Name: Lo sviluppo del liofilizzato Loop-mediate isotermici amplificazione reagenti per la rilevazione di Burnetii Coxiella (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-04-18T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 27 s
Description: Impara il metodo LAMP con reagenti liofilizzati per la rilevazione di Coxiella burnetii in campioni clinici. Questo protocollo semplifica la diagnosi della febbre Q in contesti con risorse limitate.

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Questa ricerca è stata sostenuta dal Naval Medical Research Center, la ricerca unità di lavoro 6000.RAD1.J.A0310. Le opinioni espresse in questo articolo sono quelle degli autori e non riflettono necessariamente la politica ufficiale o la posizione del Dipartimento della Marina, Dipartimento della Difesa, o il governo degli Stati Uniti. Wei-Mei Ching è un dipendente del governo degli Stati Uniti. Questo lavoro è stato preparato come parte dei suoi doveri d&#39;ufficio. Titolo 17 USC §105 prevede che &#39;La protezione del copyright sotto questo titolo non è disponibile per qualsiasi lavoro del governo degli Stati Uniti.&#39; Titolo 17 USC §101 definisce un lavoro del governo degli Stati Uniti come un lavoro preparato dal membro del servizio militare o dipendente del governo degli Stati Uniti, come parte delle funzioni ufficiali di quella persona.

1. Preparare plasmidi DNA diluizioni come standard per LAMP Reazione <ol><li> Utilizzare uno spettrofotometro per misurare la densità ottica (OD) a 260 nm per determinare il plasmide (contenente gene target IS1111a di C. burnetii RSA 493) concentrazione di DNA. Un OD 260 di 1 equivale a 50 mg / mL di DNA. </li><li> Convertire la quantità di DNA plasmide nel numero di copie. Poiché la dimensione del plasmide è 6.330 bp, il peso molecolare di questo plasmide è 4,1 x 10 6 g (6.330 bp x 649 g / bp). La concentrazione di DNA del plasmide è 34,2 ng / ml (come determinato dal punto 1.1). 1 ml di questo campione di DNA contiene 34,2 ng di DNA plasmide, pari a 5 x 10 9 copie (34,2 x 10 -9 g / 4,1 x 10 6 gx 6,02 x 10 23) di DNA. </li><li> Aggiungere 10 ml di DNA plasmidico (5 x 10 9 copie / ml) a 90 ml di acqua per una diluizione di 10 volte per fare un campione di DNA di 5 x 10 8 copie / ml. </li><li> Ripetere passaggio 1.3 per preparare campioni di DNA di 5 x 10 7, 5 x 10 6, 5 x 10 5, 5 x 10 4, 5 x 10 3, 5 x 10 2, 5 x 10 1 e 5 x 10 0 copie / ul. </li></ol> 2. Preparare modello di DNA da campioni per la lampada di reazione <ol><li> Eseguire l&#39;estrazione del DNA da campioni di plasma umano utilizzando un kit mini DNA commerciale secondo il protocollo del produttore. Utilizzare un totale di 200 campioni microlitri per l&#39;estrazione ed eluire DNA estratto in un volume di 20 ml. </li></ol> 3. Preparare 2x Buffer LAMP Reazione <ol><li> Mescolare 200 ml di 10x Pol Buffer, 320 ml di 5 M trimetilglicina, 12 ml di 1 M MgSO 4, 280 ml ​​di miscela dNTP (10 mm ciascuno) e 188 microlitri di acqua per fare 1 ml di tampone 2x LAMP. Miscelare impulso-vortex per 10 secondi. </li></ol> 4. Eseguire lampada standard di reazione <ol><li> Mescolare 12,5 ml di 2x LATampone MP (come preparato al punto 3; 40 mM Tris-HCl (pH 8,8), 20 mM KCl, 16 mM MgSO 4, 20 mM (NH 4) 2 SO 4, 0,2% Triton X-100, 1,6 M trimetilglicina, 1.4 mM miscela dNTP), 1,2 ml di miscela di primer, 1 ml di polimerasi Bst DNA (8 U / ml), e 5,3 l di acqua per fare miscela di reazione (20 ml) in un tubo di 0,2 ml PCR. </li><li> Aggiungere 5 ml di DNA (dal punto 1 o 2) alla miscela di reazione di 20 microlitri e mescolare bene. </li><li> Chiudere tubo e incubare a 60 ° C per 60 minuti in un bagnomaria o riscaldamento. Questa è la temperatura di reazione ottimale determinata in precedenza. </li><li> Aggiungere 5 ml di 10x tampone di caricamento del gel di interrompere la reazione. </li><li> Carico 5 microlitri di prodotti di reazione di un gel di agarosio al 2% colorato con intercalanti macchia dell&#39;acido nucleico. </li><li> Eseguire gel a 100 V per 35 min in tampone 1x TBE. </li><li> Visualizzare i risultati di raggi UV. </li></ol> 5. Eseguire Reazione lampada con ricostituitoreagenti <ol><li> Mescolare 125 ml di 10x Pol Buffer, 200 ml di 5 M trimetilglicina, 7,5 ml di 1 M MgSO 4, 667.5 ml di acqua per fare 1 ml di tampone di ricostituzione. Miscelare impulso-vortex per 10 secondi. </li><li> Rimuovere i tubi che contengono i reagenti liofilizzati dal sacchetto di alluminio sigillato. Non utilizzare i tubi se la borsa foglio di alluminio non è sigillato o se è danneggiato. </li><li> Aggiungere 20 ml di tampone di ricostituzione in ciascuna provetta per risospendere reagenti liofilizzati. </li><li> Mescolare pipettando tampone su e giù per 5 volte. Date un&#39;occhiata per assicurarsi che i reagenti liofilizzati sono completamente ri-sospesi. La polvere bianca dovrebbe scomparire nel tubo. </li><li> Aggiungere 5 ml di DNA stampo (dal punto 1 o 2) per i reagenti ricostituiti e mescolare bene. </li><li> Chiudere tubo e incubare a 60 ° C per 60 minuti in un bagnomaria o riscaldamento. </li><li> Aggiungere 5 ml di 10x tampone di caricamento del gel di interrompere la reazione. </li><li> Carico 5 ml di reazioneprodotti ad un gel di agarosio al 2% colorato con intercalanti macchia dell&#39;acido nucleico. </li><li> Eseguire gel a 100 V per 35 min in tampone 1x TBE. </li><li> Visualizzare i risultati di raggi UV. </li></ol> 6. Eseguire LAMP Reazione con tampone di ricostituzione contenenti HNB o fluorescente intercalante Dye <ol><li> Mescolare 125 ml di 10x Pol Buffer, 200 ml di 5 M trimetilglicina, 7,5 ml di 1 M MgSO 4, 7,5 ml di 20 mm HNB (o 12,5 ml di 100x fluorescente intercalante colorante) e 660 ml (o 655 ml) di acqua a fare 1 ml di tampone di ricostituzione. Miscelare impulso-vortex per 10 secondi. </li><li> Utilizzare il buffer ricostituito preparato nella sezione 6 di ripetere i passi 5.2 - 5.6. </li><li> Visualizzare i risultati ad occhio nudo (reazione contenente HNB) o una luce UV (reazione contenente colorante intercalante fluorescente). </li></ol> 7. Eseguire in tempo reale reazione lampada con tubo Scanner <ol><li> Aggiungere 5 microlitri DNA alla reconstitutreagenti ED contenenti colorante fluorescente intercalante, chiudere il tubo e inserirlo allo scanner tubo. </li><li> Impostare temperatura di incubazione a 60 ° C. Misurare la fluorescenza a 520 nm per 60 min. </li></ol>

<ol><li>Anderson, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diagnosis+and+management+of+Q+fever+United+States%2C+2013%3A+recommendations+from+CDC+and+the+Q+Fever+Working+Group%5BTitle%5D)+AND+%22MMWR+Recomm.+Rep%22%5BJournal%5D)">Diagnosis and management of Q fever United States, 2013: recommendations from CDC and the Q Fever Working Group.</a> MMWR Recomm. Rep. 62 (3), 1-30 (2013).</li>
<li>Rolain, J. M., Boulos, A., Mallet, M. N., Raoult, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correlation+between+ratio+of+serum+doxycycline+concentration+to+MIC+and+rapid+decline+of+antibody+levels+during+treatment+of+Q+fever+endocarditis%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob.+Agents+and+Chemother%22%5BJournal%5D)">Correlation between ratio of serum doxycycline concentration to MIC and rapid decline of antibody levels during treatment of Q fever endocarditis.</a> Antimicrob. Agents and Chemother. 49 (7), 2673-2676 (2005).</li>
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<li>Turra, M., Chang, G., Whybrow, D., Higgins, G., Qiao, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diagnosis+of+acute+Q+fever+by+PCR+on+sera+during+a+recent+outbreak+in+rural+South+Australia%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+N+Y+Acad.+Sci%22%5BJournal%5D)">Diagnosis of acute Q fever by PCR on sera during a recent outbreak in rural South Australia.</a> Ann. N Y Acad. Sci. 1078, 566-569 (2006).</li>
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<li>Chen, H. W., Ching, W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+loop-mediated+isothermal+amplification+assays+for+rapid+and+easy+detection+of+Coxiella+Burnetii%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Microbiol+Methods%22%5BJournal%5D)">Development of loop-mediated isothermal amplification assays for rapid and easy detection of Coxiella Burnetii.</a> J. Microbiol Methods. 107, 176-181 (2014).</li>
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</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

In precedenza, abbiamo sviluppato un saggio LAMP sensibile e specifico mira l&#39;elemento di inserimento IS1111a 14. L&#39;elemento IS1111 è stato scelto perché è altamente conservata tra i diversi ceppi di C. burnetii e il suo alto numero di copie (7-110) nei batteri (Klee 2006). I nostri risultati hanno mostrato che LAMP può rilevare circa 25 copie dell&#39;elemento IS1111, che può correlare il meno una copia cromosomale di Coxiella DNA. In questo studio, polime...

Il piccolo batterio Gram-negativi Coxiella burnetii è l&#39;agente eziologico della febbre Q, che è una zoonosi in tutto il mondo. A causa della distribuzione a livello mondiale di febbre Q e l&#39;alta infettività di C. burnetii, militari e civili personale statunitense dispiegate all&#39;estero sono a rischio di infezione nelle zone endemiche. La febbre Q si manifesta in due forme: infezioni acute e croniche. Acuta febbre Q si presenta con sintomi simil-influenzali, l&#39;epatite, o polmonite, ed è di solito una malattia autolimitante con un basso tasso di mortalità. Cronica febbre Q, mentre meno diffuso, si traduce spesso in endocardite, che ha un tasso di mortalità molto più alto se non trattata 1,2. Pertanto, la diagnosi precoce per guidare un trattamento appropriato è fondamentale per la cura del paziente. Reazione a catena della polimerasi (PCR) e in tempo reale PCR quantitativa (qPCR) test sono stati sviluppati per la rilevazione C. DNA burnetii in colture cellulari e campioni clinici 3-5 &lt;/ Sup&gt;. Sia PCR e qPCR sono costose e spesso non facilmente disponibili in aree con risorse limitate per il lavoro di routine. Originariamente descritto da Notomi 6, l&#39;amplificazione isotermica loop-mediata (LAMP) offre un metodo alternativo amplificazione del DNA. LAMP utilizza polimerasi Bst DNA per la sintesi del DNA filone spostamento lungo con i set di primer appositamente progettati che riconoscono almeno sei regioni indipendenti del gene bersaglio. Il vantaggio più significativo di LAMP è che l&#39;amplificazione avviene in condizioni isoterme. Pertanto, è necessario solo un bagno d&#39;acqua, blocco di riscaldamento o di un incubatore. Questo metodo è stato utilizzato per rilevare diversi patogeni rickettsie 7-9. Visualizzazione dei prodotti di DNA amplificati mediante elettroforesi su gel è il metodo più accurato che può differenziare i veri positivi da falsi positivi a causa di amplificazione non specifica. Tuttavia le procedure necessarie per elettroforesi su gel non sono pratici per ar risorse limitateEAS. Diversi metodi alternativi sono stati sviluppati per rilevare i prodotti di reazione. Queste alternative, come torbidità derivante dalla formazione di magnesio pirofosfato 10 o utilizzando un colorante intercalante fluorescente da visualizzare sotto luce UV 11,12 sono più favorevoli di esecuzione di un gel. I reagenti LAMP erano stabile per un mese se conservato a 25 ° C e 37 ° C, che sono temperature ambientali nei paesi tropicali e sub-tropicali, dove la febbre Q è endemica 13. Un test LAMP stato sviluppato nel nostro laboratorio per rilevare la presenza di C. burnetii in campioni di plasma 14. Qui si descrive un protocollo semplice per la preparazione della miscela di reazione LAMP dai reagenti liofilizzati. I reagenti liofilizzati sono stabili per un mese se conservati a RT. Quando combinato con un metodo di visualizzazione facile, questo è un metodo ideale da utilizzare per la rilevazione C. burnetii in un ambiente risorse limitate.

<table><tbody><tr><td>Primer LAMP</td><td>Eurofins MWG operone</td><td>10 nmol, senza sale</td><td>Sequenza progettata dal cliente</td></tr><tr><td>Bst DNA polimerasi</td><td>New England Biolabs</td><td>M0275L</td><td>8 unità/ml</td></tr><tr><td>10x Thermo pol</td><td>tampone New England Biolabs</td><td>B9004S</td><td></td></tr><tr><td>miscela dNTP</td><td>New England Biolabs</td><td>N0447L</td><td>10 mM ciascuno</td></tr><tr><td>Betaina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>B0300</td><td>5 M, Trimetilglicina</td></tr><tr><td>Solfato di magnesio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M3409-1ML</td><td>1 M</td></tr><tr><td>10x Bluejuice</td><td>Invitrogen</td><td>10816-015</td><td>tampone di caricamento gel</td></tr><tr><td>SYBR verde</td><td>Invitrogen</td><td>S7585</td><td>10.000x, visualizzare i prodotti in tubi</td></tr><tr><td>GelRed</td><td>Phenix Research Products</td><td>RGB-4103</td><td>10.000x, visualizzare i prodotti in gel</td></tr><tr><td>Reagenti liofilizzati</td><td>Gene Reach</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Idrossinaptolo blu</td><td>Fluka</td><td>33936-10G</td><td></td></tr><tr><td>ESEQuant tube scanner</td><td>Qiagen</td><td></td><td>rilevamento in tempo reale</td></tr></tbody></table>

lo sviluppo del liofilizzato loop-mediate isotermici amplificazione reagenti per la rilevazione di<em&gt; burnetii coxiella</em

The Development of Lyophilized Loop-mediated Isothermal Amplification Reagents for the Detection of Coxiella burnetii

Coxiella burnetii, l&#39;agente che causa la febbre Q, è un batterio intracellulare obbligato. Saggi diagnostici basati sulla PCR sono stati sviluppati per la rilevazione C. DNA burnetii in colture cellulari e campioni clinici. PCR richiede attrezzature specializzate ed estesa formazione degli utenti finali, e quindi non è adatto per il lavoro di routine specialmente in una zona risorse limitate. Abbiamo sviluppato un saggio loop-mediata di amplificazione isotermica (LAMP) per rilevare la presenza di C. burnetii in campioni di pazienti. Questo metodo viene effettuata ad una sola temperatura di circa 60 ° C in un bagnomaria o riscaldamento. La sensibilità di questo test LAMP è molto simile a PCR con un limite di rilevazione di circa 25 copie per reazione. La relazione descrive la preparazione della reazione con reagenti liofilizzati e visualizzazione dei risultati usando blu di idrossinaftolo (HNB) o una lampada UV con colorante fluorescente intercalante nella reazione. I reagenti LAMP erano lyophilized e conservato a temperatura ambiente (RT) per un mese senza perdita di sensibilità di rilevazione. Questo test è particolarmente robusta LAMP perché la preparazione della miscela di reazione non comporta complessi passaggi. Questo metodo è ideale per l&#39;utilizzo in ambienti con risorse limitate, dove la febbre Q è endemica.

I reagenti LAMP liofilizzati all&#39;interno del tubo 0,2 ml contiene polimerasi Bst DNA, primer, e dNTP. 20 microlitri di tampone di ricostituzione è usato per risospendere i reagenti liofilizzati. La Figura 1 mostra i risultati di reazione LAMP su gel di agarosio con reagenti appena preparati e reagenti liofilizzati. Il reagente liofilizzato non riduce la sua attività. Reazioni LAMP preparati da entrambi i reagenti in grado di rilevare 25 copie del DNA stampo....

Abbiamo descritto qui un semplice metodo di amplificazione isotermica mediata da loop (LAMP) utilizzando reagenti liofilizzati per la rilevazione di C. burnetii in campioni di pazienti.

Lo sviluppo del liofilizzato Loop-mediate isotermici amplificazione reagenti per la rilevazione di<em&gt; Burnetii Coxiella</em

Coxiella burnetii, the agent causing Q fever, is an obligate intracellular bacterium. PCR based diagnostic assays have been developed for detecting C. ...

L'obiettivo generale di questo esperimento è sviluppare un semplice metodo LAMP utilizzando reagenti liofilizzati per la rilevazione di C.burnetii in campioni di pazienti. Il vantaggio principale di questo protocollo è che non è richiesta alcuna refrigerazione per la conservazione dei reagenti. Questo metodo è ideale per l'uso in contesti con risorse limitate in cui la febbre Q è endemica.La procedura sarà dimostrata da Tatiana, un'assistente del nostro laboratorio. A partire dal DNA del gene bersaglio IS1111a da C.burnetii RSA493, determinare la concentrazione del plasmide mediante spettrofotometro a 260 nanometri. Convertire la concentrazione del DNA plasmidico in numero di copie utilizzando i seguenti calcoli, in cui 6330 corrisponde alla lunghezza in paia di basi del plasmide e 34,2 nanogrammi per microlitro è la concentrazione del plasmide, appena determinata mediante spettrofotometro.Quindi preparare diluizioni seriali del plasmide da 8 a 10 volte per ottenere il seguente numero di copie per microlitro. Per preparare il template di DNA per la reazione LAMP, partire da 200 microlitri di campioni di plasma umano ed estrarre il DNA utilizzando il kit di miniprep del DNA seguendo il protocollo del produttore. Diluire il campione finale in un volume di 20 microlitri.Preparare 1 millilitro di tampone di reazione LAMP 2x combinando i seguenti reagenti. Mescolare mediante vortex per 10 secondi. Per eseguire la reazione LAMP standard, in un tubo PCR da 0,2 millilitri, mescolare 12,5 microlitri di tampone LAMP 2x, 1,2 microlitri di mix di primer, 1 microlitro di DNA polimerasi Bst e 5,3 microlitri di acqua.Successivamente, aggiungere 5 microlitri di DNA alla reazione da 20 microlitri e mescolare accuratamente, quindi incubare a 60 gradi Celsius in un bagno termico o blocco riscaldante per 60 minuti. Al termine dell'incubazione, arrestare la reazione aggiungendo 5 microlitri di buffer di carico per gel 10x al tubo. Quindi, caricare 5 microlitri dei prodotti di reazione su un gel di agarosio al 2% colorato con un colorante intercalante per acidi nucleici.Eseguire l'elettroforesi in TBE 1x a 100 volt per 35 minuti, quindi utilizzare la luce UV per visualizzare i risultati. Per eseguire la reazione LAMP con reagenti ricostituiti, preparare 1 millilitro di tampone di ricostituzione mescolando i seguenti reagenti. Mescolare mediante vortex a impulsi per 10 secondi.Successivamente, rimuovere le provette contenenti i reagenti liofilizzati dal sacchetto sigillato in foglio di alluminio. Per il Passaggio 4.2, è molto importante assicurarsi che il sacchetto in foglio di alluminio sia correttamente sigillato prima di aprirlo. Non utilizzare le provette se il sacchetto di alluminio non è sigillato o è danneggiato.Aggiungere 20 microlitri di tampone di ricostituzione a ciascuna provetta di reagenti e mescolare aspirando e dispensando cinque volte con una pipetta. Assicurarsi che i reagenti liofilizzati siano completamente risospesi. Successivamente, aggiungere 5 microlitri di stampo di DNA ai reagenti ricostituiti e mescolare accuratamente.Incubare a 60 gradi Celsius in un bagno d'acqua o blocco termoregolato per 60 minuti. Per arrestare la reazione al termine dell'incubazione, aggiungere 5 microlitri di buffer di carico per gel 10x, quindi caricare 5 microlitri dei prodotti di reazione su un gel di agarosio al 2% colorato con un colorante intercalante per acidi nucleici. Eseguire l'elettroforesi in buffer TBE 1x a 100 volt per 35 minuti, quindi visualizzare i risultati mediante luce UV.Per eseguire la reazione LAMP con blu idrossinaftolo, o HNB, o un colorante intercalante, preparare 1 millilitro di tampone di ricostituzione unendo i seguenti reagenti che includono HNB o un colorante intercalante fluorescente. Mescolare mediante vortex a impulsi per 10 secondi. Eseguire la reazione LAMP come appena descritto e utilizzare la luce UV o l'occhio nudo per visualizzare i risultati.Per eseguire la reazione LAMP con uno scanner per provette, aggiungere 5 microlitri di DNA ai reagenti ricostituiti contenenti il colorante fluorescente intercalante, quindi inserire la provetta chiusa nello scanner. Impostare la temperatura di incubazione a 60 gradi Celsius e misurare la fluorescenza a 520 nanometri per 60 minuti. Questa figura mostra i risultati della reazione LAMP su gel di agarosio con reagenti appena preparati e reagenti liofilizzati.Osservare che il reagente liofilizzato mantiene la sua attività. Le reazioni LAMP preparate con entrambi i reagenti hanno rilevato 25 copie del template di DNA. In questa figura è mostrato il rilevamento dei prodotti della reazione con HNB o con colorante fluorescente intercalante nella reazione.L'aggiunta di HNB alla reazione produce un cambiamento visivo del colore, dal viola al blu, con 25, 50 e 100 copie di DNA stampo presenti nelle reazioni. Inoltre, l'inclusione di un colorante intercalante fluorescente nella reazione mostra un segnale fluorescente intenso alla luce UV quando sono presenti numeri simili di copie di DNA. Qui vengono mostrati i risultati ottenuti utilizzando lo scanner per provette per monitorare in tempo reale i segnali fluorescenti con il colorante intercalante fluorescente.I segnali fluorescenti sono superiori alla linea di base dopo 14, 18, 21 e 23 minuti, con 10^6, 10^4, 10^3 e 100 copie di modello di DNA nelle reazioni. Una volta acquisita padronanza, questa procedura può essere completata in 90 minuti. Dopo il suo sviluppo, questo saggio ha aperto la strada a una diagnosi rapida dell'infezione da Coxiella burnetii in aree con risorse limitate.Dopo aver visionato questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione di come ricostituire i reagenti LAMP liofilizzati. Non dimenticare che i campioni prelevati dai pazienti possono essere infettivi e che durante l'esecuzione di questa procedura è sempre necessario adottare le opportune precauzioni di sicurezza.

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Ricerca

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologia e Infezioni

Fonte: Domesle, K. J., et al. Amplificazione isotermica mediata ad anello per lo screening della salmonella in alimenti animali e la conferma della salmonella tramite isolamento in coltura.  J. Vis. Esp. (2020).Questo video dimostra la tecnica di amplificazione isotermica mediata da loop (LAMP) per rilevare un gene batterico bersaglio amplificando il DNA a temperatura costante. La miscela di reazione viene preparata aggiungendo un mix master isotermico, primer specifici per il gene bersaglio e...

Amplificazione isotermica mediata ad annello per il rilevamento di geni batterici

Questo video dimostra un metodo per valutare la crescita intracellulare di mutanti di Coxiella marcati con GFP all'interno di cellule epiteliali in coltura. Il fenotipo mutante viene visualizzato utilizzando l'immunocolorazione e la microscopia a epifluorescenza, consentendo lo studio dell'effetto della mutazione sulla crescita intracellulare.

Valutazione della crescita intracellulare di mutanti di Coxiella all'interno di cellule eucariotiche

La diagnosi di infezione da Eimeria nei polli rimane impegnativa. Gli approcci guidati dalla morfologia dei parassiti e dalla patologia dell'ospite sono comunemente inconcludenti, mentre gli approcci molecolari basati sulla PCR si sono dimostrati impegnativi in termini di costi e competenze. Lo scopo di questo protocollo è quello di stabilire l'amplificazione isotermica mediata da loop (LAMP) come diagnostica molecolare semplice per l'infezione di Eimerian.

Isotermico di amplificazione (lampada) Assays Loop-mediata per rilevamento delle specie-specifica<em&gt; Eimeria</em&gt; Che infettano Polli

Provided è un protocollo per lo sviluppo di un test di amplificazione della polimerasi ricombinasi in tempo reale per quantificare la concentrazione iniziale di campioni di DNA utilizzando un termociclatore o un microscopio e un riscaldatore per tavolini. Viene anche descritto lo sviluppo di un controllo positivo interno. Vengono forniti script per l'elaborazione di dati grezzi di fluorescenza in tempo reale.

Sviluppo di un Quantitative ricombinasi Polymerase Amplificazione Assay con un controllo positivo interno

Coxiella burnetii è un batterio Gram-negativi obbligato intracellulare responsabile della zoonotici malattia febbre Q. Qui si descrivono i metodi per la generazione di Coxiella mutanti di trasposoni fluorescente nonché l'identificazione automatizzata e l'analisi dei risultanti internalizzazione, replica e citotossici fenotipi.

Generation e Multi-fenotipica Screening-Alto contenuto di<em&gt; Coxiella burnetii</em&gt; Mutants transposon

Qui, presentiamo un protocollo per lo sviluppo e la convalida di un metodo PCR quantitativo utilizzato per la rilevazione e la quantificazione del DNA EHV-2 nei fluidi respiratori equini. Il protocollo di validazione EHV-2 qRT-PCR prevede una procedura in tre parti: sviluppo, caratterizzazione del solo test qRT-PCR e caratterizzazione dell'intero metodo analitico.

Sviluppo e validazione di un metodo quantitativo per PCR Equid herpesvirus-2 Diagnostica in respiratorie Fluidi

Indagare le interazioni tra batteri patogeni ei loro ospiti è un'area importante della ricerca biologica. Qui, descriviamo le tecniche necessarie per misurare effettrici traslocazione da Coxiella burnetii durante siRNA silenziamento genico mediante substrato Blam.

Applicando Fluorescence Resonance Energy Transfer (FRET) per esaminare Effector Translocation efficienza da<em&gt; Burnetii Coxiella</em&gt; Durante siRNA Silencing

Questo protocollo descrive la realizzazione di una cassetta piccola, ready-to-use che possa essere applicata per rilevamento visivo degli acidi nucleici multipli in un singolo, test che è facile da usare. In questo approccio, una matrice capillare è stata utilizzata per il rilevamento di multiplex e altamente efficiente di bersagli di OGM.

Riconoscimento visivo delle più acidi nucleici in una matrice capillare

L'amplificazione isotermica mediata da loop (LAMP) è un test di amplificazione dell'acido nucleico isotermico (iNAAT) che ha attirato un ampio interesse nel campo del rilevamento degli agenti patogeni. Qui presentiamo un protocollo Salmonella LAMP convalidato in più laboratori come metodo rapido, affidabile e robusto per lo screening della Salmonella negli alimenti per animali e la conferma della Salmonella presuntiva dall'isolamento della coltura.

Amplificazione isotermica mediata ad anello per lo screening della Salmonella negli alimenti animali e conferma della Salmonella dall'isolamento della coltura

Il presente lavoro descrive le fasi per la produzione di qPCR pronta all'uso per il rilevamento del DNA di T. cruzi che può essere precaricata sul recipiente di reazione e conservata in frigorifero per diversi mesi.

qPCR pronta all'uso per la rilevazione del DNA da Trypanosoma cruzi o altri organismi patogeni

Vari agenti patogeni batterici possono causare infezioni del tratto respiratorio e portare a gravi problemi di salute se non rilevati con precisione e trattati tempestivamente. Il rilevamento rapido e accurato di questi patogeni tramite amplificazione isoterma mediata da loop fornisce una gestione e un controllo efficaci delle infezioni del tratto respiratorio in ambito clinico.

Rilevamento rapido di agenti patogeni batterici che causano infezioni del tratto respiratorio inferiore tramite amplificazione isotermica mediata da loop basata su chip microfluidico

Impara il metodo LAMP con reagenti liofilizzati per la rilevazione di Coxiella burnetii in campioni clinici. Questo protocollo semplifica la diagnosi della febbre Q in contesti con risorse limitate.

Lo sviluppo del liofilizzato Loop-mediate isotermici amplificazione reagenti per la rilevazione di

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