ml ghiacciata, sterile PBS 1x. </li><li> Trasferire l&#39;osso in un mortaio sterile contenente 5 ml ghiacciata, sterile PBS 1x. </li><li> Tagliare la tibia dal femore alla giuntura con forbici sterili. Rompete le ossa dolcemente in un mortaio sterile contenente 5 ml di ghiacciata, sterile 1x PBS utilizzando un pestello. </li><li> Raccogliere il surnatante in provette da 15 ml ghiacciate. Ripetere questa operazione 3 volte. </li><li> Filtrare attraverso un 70 micron stra cellulare Nyloniner per rimuovere i frammenti solidi. Centrifugare il filtrato a 450 xg per 10 min a 4 ° C. </li><li> Eliminare delicatamente il surnatante. Dissociare il pellet in 10 ml di tampone di lisi dei globuli rossi per 30 sec. Aggiungere 20 ml ghiacciata, DMEM completo. </li></ol> Nota: Lo scopo di questa fase è quello di rimuovere contaminanti globuli rossi, quindi, questa operazione deve essere eseguita entro 2 minuti per evitare alterazioni delle cellule ematopoietiche dal buffer sangue rosso lisi cellulare. <ol start="8"><li> Centrifugare a 450 xg per 10 min a 4 ° C. Eliminare delicatamente il surnatante. Dissociare il pellet in 20 ml di DMEM completo che è stato riscaldato a 37 ° C. </li><li> Trasferire le cellule dissociate in 2 piastre di Petri (100/20 mm). Incubare per 4 ore a 37 ° C. </li><li> Raccogliere i surnatanti in 50 ml provette a temperatura ambiente. Eliminare i piatti che contengono i macrofagi residenti. </li></ol> Nota: L&#39;obiettivo di questa fase è quello di eliminare il Marro osso residentemacrofagi w per la loro capacità di aderire alla plastica coltura trattata. Questi macrofagi residenti possono essere utilizzati in altri esperimenti. <ol start="11"><li> Centrifugare i surnatanti raccolti a 450 xg per 10 min a 4 ° C. Scartare il surnatante. </li><li> Dissociare delicatamente il pellet in 10 ml di DMEM completo contenente il 15% L929 surnatante cellulare. Filtrare le cellule attraverso un filtro di 40 micron cella in nylon. </li><li> Recuperare il filtrato. Aggiungere il filtrato raccolto (10 ml) a 140 ml di DMEM completo che è stato integrato con il 15% delle cellule L929 supporti. </li><li> Distribuire 10 ml di sospensione cellulare per Petri dish (15 capsule di Petri, 100/20 mm). Incubare le cellule a 37 ° C, 5% CO 2. </li><li> Crescere cellule per 3 giorni </li><li> Aggiungere 10 ml di DMEM completo che è stato supplementato con 15% L929. Incubare le cellule per 4 giorni aggiuntivi. </li></ol> Nota: Controllare la crescita delle cellule periodicamente con un microscopio invertito (passi 3,14-3,16). Macrofagi aderenti sarannoosservata dopo 3 giorni di coltura. 4. BMDMs di raccolta <ol><li> Rimuovere il surnatante. Lavare BMDMs 2 volte con DMEM completo </li><li> Aggiungere 5 ml DMEM completo che è stata scaldato a 37 ° C. Staccare BMDMs raschiando delicatamente con un poliziotto di gomma. </li><li> Raccogliere BMDMs in provette da 50 ml e centrifugare a 450 xg per 10 min. Dissociare delicatamente pellet cellulari in 20 ml di DMEM completo. </li><li> Contare BMDMs in presenza di blu tripano (senza mortalità superiore al 10% deve osservare). </li></ol> Nota: Generalmente, circa 6-7,5 x 10 7 macrofagi sono ottenuti da 15 piastre di Petri (100/20 mm) dei macrofagi. Ci sono circa 4-5 x 10 6 / macrofagi capsula di Petri (100/20 mm). <ol start="5"><li> Preparare BMDMs come richiesto per l&#39;esperimento. Dopo 16 ore in completo supporto a 37 ° C, 5% CO 2, macrofagi sarà nuovamente aderire al supporto. </li></ol> 5. Memorizzazione BMDMs <ol><li> Raccogliere BMDMs isolate (passo 4,3). Centrifugare a 450 xg per 10 min. Nota: BMDMs possono essere congelati in azoto liquido. </li><li> Risospendere pellet cellulari in congelamento supporto costituito da 10% DMSO e 90% FCS ad una concentrazione finale di 4 x 10 6 cellule / ml e pipetta 1 ml in ciascuna fiala. </li><li> Congelare le cellule ad una velocità di raffreddamento di 1 ° C / min. Dopo 24 ore, trasferire la fiala ad un contenitore di azoto liquido per la conservazione a lungo termine. </li></ol>

<ol><li>Rutherford, M. S., Witsell, A., Schook, L. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+generating+functionally+heterogeneous+macrophages%3A+chaos+revisited%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Leukocyte+Biol%22%5BJournal%5D)">Mechanisms generating functionally heterogeneous macrophages: chaos revisited.</a> J. Leukocyte Biol. 53, 602-618 (1993).</li>
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<li>Underhill, D. M., Ozinsky, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phagocytosis+of+microbes%3A+complexity+in+action%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Phagocytosis of microbes: complexity in action.</a> Annu. Rev. Immunol. 20, 825-852 (2002).</li>
<li>Castagna, A., Polati, R., Bossi, A. M., Girelli, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monocyte%2Fmacrophage+proteomics%3A+recent+findings+and+biomedical+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Rev.+Proteomics%22%5BJournal%5D)">Monocyte/macrophage proteomics: recent findings and biomedical applications.</a> Expert Rev. Proteomics. 9, 201-215 (2012).</li>
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<li>Barry, A. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impaired+stimulation+of+p38alpha-MAPK%2FVps41-HOPS+by+LPS+from+pathogenic+Coxiella+burnetii+prevents+trafficking+to+microbicidal+phagolysosomes%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Host+Microbe%22%5BJournal%5D)">Impaired stimulation of p38alpha-MAPK/Vps41-HOPS by LPS from pathogenic Coxiella burnetii prevents trafficking to microbicidal phagolysosomes.</a> Cell Host Microbe. 12, 751-763 (2012).</li>
<li>Henry, R. M., Hoppe, A. D., Joshi, N., Swanson, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+uniformity+of+phagosome+maturation+in+macrophages%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">The uniformity of phagosome maturation in macrophages.</a> J. Cell Biol. 164, 185-194 (2004).</li>
<li>Sundaramurthy, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integration+of+Chemical+and+RNAi+Multiparametric+Profiles+Identifies+Triggers+of+Intracellular+Mycobacterial+Killing%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Host+Microbe%22%5BJournal%5D)">Integration of Chemical and RNAi Multiparametric Profiles Identifies Triggers of Intracellular Mycobacterial Killing.</a> Cell Host Microbe. 13, 129-142 (2013).</li>
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</ol>

Non ci sono conflitti di interesse dichiarati.

Il protocollo qui descritto dettaglia un metodo per produrre un gran numero di BMDMs. BMDM sono cellule primarie e hanno la funzione e le proprietà dei macrofagi differenziati da monociti biologico perché ci sono maturo, in contrasto con linee cellulari di macrofagi, che sono immaturi. BMDMs possono essere utilizzati per lo screening genetico (RNAi), screening di farmaci, studi funzionali, studi di interazione ospite-patogeno e molte altre aree di indagine. La procedura qui presentata è molt...

Un aspetto significativo della funzione dei macrofagi è il loro ruolo nella immunità innata e adattativa. A causa della loro capacità di fagocitare particelle inerti, batteri o parassiti, i macrofagi sono una prima linea di difesa contro gli invasori stranieri. Una volta interiorizzato, i microbi sono degradati all&#39;interno phagolysosomes. I macrofagi anche inviare segnali di reclutamento per e gli antigeni presenti di altre cellule immunitarie come i linfociti T. I macrofagi sono derivati ​​da monociti. Monociti sorgono nel midollo osseo da cellule staminali mieloidi e migrano sangue periferico e vari tessuti dove si differenziano in macrofagi. Si stima che un topo adulto sana contiene circa 10 8 macrofagi che sono distribuiti in tutto il corpo in vari organi e tessuti (Tabella 1) 1,2. I macrofagi mostrano grande fenotipica e diversità funzionale a causa della loro capacità di adattarsi al loro 3,4 microambiente. Il MACROP più importantestruttura hage è la loro attività microbicida, che è definito dalla capacità di fagocitare i microbi e distruggerli. La risposta fagocitaria è definita mediante l&#39;attivazione di reti di segnalazione complesse che vengono stimolati dal contatto microbica, quindi, macrofagi modulano l&#39;espressione genica in modo appropriato in risposta a diversi stimoli. Dopo la fagocitosi, i microbi vengono eliminati in una struttura chiamata fagolisosoma, tuttavia, molti microbi patogeni hanno sviluppato strategie per sovvertire la funzione microbicida dei macrofagi 5. La diversità dei meccanismi di sovversione che sono utilizzati da diverse specie microbiche è un testamento alla complessità del processo di fagocitosi 6 e fagolisosoma biogenesi. Le malattie infettive sono i principali problemi di salute umana, e numerosi meccanismi e molecole partecipano alle attività antimicrobiche macrofagi. Inoltre, gli obiettivi delle proprietà microbicida che vengono dirottati da microbi rimangono sconosciute, quindi, vi è una notificaxplosion di interesse per gli aspetti evolutivi, genetici e biochimici delle interazioni ospite-patogeno che ha rinnovato l&#39;attenzione scientifiche per quanto riguarda i macrofagi. Attualmente, la maggior parte della ricerca nel campo viene fatta su macrofagi linee cellulari, che differiscono da macrofagi primari dell&#39;attività fagocitaria, la produzione di citochine e la regolazione del burst ossidativo. Inoltre, sono meno adatti per microscopia. Per studiare l&#39;interazione macrofagi-agenti patogeni si consiglia di utilizzare i macrofagi primari, come il midollo osseo macrofagi derivati ​​(BMDMs), che presentano caratteristiche più fisiologiche. Inoltre, è possibile lavorare su BMDMs geneticamente modificati, perché questi macrofagi possono essere isolati direttamente da topi transgenici e, con la disponibilità di nuove tecnologie come transfezione lentivirale, il loro profilo di espressione genica può essere alterato da sovraespressione del gene o RNA interferenza. Qui, si descrive un procedimento per differenziare murino osso mfreccia in macrofagi che forniranno un gran numero di macrofagi in 7 giorni per varie analisi funzionale, come la proteomica 7, trascrittomica 8, traffico intracellulare studia 9, studi dinamici 10, schermi genetiche (RNAi) e lo screening di stupefacenti 11.

<table><tbody><tr><td>DMEM</td><td>Gibco Life Technologies</td><td>21969-035</td><td></td></tr><tr><td>Siero fetale di vitello</td><td>Gibco Life Technologies</td><td>10270</td><td></td></tr><tr><td>Penicillina/Streptomicina</td><td>Gibco Life Technologies</td><td>15070</td><td></td></tr><tr><td>Glutammina</td><td>Gibco Life Technologies</td><td>25030-024</td><td></td></tr><tr><td>PBS (10x)</td><td>Lonza</td><td>BEM515F</td><td></td></tr><tr><td>Lisi dei globuli rossi tampone</td><td>Sigma</td><td>R7757</td><td></td></tr><tr><td>Filtro cellulare 70 &mu; m Nylon</td><td>BD Falcon</td><td>352350</td><td></td></tr><tr><td>Filtro cellulare 40 &mu; m Nylon</td><td>BD Falcon</td><td>352340</td><td></td></tr><tr><td>provette da 50 ml</td><td>qualsiasi fornitore</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>provette da 15 ml</td><td>qualsiasi fornitore</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>piastre di Petri (100/20 mm)</td><td>qualsiasi fornitore</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>piastre di Petri trattate con coltura (35/10 mm)</td><td>qualsiasi fornitore</td><td>n/a</td><td></td></tr></tbody></table>

derivate dal midollo osseo macrofagi production

Bone Marrow-derived Macrophage Production

I macrofagi sono componenti critici delle risposte immunitarie innate e adattative, e sono la prima linea di difesa contro gli invasori stranieri a causa delle loro potenti attività microbicida. I macrofagi sono ampiamente distribuiti in tutto il corpo e sono presenti negli organi linfoidi, fegato, polmoni, tratto gastrointestinale, sistema nervoso centrale, le ossa e la pelle. A causa della loro ripartizione, partecipano in un&#39;ampia gamma di processi fisiologici e patologici. I macrofagi sono cellule altamente versatile in grado di riconoscere alterazioni microambientali e per mantenere l&#39;omeostasi tissutale. Numerosi agenti patogeni si sono evoluti meccanismi per utilizzare i macrofagi come cavalli di Troia per sopravvivere, replicarsi in, e infettare sia gli esseri umani e gli animali e per diffondere in tutto il corpo. La recente esplosione di interesse per gli aspetti evolutivi, genetici e biochimici delle interazioni ospite-patogeno ha rinnovato l&#39;attenzione scientifiche per quanto riguarda i macrofagi. Qui, descriviamo unprocedura per isolare e coltivare macrofagi da midollo osseo murino che fornirà un gran numero di macrofagi per studiare le interazioni ospite-patogeno nonché altri processi.

Lo scopo di questo metodo era di ottenere facilmente un gran numero di macrofagi in pochi giorni. La preparazione di cellule di midollo osseo è illustrato in Figura 1. Le ossa della zampa posteriore sono stati raccolti e fracassato in un mortaio. Una volta che i macrofagi residenti sono stati rimossi dalla preparazione di cellule di midollo osseo, cellule del midollo osseo sono state incubate con GM-CSF (giorno 0). Dopo 3 giorni, le cellule, che erano intorno e nonadherent prima cultura, iniziano a diff...

I macrofagi sono da tempo riconosciuti come una componente critica delle risposte immunitarie innate e adattative. La recente esplosione di conoscenze relative agli aspetti evolutivi, genetici e biochimici dell&#39;interazione tra macrofagi e microbi ha rinnovato l&#39;attenzione scientifica ai macrofagi. Questo articolo descrive un metodo per differenziare macrofagi da midollo osseo di topo.

Derivate dal midollo osseo macrofagi Production

Macrophages are critical components of the innate and adaptive immune responses, and they are the first line of defense against foreign invaders because ...

L'obiettivo generale di questa procedura è generare macrofagi a partire da colture cellulari derivate dal midollo osseo e dall'urina. Questo viene innanzitutto ottenuto estraendo il midollo osseo dalle zampe posteriori del topo. Nel secondo passaggio, i macrofagi residenti nel midollo osseo vengono rimossi e quindi le cellule del midollo osseo vengono ulteriormente coltivate in condizioni di differenziamento verso i macrofagi.Quando le cellule del midollo osseo si sono differenziate in macrofagi, possono essere raccolte per l'analisi sperimentale. In definitiva, la microscopia confocale può essere utilizzata per dimostrare la localizzazione del LPS batterico all'interno dei macrofagi derivati dal midollo osseo e dei compartimenti endocitici acidi. Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come la coltivazione di linee cellulari di macrofagi, è che è possibile ottenere un elevato numero di macrofagi primari.La dimostrazione visiva del metodo è fondamentale poiché i passaggi di auto-produzione sono difficili da apprendere e richiedono pratica; per ottenere successo, disinfettare la cute di un topo eutanasizzato con etanolo al 70%. Praticare un'incisione

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Immunologia e Infezioni

In questo video, dimostriamo l'attivazione dei macrofagi derivati dal midollo osseo in risposta al lipopolisaccaride batterico e all'immunoglobulina per via endovenosa.

Attivazione di macrofagi derivati dal midollo osseo di topo in risposta agli anticorpi

L'articolo descrive un semplice facilmente...

Indagine di polarizzazione dei macrofagi Utilizzando Bone Marrow macrofagi derivati

Presentiamo un protocollo semplice ed efficiente per la generazione di macrofagi umani. Buffy coats sono trattati con doppia centrifugazione in gradiente di densità e monociti isolati sono poi differenziate a macrofagi in sacchi di coltura cellulare teflonato. Questo massimizza i rendimenti macrofagi e facilita la raccolta di cellule per esperimenti successivi.

Isolamento di monociti umani con un doppio centrifugazione in gradiente e la loro differenziazione a macrofagi in coltura cellulare Borse teflonato

Descriviamo qui un semplice protocollo per isolare i macrofagi peritoneali murini. Questa procedura è seguita dall'estrazione dell'RNA per effettuare l'analisi dell'espressione genica dopo la stimolazione dei recettori Toll-like.

Isolamento di murini peritoneale macrofagi di effettuare analisi di espressione genica Al Toll-like recettori stimolazione

La riprogrammazione metabolica è una caratteristica e un prerequisito per la polarizzazione dei macrofagi M1 e M2. Questo manoscritto descrive un test per la misurazione dei parametri fondamentali della glicolisi e della funzione mitocondriale nei macrofagi derivati dal midollo osseo di topo. Questo strumento può essere applicato per studiare come particolari fattori influenzano il metabolismo e il fenotipo del macrofago.

Caratterizzazione metabolica di Polarized M1 e M2 macrofagi derivate dal midollo osseo Utilizzando analisi in tempo reale extracellulare Flux

Le cellule del midollo osseo coltivate con il fattore stimolante le colonie di macrofagi granulociti (GM-CSF) generano una coltura eterogenea contenente macrofagi e cellule dendritiche (DC). Questo metodo evidenzia l'utilizzo del legame MHCII e ialuronano (HA) per differenziare i macrofagi dalle DC nella coltura GM-CSF. I macrofagi in questa cultura hanno molte somiglianze con i macrofagi alveolari.

Generazione e identificazione di GM-CSF Derivato alveolo-come macrofagi e dendritiche cellule da midollo osseo di topo

Viene presentato un protocollo per la coltura cellulare di macrofagi derivati da monociti umani differenziati da fattori stimolanti le colonie di macrofagi (M-CSF). Il protocollo utilizza la crioconservazione dei monociti accoppiata alla loro differenziazione di massa in macrofagi. Quindi i macrofagi raccolti possono essere seminati in pozzetti di coltura alle densità cellulari richieste per l'esecuzione degli esperimenti.

Cultura dei macrofagi macrofagi colony-stimulating factor differenziata umana derivate da monociti

Questo protocollo descrive la robusta generazione di macrofagi da cellule staminali pluripotenti indotte dall'uomo e metodi per la loro successiva caratterizzazione. L'espressione del marcatore di superficie cellulare, l'espressione genica e i saggi funzionali vengono utilizzati per valutare il fenotipo e la funzione di questi macrofagi derivati da iPSC.

Produzione e caratterizzazione di macrofagi umani da cellule staminali pluripotenti

Questo protocollo è stato stabilito per coltivare macrofagi murini primari carenti di tetraidrobiopterina (BH4) e ossido nitrico sintasi inducibile (iNOS) per studiare la biologia no-redox. Lo studio si concentra sulla riduzione della potenziale contaminazione di BH4 e di altri artefatti trovati nei metodi tradizionali di isolamento e coltura che possono confondere i risultati sperimentali e l'interpretazione dei risultati.

Isolamento e coltura in vitro di macrofagi derivati dal midollo osseo per lo studio della biologia NO-Redox

Il presente protocollo descrive l'isolamento e la coltura di macrofagi derivati dal midollo osseo dai topi.

Isolamento e coltura di macrofagi derivati dal midollo osseo da topi

Questo protocollo descrive un metodo semplice e non enzimatico per isolare cellule di midollo osseo neonatale di topo di 7-9 giorni e generare macrofagi differenziati utilizzando un surnatante di cellule L929 come fonte di fattore stimolante le colonie di granulociti (M-CSF). I macrofagi derivati dal midollo osseo sono stati ulteriormente analizzati per gli antigeni di superficie F4/80, CD206, CD11b e la competenza funzionale.

Isolamento del midollo osseo di topo neonatale e preparazione di macrofagi derivati dal midollo osseo

Impara a differenziare macrofagi dal midollo osseo di topo per studi di immunologia e biologia cellulare. Questo metodo fornisce grandi quantità di macrofagi primari per analisi sperimentali accurate.

Derivate dal midollo osseo macrofagi Production

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