0 閲覧数 • 4:00 分 • October 30th, 2025
遺伝子組み換え細菌の培養を取ります。
細菌は、校正活性に欠陥のあるDNAポリメラーゼの変異変異体を発現するように誘導され、複製エラーの可能性が高まります。
これらのエラーは、調節領域に自発的な突然変異を引き起こし、ベータグルコシダーゼ遺伝子を抑制し、ベータグルコシダーゼ酵素の発現を引き起こす可能性があります。
一定の時間間隔でサンプルを収集し、各培養における細菌の生成数を評価します。サンプルを遠心分離し、上清を廃棄します。
ペレットをバッファーに再懸濁します。
透過性溶液を加え、混合して細菌膜を透過性化します。
透過処理された細菌サンプルをマルチウェルプレートに移します。
細菌に入り、ベータグルコシダーゼ酵素と反応して着色された生成物を生成する基質を追加します。
色の濃さを測定して、ベータグルコシダーゼ活性を測定します。
細菌培養中のベータグルコシダーゼ活性を分析して、世代にわたる突然変異の頻度を決定します。
pBAD-εおよびpGOOD1-εD12A11ベクターを含む 大腸菌 TOP10の単一コロニーを、抗生物質で処理した1ミリリットルのLB培地に移します。
培養物を摂氏37度で一晩インキュベートします。翌朝、10ミリリットルの新鮮な培地を含む3つのフラスコで前培養1〜250を希釈します。誘導剤にアラビノース、IPTGまたはアラビノースとIPTGをそれぞれ1ミリモルずつ加え、誘導培養物を摂氏37度で8時間インキュベートします。
非誘導培養物を並行して調製します。1ミリリットルのアリコートを集め、10ミリリットルの新鮮な培地を含む新しいフラスコで1〜500に希釈し、誘導剤を補充または補充しませんでした。次に、混合物を摂氏37度で一晩インキュベートします。
翌日、前培養の希釈から始まる手順を繰り返し、1ミリリットルのアリコートを収集します。次に、アリコートを冷凍庫に入れます。
次に、各文化圏で発生した世代数を決定します。100マイクロリットルの適切な連続希釈液の接種物と培養物をLBプレートに移します。
プレートを摂氏37度で一晩インキュベートします。翌朝、LBプレートのコロニーを数えます。
接種物またはlog Iおよび増殖終了時の培養物またはlog Cに存在する細胞数の対数を計算し、世代数を決定します。
次に、培養物を5,000gsで20分間遠心分離し、細胞を1ミリリットルの50ミリモルトリスHCL、pH 7.6、50ミリモルNaClに再懸濁します。
細胞を透過性化するには、クロロホルムを2〜3滴加え、20秒間ボルテックスします。
最後に、96ウェルマイクロプレート中の各アリコートのグルコシダーゼ活性を測定します。
ウェル内に気泡が発生しないようにしながら、100マイクロリットルの透過処理細胞と100マイクロリットルのp-ニトロフェニル-D-グルコピラノシド基質を使用します。
マイクロプレートリーダーとフィルターを使用して、420ナノメートルの吸光度を読み取ります。
本研究では、遺伝子組み換え細菌におけるDNAポリメラーゼの変異体による影響を調査し、それによって生じる変異とβ-グルコシダーゼ発現への影響に焦点を当てます。世代を重ねた細菌培養物を分析することで、変異頻度と酵素活性を定量化することを目的としています。
この手法により、細菌系における遺伝的不安定性の定量的な評価が可能となり、ポリメラーゼの忠実度を表現型リードアウトに結びつけることで、ターゲットのバリデーションをサポートします。また、世代を越えた変異の蓄積をモニタリングするための、スケーラブルな比色リードアウトを提供し、遺伝的安定性が製品の一貫性に影響を与える場合のリード化合物同定戦略に有用な情報をもたらします。本アッセイは、DNA修復欠損と機能的な遺伝子発現変化を相関させることで、前臨床モデルにおけるメカニズム的なリスク軽減をサポートします。
このアッセイは、遺伝的な安定性が標的への信頼性と製造の一貫性に影響を与える、初期探索から前臨床までのワークフローに適しています。
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最終更新:29 8月 2026