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La misurazione della concentrazione è un passo fondamentale di molti saggi biochimici. La determinazione fotometrica delle proteine sfrutta il fatto che più un campione contiene sostanze che assorbono la luce, meno la luce trasmetterà attraverso di esso. Poiché la relazione tra concentrazione e assorbimento è lineare, questo fenomeno può essere utilizzato per misurare la concentrazione in campioni in cui è sconosciuta.
Questo video descrive le basi della determinazione fotometrica delle proteine e introduce il saggio Bradford e il metodo Lowry. La procedura nel video coprirà un tipico test di Bradford. Le applicazioni coperte includono la misurazione diretta di volumi molto piccoli di acidi nucleici per caratterizzare la concentrazione e la purezza, la determinazione dell'efficienza di accoppiamento di un materiale biomimetico e un'altra variazione della determinazione fotometrica delle proteine utilizzando il colorante Remazol.
Determinare la concentrazione di una proteina nei campioni è un passo fondamentale in molti saggi biochimici. La determinazione fotometrica può essere eseguita con campioni di piccole dimensioni. Più un campione contiene sostanze che assorbono la luce, meno la luce trasmetterà attraverso di esso. Ciò fornisce una misurazione quantitativa delle sostanze assorbenti. Questi concetti sono così fondamentali per la scienza che gli articoli che hanno introdotto due delle tecniche sono nei tre articoli più citati di tutti i tempi. Questo video mostrerà i concetti alla base di alcune delle più comuni tecniche di determinazione fotometrica delle proteine, come vengono eseguite e come vengono analizzati i dati raccolti.
La determinazione fotometrica delle proteine si basa sulla relazione tra concentrazione e assorbenza della luce. Questo è noto come la legge di Beer-Lambert, che afferma che la concentrazione di una specie che assorbe la luce è proporzionale alla sua assorbanza.
Questo principio è alla base di tutti i metodi di determinazione fotometrica delle proteine.
Per l'analisi dell'assorbimento diretto, vengono misurati i valori di assorbanza dei campioni proteici inalterati. A causa delle loro catene laterali aromatiche, i residui di triptofano e tirosina danno le più alte letture di assorbanza a una lunghezza d'onda di 280 nm.
Tuttavia, questi amminoacidi, che sono due dei meno frequenti presenti nelle proteine, sono presenti in quantità diverse in ogni proteina, quindi ogni determinazione è unica. Per superare questa limitazione, sono stati sviluppati saggi più complessi che non dipendono da questi amminoacidi.
Un esempio è il Bradford Assay, in cui il colorante colorato viene aggiunto al campione. Il colorante, noto come Coomassie Blue, risponde proporzionalmente: più proteine presenti, più eventi leganti con il colorante.
Quindi, la concentrazione proteica viene determinata misurando l'assorbanza del colorante Coomassie Blue legato, che assorbe la luce a 594 nm. Tuttavia, il saggio di Bradford è lineare su un breve intervallo di concentrazioni, quindi le diluizioni sono spesso necessarie prima dell'analisi.
Il metodo Lowry combina il reagente Biuret, una soluzione alcalina di ioni rame che reagiscono con i legami peptidici, e il reagente Folin-Ciocâlteu, che ossida i residui proteici aromatici. Il cambiamento di colore risultante del campione è proporzionale alla concentrazione proteica.
L'assorbanza del reagente Folin ridotto può essere determinata a 750 nm. Come l'assorbimento diretto, ogni proteina ha una risposta unica e deve essere calibrata per la proteina di interesse. Ora che abbiamo esaminato i principi di base alla base di alcuni dei test più comuni, diamo un'occhiata a come vengono eseguiti l'assorbimento diretto e il test di Bradford.
Per iniziare un'analisi di assorbimento diretto, lo spettrofotometro viene calibrato con un bianco per determinare l'assorbanza zero. Le soluzioni standard sono preparate per l'uso nella creazione della curva di calibrazione. Quindi, un'aliquota del primo standard viene aggiunta a una cuvetta e inserita nello spettrofotometro.
Viene quindi registrato il valore di assorbanza a 280 nm. Questo processo viene ripetuto per ogni standard, utilizzando una cuvetta pulita per ogni corsa. Una volta completata, viene creata una curva di calibrazione tracciando l'assorbanza rispetto alla concentrazione. La pendenza di questa linea è il coefficiente di attenuazione molare, che mette in relazione l'assorbanza con la concentrazione.
Successivamente, il campione sconosciuto viene aggiunto a una cuvetta e viene registrato il valore di assorbanza. Poiché l'analisi dei dati per i diversi metodi di determinazione fotometrica è simile, ne parleremo dopo aver esaminato il test di Bradford.
Qui, il test delle proteine di Bradford viene eseguito con uno standard BSA su una piastra a 96 pozzetti. Per iniziare, vengono preparate soluzioni stock BSA.
Le soluzioni sconosciute vengono diluite con acqua deionizzata per garantire che le concentrazioni rientrino nell'intervallo del test. A seconda del kit, il colorante Coomassie può anche richiedere la diluizione. Quindi, la curva di calibrazione viene impostata aggiungendo gli standard BSA alla piastra a 96 pozzi.
L'acqua deionizzata viene aggiunta per raggiungere la concentrazione necessaria per generare una curva standard. Il campione sconosciuto deve essere aggiunto alla piastra in triplice copia per garantire una misurazione accurata. Il colorante Coomassie viene aggiunto successivamente a ciascun pozzo, mescolando con la pipetta.
L'acqua deionizzata viene aggiunta a un pozzo vuoto come un bianco, per misurare l'assorbanza. Dopo aver atteso 5 minuti affinché il colorante si leghi, l'assorbanza viene misurata in un lettore di piastre a 590 nm.
Ora che abbiamo eseguito alcuni test, diamo un'occhiata a come analizzare i dati. Ogni metodo fotometrico di determinazione delle proteine si basa sulla legge di Beer-Lambert.
L'assorbanza misurata degli standard viene utilizzata per creare una curva di calibrazione, che viene quindi utilizzata per determinare la concentrazione di campioni sconosciuti. Questa curva può essere tracciata manualmente, anche se i più recenti strumenti spettrofotometrici creeranno la curva di calibrazione una volta che tutti gli standard sono stati misurati. Questi sistemi calcoleranno anche la concentrazione di proteine man mano che vengono analizzati campioni sconosciuti.
Ora che abbiamo esaminato come analizzare i dati fotometrici di determinazione delle proteine, diamo un'occhiata ad alcuni dei modi in cui queste procedure vengono utilizzate.
I principi della determinazione fotometrica delle proteine possono anche essere utilizzati per misurare direttamente la concentrazione di acido nucleico. Lo spettrofotometro nanodrop accetta campioni di volume molto piccolo su un piedistallo otticamente attivo. L'assorbanza viene quindi misurata e il sistema determina automaticamente la concentrazione di acido nucleico. Poiché le proteine e altre fonti possono interferire con le misurazioni, la purezza del campione viene determinata analizzando i rapporti di assorbanza da 260 a 280 nm e da 260 a 230 nm. Gli acidi nucleici puri producono tipicamente rapporti di circa 1,8 e circa 2,0 per DNA e RNA, rispettivamente.
La determinazione fotometrica delle proteine può essere utilizzata anche nella produzione di materiali biomimetici, che si ispirano alla natura per suscitare specifiche risposte cellulari. Le avesi ricombinanti sono legate a perline di polistirene per simulare l'attaccamento batterico alle cellule ospiti. Il saggio di Bradford viene utilizzato per determinare l'efficienza di accoppiamento dell'adesione ricombinante alle perle nella produzione del materiale biomimetico.
Saggi proteici fotometrici alternativi possono essere utilizzati nella rilevazione e caratterizzazione di antimicrobici proteici. Il colorante R blu brillante Remazol è legato covalentemente ai batteri uccisi dal calore. La proteina antimicrobica viene incubata nella soluzione tinta. Quindi, il campione viene centrifugato e l'assorbanza del surnatante a 595 nm viene misurata utilizzando uno spettrofotometro a micropiasche. L'aumentata assorbanza, dal colorante solubile rilasciato nel surnatante dai batteri etichettati, è una misura quantitativa dell'attività enzimatica.
Hai appena visto il video di JoVE sulla determinazione fotometrica delle proteine. Questo video descriveva i principi alla base della determinazione fotometrica, superò le procedure generali per alcuni saggi comuni e coprì alcuni nuovi progressi nelle tecniche. Grazie per l'attenzione!
La misurazione della concentrazione è un passo fondamentale di molti saggi biochimici. La determinazione fotometrica delle proteine sfrutta il fatto che più un campione contiene sostanze che assorbono la luce, meno la luce trasmetterà attraverso di esso. Poiché la relazione tra concentrazione e assorbimento è lineare, questo fenomeno può essere utilizzato per misurare la concentrazione in campioni in cui è sconosciuta.
Questo video descrive le basi della determinazione fotometrica delle proteine e introduce il saggio Bradford e il metodo Lowry. La procedura nel video coprirà un tipico test di Bradford. Le applicazioni coperte includono la misurazione diretta di volumi molto piccoli di acidi nucleici per caratterizzare la concentrazione e la purezza, la determinazione dell'efficienza di accoppiamento di un materiale biomimetico e un'altra variazione della determinazione fotometrica delle proteine utilizzando il colorante Remazol.
Determinare la concentrazione di una proteina nei campioni è un passo fondamentale in molti saggi biochimici. La determinazione fotometrica può essere eseguita con campioni di piccole dimensioni. Più un campione contiene sostanze che assorbono la luce, meno la luce trasmetterà attraverso di esso. Ciò fornisce una misurazione quantitativa delle sostanze assorbenti. Questi concetti sono così fondamentali per la scienza che gli articoli che hanno introdotto due delle tecniche sono nei tre articoli più citati di tutti i tempi. Questo video mostrerà i concetti alla base di alcune delle più comuni tecniche di determinazione fotometrica delle proteine, come vengono eseguite e come vengono analizzati i dati raccolti.
La determinazione fotometrica delle proteine si basa sulla relazione tra concentrazione e assorbenza della luce. Questo è noto come la legge di Beer-Lambert, che afferma che la concentrazione di una specie che assorbe la luce è proporzionale alla sua assorbanza.
Questo principio è alla base di tutti i metodi di determinazione fotometrica delle proteine.
Per l'analisi dell'assorbimento diretto, vengono misurati i valori di assorbanza dei campioni proteici inalterati. A causa delle loro catene laterali aromatiche, i residui di triptofano e tirosina danno le più alte letture di assorbanza a una lunghezza d'onda di 280 nm.
Tuttavia, questi amminoacidi, che sono due dei meno frequenti presenti nelle proteine, sono presenti in quantità diverse in ogni proteina, quindi ogni determinazione è unica. Per superare questa limitazione, sono stati sviluppati saggi più complessi che non dipendono da questi amminoacidi.
Un esempio è il Bradford Assay, in cui il colorante colorato viene aggiunto al campione. Il colorante, noto come Coomassie Blue, risponde proporzionalmente: più proteine presenti, più eventi leganti con il colorante.
Quindi, la concentrazione proteica viene determinata misurando l'assorbanza del colorante Coomassie Blue legato, che assorbe la luce a 594 nm. Tuttavia, il saggio di Bradford è lineare su un breve intervallo di concentrazioni, quindi le diluizioni sono spesso necessarie prima dell'analisi.
Il metodo Lowry combina il reagente Biuret, una soluzione alcalina di ioni rame che reagiscono con i legami peptidici, e il reagente Folin-Ciocâlteu, che ossida i residui proteici aromatici. Il cambiamento di colore risultante del campione è proporzionale alla concentrazione proteica.
L'assorbanza del reagente Folin ridotto può essere determinata a 750 nm. Come l'assorbimento diretto, ogni proteina ha una risposta unica e deve essere calibrata per la proteina di interesse. Ora che abbiamo esaminato i principi di base alla base di alcuni dei test più comuni, diamo un'occhiata a come vengono eseguiti l'assorbimento diretto e il test di Bradford.
Per iniziare un'analisi di assorbimento diretto, lo spettrofotometro viene calibrato con un bianco per determinare l'assorbanza zero. Le soluzioni standard sono preparate per l'uso nella creazione della curva di calibrazione. Quindi, un'aliquota del primo standard viene aggiunta a una cuvetta e inserita nello spettrofotometro.
Viene quindi registrato il valore di assorbanza a 280 nm. Questo processo viene ripetuto per ogni standard, utilizzando una cuvetta pulita per ogni corsa. Una volta completata, viene creata una curva di calibrazione tracciando l'assorbanza rispetto alla concentrazione. La pendenza di questa linea è il coefficiente di attenuazione molare, che mette in relazione l'assorbanza con la concentrazione.
Successivamente, il campione sconosciuto viene aggiunto a una cuvetta e viene registrato il valore di assorbanza. Poiché l'analisi dei dati per i diversi metodi di determinazione fotometrica è simile, ne parleremo dopo aver esaminato il test di Bradford.
Qui, il test delle proteine di Bradford viene eseguito con uno standard BSA su una piastra a 96 pozzetti. Per iniziare, vengono preparate soluzioni stock BSA.
Le soluzioni sconosciute vengono diluite con acqua deionizzata per garantire che le concentrazioni rientrino nell'intervallo del test. A seconda del kit, il colorante Coomassie può anche richiedere la diluizione. Quindi, la curva di calibrazione viene impostata aggiungendo gli standard BSA alla piastra a 96 pozzi.
L'acqua deionizzata viene aggiunta per raggiungere la concentrazione necessaria per generare una curva standard. Il campione sconosciuto deve essere aggiunto alla piastra in triplice copia per garantire una misurazione accurata. Il colorante Coomassie viene aggiunto successivamente a ciascun pozzo, mescolando con la pipetta.
L'acqua deionizzata viene aggiunta a un pozzo vuoto come un bianco, per misurare l'assorbanza. Dopo aver atteso 5 minuti affinché il colorante si leghi, l'assorbanza viene misurata in un lettore di piastre a 590 nm.
Ora che abbiamo eseguito alcuni test, diamo un'occhiata a come analizzare i dati. Ogni metodo fotometrico di determinazione delle proteine si basa sulla legge di Beer-Lambert.
L'assorbanza misurata degli standard viene utilizzata per creare una curva di calibrazione, che viene quindi utilizzata per determinare la concentrazione di campioni sconosciuti. Questa curva può essere tracciata manualmente, anche se i più recenti strumenti spettrofotometrici creeranno la curva di calibrazione una volta che tutti gli standard sono stati misurati. Questi sistemi calcoleranno anche la concentrazione di proteine man mano che vengono analizzati campioni sconosciuti.
Ora che abbiamo esaminato come analizzare i dati fotometrici di determinazione delle proteine, diamo un'occhiata ad alcuni dei modi in cui queste procedure vengono utilizzate.
I principi della determinazione fotometrica delle proteine possono anche essere utilizzati per misurare direttamente la concentrazione di acido nucleico. Lo spettrofotometro nanodrop accetta campioni di volume molto piccolo su un piedistallo otticamente attivo. L'assorbanza viene quindi misurata e il sistema determina automaticamente la concentrazione di acido nucleico. Poiché le proteine e altre fonti possono interferire con le misurazioni, la purezza del campione viene determinata analizzando i rapporti di assorbanza da 260 a 280 nm e da 260 a 230 nm. Gli acidi nucleici puri producono tipicamente rapporti di circa 1,8 e circa 2,0 per DNA e RNA, rispettivamente.
La determinazione fotometrica delle proteine può essere utilizzata anche nella produzione di materiali biomimetici, che si ispirano alla natura per suscitare specifiche risposte cellulari. Le avesi ricombinanti sono legate a perline di polistirene per simulare l'attaccamento batterico alle cellule ospiti. Il saggio di Bradford viene utilizzato per determinare l'efficienza di accoppiamento dell'adesione ricombinante alle perle nella produzione del materiale biomimetico.
Saggi proteici fotometrici alternativi possono essere utilizzati nella rilevazione e caratterizzazione di antimicrobici proteici. Il colorante R blu brillante Remazol è legato covalentemente ai batteri uccisi dal calore. La proteina antimicrobica viene incubata nella soluzione tinta. Quindi, il campione viene centrifugato e l'assorbanza del surnatante a 595 nm viene misurata utilizzando uno spettrofotometro a micropiasche. L'aumentata assorbanza, dal colorante solubile rilasciato nel surnatante dai batteri etichettati, è una misura quantitativa dell'attività enzimatica.
Hai appena visto il video di JoVE sulla determinazione fotometrica delle proteine. Questo video descriveva i principi alla base della determinazione fotometrica, superò le procedure generali per alcuni saggi comuni e coprì alcuni nuovi progressi nelle tecniche. Grazie per l'attenzione!
La determinazione della concentrazione di una proteina nei campioni è un passaggio fondamentale in molti saggi biochimici. La determinazione fotometrica può essere eseguita con campioni di piccole dimensioni. Più un campione contiene sostanze che assorbono la luce, meno la luce trasmetterà attraverso di esso. In questo modo si ottiene una misurazione quantitativa delle sostanze assorbenti. Questi concetti sono così fondamentali per la scienza che gli articoli che hanno introdotto due delle tecniche sono nei tre articoli più citati di tutti i tempi. Questo video mostrerà i concetti alla base di alcune delle più comuni tecniche di determinazione fotometrica delle proteine, come vengono eseguite e come vengono analizzati i dati raccolti.
La determinazione fotometrica delle proteine si basa sulla relazione tra concentrazione e assorbenza della luce. Questa è nota come legge di Beer-Lambert, che afferma che la concentrazione di una specie che assorbe la luce è proporzionale alla sua assorbanza.
Questo principio è alla base di tutti i metodi di determinazione fotometrica delle proteine.
Per l'analisi dell'assorbimento diretto, vengono misurati i valori di assorbanza di campioni proteici inalterati. A causa delle loro catene laterali aromatiche, i residui di triptofano e tirosina forniscono le letture di assorbanza più elevate a una lunghezza d'onda di 280 nm.
Tuttavia, questi amminoacidi, che sono due dei meno frequenti nelle proteine, sono presenti in quantità diverse in ogni proteina, quindi ogni determinazione è unica. Per superare questa limitazione, sono stati sviluppati saggi più complessi, che non dipendono da questi amminoacidi.
Un esempio è il Bradford Assay, in cui il colorante colorato viene aggiunto al campione. Il colorante, noto come Coomassie Blue, risponde in modo proporzionale: maggiore è la quantità di proteine presenti, maggiori sono gli eventi di legame con il colorante.
Quindi, la concentrazione proteica viene determinata misurando l'assorbanza del colorante Coomassie Blue legato, che assorbe la luce a 594 nm. Tuttavia, il saggio di Bradford è lineare su un breve intervallo di concentrazioni, quindi spesso sono necessarie diluizioni prima dell'analisi.
Il metodo Lowry combina il reagente Biuret, una soluzione alcalina di ioni rame che reagiscono con legami peptidici, e il reagente Folin-Ciocölteu, che ossida i residui proteici aromatici. Il cambiamento di colore risultante del campione è proporzionale alla concentrazione proteica.
L'assorbanza del reagente Folin ridotto può essere determinata a 750 nm. Come l'assorbimento diretto, ogni proteina ha una risposta unica e deve essere calibrata per la proteina di interesse. Ora che abbiamo esaminato i principi di base alla base di alcuni dei test più comuni, diamo un'occhiata a come vengono eseguiti l'assorbimento diretto e il test Bradford.
Per iniziare un'analisi diretta dell'assorbimento, lo spettrofotometro viene calibrato con un bianco per determinare l'assorbanza zero. Le soluzioni standard vengono preparate per l'uso nella creazione della curva di calibrazione. Quindi, un'aliquota del primo standard viene aggiunta a una cuvetta e inserita nello spettrofotometro.
Viene quindi registrato il valore di assorbanza a 280 nm. Questo processo viene ripetuto per ogni standard, utilizzando una cuvetta pulita per ogni seduta. Una volta completata, viene creata una curva di calibrazione tracciando l'assorbanza rispetto alla concentrazione. La pendenza di questa linea è il coefficiente di attenuazione molare, che mette in relazione l'assorbanza con la concentrazione.
Successivamente, il campione sconosciuto viene aggiunto a una cuvetta e viene registrato il valore di assorbanza. Poiché l'analisi dei dati per i diversi metodi di determinazione fotometrica è simile, ne parleremo dopo aver esaminato il saggio di Bradford.
In questo caso, il saggio delle proteine di Bradford viene eseguito con uno standard BSA su una piastra a 96 pozzetti. Per iniziare, vengono preparate le soluzioni stock BSA.
Le soluzioni sconosciute vengono diluite con acqua deionizzata per garantire che le concentrazioni rientrino nell'intervallo del saggio. A seconda del kit, il colorante Coomassie può anche richiedere una diluizione. Quindi, la curva di calibrazione viene impostata aggiungendo gli standard BSA alla piastra a 96 pozzetti.
L'acqua deionizzata viene aggiunta per raggiungere la concentrazione necessaria per generare una curva standard. Il campione sconosciuto deve essere aggiunto alla piastra in triplice copia per garantire una misurazione accurata. Il colorante Coomassie viene quindi aggiunto a ciascun pozzetto, mescolando con la pipetta.
L'acqua deionizzata viene aggiunta a un pozzetto vuoto per misurare l'assorbanza. Dopo aver atteso 5 minuti affinché il colorante si leghi, l'assorbanza viene misurata in un lettore di piastre a 590 nm.
Ora che abbiamo eseguito alcuni saggi, diamo un'occhiata a come analizzare i dati. Ogni metodo di determinazione fotometrica delle proteine si basa sulla legge di Beer-Lambert.
L'assorbanza misurata degli standard viene utilizzata per creare una curva di calibrazione, che viene poi utilizzata per determinare la concentrazione di campioni sconosciuti. Questa curva può essere tracciata manualmente, anche se gli strumenti spettrofotometrici più recenti creeranno la curva di calibrazione una volta che tutti gli standard sono stati misurati. Questi sistemi calcoleranno anche la concentrazione di proteine man mano che vengono analizzati campioni sconosciuti.
Ora che abbiamo esaminato come analizzare i dati di determinazione fotometrica delle proteine, diamo un'occhiata ad alcuni dei modi in cui vengono utilizzate queste procedure.
I principi della determinazione fotometrica delle proteine possono essere utilizzati anche per misurare direttamente la concentrazione di acidi nucleici. Lo spettrofotometro nanodrop accetta campioni di volume molto piccolo su un piedistallo otticamente attivo. L'assorbanza viene quindi misurata e il sistema determina automaticamente la concentrazione di acido nucleico. Poiché le proteine e altre fonti possono interferire con le misurazioni, la purezza del campione viene determinata analizzando i rapporti di assorbanza da 260 a 280 nm e da 260 a 230 nm. Gli acidi nucleici puri producono tipicamente rapporti di circa 1,8 e circa 2,0 rispettivamente per il DNA e l'RNA.
La determinazione fotometrica delle proteine può essere utilizzata anche nella produzione di materiali biomimetici, che si ispirano alla natura per suscitare risposte cellulari specifiche. Le adesine ricombinanti sono legate a perle di polistirene per simulare l'adesione batterica alle cellule ospiti. Il saggio di Bradford viene utilizzato per determinare l'efficienza di accoppiamento dell'adesione ricombinante alle perle nella produzione del materiale biomimetico.
I saggi fotometrici alternativi delle proteine possono essere utilizzati per il rilevamento e la caratterizzazione degli antimicrobici proteici. Il colorante Remazol brilliant blue R è legato in modo covalente ai batteri uccisi dal calore. La proteina antimicrobica viene incubata nella soluzione colorata. Quindi, il campione viene centrifugato e l'assorbanza del surnatante a 595 nm viene misurata utilizzando uno spettrofotometro a micropiastra. L'aumento dell'assorbanza, da parte del colorante solubile rilasciato nel surnatante dai batteri marcati, è una misura quantitativa dell'attività enzimatica.
Hai appena visto il video di JoVE sulla determinazione fotometrica delle proteine. Questo video descriveva i principi alla base della determinazione fotometrica, esaminava le procedure generali per alcuni saggi comuni e copriva alcuni nuovi progressi nelle tecniche. Grazie per l'attenzione!
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