0 閲覧数 • 3:01 分 • November 28th, 2025
まずは遺伝子組み換え細菌細胞を含むチューブから始めます。各細菌は高コピーのフォスミドを持ち、さまざまな酵素をコードしています。
チューブを振ってキュベートし、さまざまな細胞内酵素の発現を促進します。
試験管に標的酵素特異的な基質を加え、対照チューブに同量の緩衝液を加えます。
振って孵化させてください。基質は細胞内に入り、標的酵素がそれを切断して蛍光生成物を生成します。
制御チューブをあらかじめ校正済みのフローサイトメーターに装填します。
各セルがレーザービームを通過する際、光が散乱します。散乱図を作成して、塊よりも光の散乱が少ない単一セルを特定します。
細胞塊を除外し、単一細胞の蛍光信号をプロットして基準蛍光を確立します。
基質処理済みのチューブをフローサイトメーターに入れて蛍光信号を測定します。
基質処理細胞で対照細胞に比べて蛍光信号が増加すると、標的酵素の発現が確認されます。
対象のメタゲノム酵素をスクリーニングするために、選別した細胞を37度摂氏、200回転分でOD600 が0.5に達するまで培養します。次に、細胞内フォスミドのコピー数を増幅するために1マイクロリットルのコピー誘導液を加えます。
37度・250回転で3時間後、細胞の0.5ミリリットルを適切な基質と14ミリリットルの丸底管で結合し、最終濃度100マイクロモルにします。その後、対照サンプルと実験サンプルを37度摂氏、200回転分の温度でさらに3時間培養します。
サンプルが揺れている間に、先ほど示したようにFACSマシンのパラメータを設定してください。次に、各サンプルから5マイクロリットルの細胞を、PBS1ミリリットルを含む5ミリリットルの丸底チューブに加えます。次にサンプルセルを読み込み、イベントレートを1000〜3000イベント/秒に設定します。
対数スケールの前方散乱領域と対数スケールの側散乱面積散乱プロットを作成し、R1散乱ゲートを調整してシングレットイベントの細菌細胞を包含させます。次に、対数スケールの前方散乱と対数スケールのFITC面積散乱図を作成し、R2ソートゲートを設定して、ネガティブセルの検出率が0.1%未満に抑えられるようにします。次にサンプルチューブをロードし、必要に応じてイベントレートを1000〜3000イベント/秒に再調整します。
本記事では、フローサイトメトリーを用いて標的酵素の発現を特定するための、遺伝子組み換え細菌細胞のスクリーニング手法について解説します。このプロセスでは、細胞を特定の基質とともにインキュベートし、蛍光信号を分析して酵素活性を確認します。
この手法により、遺伝子組み換え細菌細胞における酵素発現の高スループット検出が可能となり、酵素探索プログラムにおける初期段階のターゲットバリデーションを支援します。基質のターンオーバーをフローサイトメトリーでソート可能な蛍光読み取り値に結びつけることで、機能的な酵素活性を評価するための定量的な単一細胞解像度を提供します。このアプローチは、精製や特性解析への後続の投資を行う前に表現型出力を確認することで、ターゲット同定のリスクを低減します。
この手法は、生化学的な特性評価の前に酵素発現を機能的に検証することで、ライブラリースクリーニングとリード化合物同定を橋渡しし、初期探索ワークフローに適合します。
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最終更新:29 8月 2026