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チップベースのデジタルPCR技術は、単一の反応をナノ流体チップのチャンバーに分割します。分割された配列の増幅により、まれな転写産物変異体(低頻度で発生する非標準転写産物)の検出が可能になります。
まず、標的の希少転写産物バリアントと一般的なバリアントのcDNAを含むサンプルを採取します。熱安定性DNAポリメラーゼ、dNTP、およびプライマーを含む溶液を追加します。
一般的でまれな転写産物変異体特異的オリゴヌクレオチドプローブを追加し、異なる蛍光レポーターとクエンチャー分子で標識します。クエンチャーは、近接するとレポーターの蛍光を吸収します。
混合物をナノ流体チップにロードします。溶液は均一なサイズのナノチャンバーに分割されます。cDNAを含む各チャンバーは、独立した反応容器として機能します。
熱サイクルプロセスを開始します。高い変性温度により、二本鎖DNAが一本鎖に分離されます。温度を下げて、プライマーとオリゴヌクレオチドプローブが単一のDNA鎖の相補領域にアニールできるようにします。
温度を上げて伸長ステップに到達し、DNAポリメラーゼがプライマーを伸長させてプローブを切断します。クエンチャーからの距離により、レポーターの蛍光発光が可能になります。蛍光シグナルを読み取ります。
増幅された希少転写産物ターゲットを持つチャンバーと、ターゲットを欠いたチャンバーを示す散布図を作成します。標的の陽性シグナルは、サンプル中に希少転写産物バリアントが存在することを示します。
まず、マスターミックスとアッセイを室温で少なくとも20分間解凍します。次に、0.5ミリリットルのチューブに6マイクロリットルのcDNAサンプルをロードします。また、テンプレートなしのコントロールチューブを作成します。次に、マスターミックスを穏やかにボルテックスし、反応ごとに8.7マイクロリットルを滅菌チューブに分注します。
次に、反応ごとに、0.87マイクロリットルのカスタムアッセイプライマーを加え、1.83マイクロリットルのヌクレアーゼフリー水を加えます。組み合わせを穏やかに混合し、11.4マイクロリットルをcDNAを含む各チューブとテンプレートなしのコントロールに移します。次に、チューブを穏やかに混合し、パルス遠心分離を使用してチューブの内容物をプールします。最適な結果を得るには、できるだけ早くチップをロードしてください。
チップローダーを接続し、インジケーターライトが緑色に変わるまで待ちます。次に、プランジャーを1〜2ミリメートルまでそっと引いて浸漬液シリンジを準備し、キャップを取り外してチップを追加します。
次に、新しいチップの蓋に書かれたコードをメモし、蓋の横を慎重に持ち、保護フィルムをはがし、粘着面を上にして蓋の巣に置きます。次に、レバーを押してクランプを開き、チップをチップネストに慎重にロードします。
次に、新しいローディングブレードをローダーに入れます。ゆっくり押して、所定の位置にしっかりと固定されていることを確認します。次に、14.5マイクロリットルの反応混合物をローディングブレードに移します。気泡を作ったり、刃をたわらしたりしないでください。次に、黒い「読み込み中」ボタンを押して、ボリュームをチップに分配します。
ローディングブレードが所定の位置にあることを確認することが重要です。次に、ブレードに充填している間、気泡の侵入を避けるために、ピペットを2番目のストップまで押し込まないでください。また、先端で刃をたわらさないでください。
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リンジを使用して、約20滴の浸漬液をチップ表面に移します。先端で表面に触れないように注意し、表面が溢れないように完全に覆ってください。次に、ローターアームを回転させて蓋がチップに接触するようにし、15秒間押し下げます。次に、蓋ボタンを押して切りくずを解放し、ローダーアームを静止位置に戻します。次に、クランプを開き、組み立てたチップを 45 度の角度で保持し、シリンジを介して充填ポートから浸漬液を慎重に分配します。次に、チップを少し回転させて気泡を取り除き、滅菌ワイプで余分な液体を取り除きます。
先端の境界に浸漬液をこぼさないでください。その場合は、シールする前に余分なものを慎重に取り除いてください。
最後に、蓋のラベルをそっと剥がし、充填ポートを少なくとも 5 秒間塞いでチップ ケースを密封します。チップは2時間以内に使用し、それまでは暗所に保管してください。
反応を設定するには、蓋を開けて、単一のブロックを使用する場合でも、両方のブロックにアダプターを取り付けます。次に、サンプルブロックにチップを置き、充填ポートをサーマルサイクラーの前面に向け、ポートを少し持ち上げます。空のチップを使用して、2 つのブロックのバランスをとります。
次に、サーマルパッドをセットアップの上に置き、チップを完全に覆います。次に、サイクルをプログラムし、蓋を閉めて反応を開始します。
反応が終わったら、サーマルサイクラーの電源を切り、サーマルパッドを取り外してから、切りくずを取り外します。チップを暗所で少なくとも10分間室温まで解凍し、1時間以内に分析します。切りくず表面をイソプロパノールで洗浄し、漏れやその他の問題がないか検査します。
データを保存するには、データを保存できる検出器システムにUSBメモリスティックを挿入します。次に、検出システムのチップトレイを開き、チップを上向きにロードします。トレイを閉じて、データが処理されるまで 30 秒待ちます。次に、チップを取り外し、次のチップに対してこのプロセスを繰り返します。
次に、USBスティックを検出器からコンピューターに移動し、ファイルを転送します。クラウドベースのソフトウェアを開き、プロジェクトを作成し、目的のチップのすべてのデータファイルをインポートします。次に、「定義されたチップ」タブで、使用する色素とアッセイを選択します。チップが許容できるかどうかは、「データの確認」タブで視覚化して判断します。サンプルが適切にロードされている場合は、少なくとも 13,000 ポイントを使用できます。
次に、選択したチップの散布図を確認します。そこで、アッセイタイプで定義された閾値を適用します。フルオレセインアミダイトレポーター色素シグナルには、6,000のしきい値を使用します。次に、誤検知を引き起こす可能性のある疑わしいシグナルを削除します。「なげなわ」ツールを使用して散布図上の疑わしい場所を選択し、「未決定」オプションを選択します。
残りのすべての陽性スポットは、分析されたまれな標的のcDNAコピーの存在を示しています。