Name: マルチパラメータ蛍光活性化細胞選別によるヒトリンパ内皮細胞の単離 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-01T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 36 s
Description: 学ぶマルチパラメータ蛍光活性化細胞選別によるヒトリンパ内皮細胞の単離法。組織の酵素処理と細胞培養を組み合わせ、99%以上の高純度で細胞を分離し、遺伝学的・機能的研究への応用が可能です。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

著者らは、ベーカー財団とZerina Lokmicの支援ロイヤル子供財団科学フェローシップで女性を承認したいと思います。アンドリューG. ElefantyとエドゥアールG.スタンレーはNHMRC上級研究員です。彼らの研究室での作業は、NHMRCと幹細胞オーストラリアによってサポートされていました。

倫理文：リンパ管奇形と包皮組織の収集のための倫理的承認は王立子供病院、メルボルン、オーストラリアで人間研究倫理委員会から入手しました。署名した同意が手術前に患者の親から受け取りました。組織サンプルは、選択的割礼を受け、それらの臨床管理および患者の一部として、外科的処置を受けているLMSと診断された患者から採取しました。すべての実験は、国立保健医療研究評議会、オーストラリアのガイドラインに従って行いました。 包皮とリンパ管腫組織から細胞懸濁液の調製<ol><li>バッファとメディアの準備。 <ol><li> EGM-2培地を温め、ゆっくりと37℃の水浴中でキット成分を解凍することによって、市販のEGM-2 MVブレットキットを使用して完全な内皮細胞のメディアを準備します。クラスIIバイオセーフティキャビネットでは、無菌的にEGM-2培地に各コンポーネントを追加します。一旦、全ての成分が培地に添加されている、「完全な内皮細胞培地」としてこのメ​​ディアを参照してください。使用前に内容物を混合するために、滅菌50ミリリットルピペットを使用してください。 注 ：細胞培養に関連するすべてのステップは、クラスIIバイオハザードキャビネット内で行われています。全ての溶液は、製造者の指示に従って、4℃で保存し、使用前に室温に温めます。完全な内皮細胞培地、細胞培養緩衝液と酵素溶液は、使用前に20分間37℃で加温します。 </li><li> 50 ngの/ mlのVEGF-Cとの完全な内皮細胞培地を補います。使用するまで4℃で50 mlの滅菌チューブとストアに補充した内皮細胞培地を分注し。 4°Cで保存した場合、メディアは、少なくとも4週間安定です。 </li><li> 8.752グラムのNaCl、1.416グラムのNa 2 HPOを溶解することによって、カルシウムおよびマグネシウムを含まないリン酸緩衝生理食塩水（PBS）を準備4·2H 2 Oと水1000ml中に0.395グラムのKH 2 PO 4。 pHを7.4に調整します。フィルタは、4℃で0.22μmフィルターとストアを使用してPBSを殺菌します。 （1：100で使用される）抗生物質/抗真菌剤溶液を添加使用する前に。 </li><li>ヒトフィブロネクチンを調製するために、滅菌水10mlにフィブロネクチン1mgを溶解させます。ストアを-20℃で100μlのアリコートでソリューションを再構成しました。利用当日（10μgの/ mlの最終作業濃度を与えるために）フィブロネクチンアリコートの100μlに10mlの無菌PBSを追加。 </li><li>酵素メディアの場合、滅菌PBSで0.04％ディスパーゼII、0.25％コラゲナーゼIIおよび0.01％DNアーゼIを含む溶液を準備します。まず、滅菌50mlチューブにディスパーゼ及びコラゲナーゼ、場所を計量PBSの必要量を添加し、溶解するために37℃で振とうしながら30分間インキュベートします。溶解後、フィルターはバイオセーフティーフード内（0.22μmフィルター）ディスパーゼ/コラゲナーゼ溶液を滅菌します。無菌的になるまで37℃でのDNase I.ストア酵素液を追加使用しています。 注 ：DNアーゼI滅菌凍結乾燥粉末として市販の細胞培養グレードの試薬 ​​です。 </li></ol></li></ol>包皮とリンパ管腫の細胞懸濁液の調製<ol><li> DMEM / 2％抗生物質抗真菌溶液10mlを含む50mlチューブを秤量します。このチューブは、組織収集のために使用されます。 </li><li>リンパ管腫と包皮組織を外科的に除去した後、無菌的に細胞培養実験室に、氷上でチューブと転送に組織標本を追加します。 </li><li>組織を含むチューブを秤量し、組織重量を計算します。組織を消化するのに必要な酵素溶液の体積を計算するために、この重みを使用します。 </li><li>クラスII安全キャビネットでは、100mm組織培養皿に組織やメディアを転送するために滅菌ピンセットを使用しています。細かく〜1mm 3の小片に組織をミンチに無菌のはさみを使用してください。 </li><li>メディアIと混合転送細分化した組織滅菌DMEM / 2％抗生物質抗真菌溶液をさらに10 mlを含む50mlチューブNTO。組織を再懸濁するために転倒混和します。 5分間、300×gでサンプルを遠心。 </li><li>上清を取り除きます。組織重量に基づいて、予め温めた（37℃）、コラゲナーゼIIミンチ100mgの組織当たり/ DNアーゼI /ディスパーゼII消化溶液1mlを加えます。一般的には、細分化した組織の約1グラムのための酵素溶液10mlを使用しています。 </li><li>定数は200 rpmで振盪しながら20〜90分間37℃のインキュベーター中で組織をインキュベートします。この期間の終わりに、ほぼすべての組織の微細断片に消化されていることを確認。 注 ：プライマリの組織に影響を与える細胞の生存からの単離時のコラゲナーゼとディスパーゼへの細胞の曝露。我々は、線維性リンパ管奇形サンプルが消化の60〜90分を必要とする場合があり、一方、最も新生児包皮サンプルは最適、消化の20〜30分を必要とすることを実験的に見出しました。 LM LEC収量sは線維症の存在量によって影響され、より多くの繊維組織はおそらく、コラゲナーゼIIおよびディスパーゼIIへの長期暴露の有害な影響のために、少数の細胞を得ました。 </li><li>消化後、生物学的安全キャビネットにチューブを転送し、滅菌50mlチューブ中に入れ70μmのストレーナを介して消化された組織液を通過させます。細胞外マトリックスのわずかな痕跡が観察されるまで、ゴムプラ​​ンジャーで3 mlシリンジのピストンを使用して、残りの組織を細かくすりつぶします。 </li><li>ふるいし、酵素を不活性化するためにこだわった細胞を回収する酵素媒体を解離の体積に対する内皮細胞培地同等の体積を有するセルストレーナーを洗浄します。例えば、細分化した組織を消化する酵素の媒体を解離2mlのために、酵素を不活性化するために、内皮細胞培地2mlを追加します。 </li><li> 5分間、300×gで細胞溶液を遠心し、上清を吸引除去します。 R&gt;は10mlのPBSで細胞を電子中断。 300×gで遠心分離した細胞5分間、2回の細胞洗浄を繰り返し、上清を除去します。 &gt;内皮細胞培地20mlに細胞ペレットを再懸濁します。次に&gt; 2フラスコ150センチメートルでシード2×10&gt; 6細胞は、内皮細胞培地20mlの最終容量で、フィブロネクチンで予め被覆されたトリパンブルーを用いて細胞数を計測します。加湿空気インキュベーター中、5％CO&gt; 2で37℃で培養&gt; 注 ：これは、トリパンブルー排除により推定されるように、有核細胞の75％-90％が組織消化に耐えることが期待されます。初期の細胞数は、細胞懸濁液中のすべての有核細胞（ すなわち、角化細胞、白血球、マクロファージ、結合組織細胞と血管細胞）を反映しています。 5-7日目に細胞数は、添付の生存および細胞培養中に増殖した細胞を反映します。フィブロネクチンで組織培養フラスコを被覆することも、その後のLECとLM LECの生存率を改善します。 </li><li>一晩インキュベートした後、Pで3回洗浄し、未結合の中の細胞を洗い流しますBS / 1％抗生物質 - 抗真菌溶液、新鮮な内皮細胞培地を追加します。効果的にフラスコ内に存在する未結合の細胞および赤血球を除去するために3回の洗浄を行っています。一日おきにメディアを変更します。細胞は、5-7日後に〜80％コンフルエントになります。 </li></ol>フローサイトメトリーのためのリンパ管内皮細胞表面マーカーのための細胞の3抗体染色<ol><li>細胞の後、80％のコンフルエンスに達した吸引培地とPBSで細胞をリンスしています。 </li><li>このような37℃で5-7分間のAccutase 150センチメートルあたり2フラスコなどの細胞剥離液7mlので細胞をインキュベートすることによって接着細胞を切り離します。 </li><li>収穫剥離した細胞、内皮細胞培地の3ボリュームを追加することにより、細胞剥離液を不活性化し、新しい滅菌チューブに細胞懸濁液を移します。 </li><li> 5分間、300×gで細胞を遠心。 </li><li>上清を吸引し、5mlのPBSで細胞を再懸濁します。 5分間300×gで遠心分離細胞は、Sを除去します細胞洗浄を繰り返し、その後upernatant。 5mlのPBSで細胞を再懸濁します。 </li><li>生細胞の数をカウントします。 0.4％トリパンブルーの90μlの細胞懸濁液10μlを混ぜます。計数のために血球計数器への転送この懸濁液10μl。 注 ：最終細胞収量は、処理されたサンプルのサイズに依存します。生存細胞の7×10 5〜1.2×10 6から150cm 2のフラスコ範囲あたり通常の細胞収量。 </li><li>細胞染色用の抗体溶液を準備します。 注 ：以下の希釈液を100μLの染色体積で1×10 6を染色するために滴定しました。 <ol><li>希釈し、PE結合マウス抗ヒトVEGFR-3（1時50分）; PE-Cy7の結合マウス抗ヒトCD34コンジュゲート（1：200）; APC結合マウス抗ヒトCD31（1：100）およびAlexa 488コンジュゲートラット抗ヒトポドプラニン（1：200）、100μlの組織サンプルあたりの滅菌5％FBS / PBS溶液の総体積です。の調製後抗体溶液は、使用するまで氷上に維持します。同様に、ゲートフローサイトメトリーの設定を容易にするために、希釈したアイソタイプ対照抗体の混合物を調製します。 </li></ol></li><li> 、2分間300×gで遠心分離細胞を、抗体の非特異的結合を低減するために、染色されるべきサンプルあたり100μlの滅菌5％FBS / PBS溶液中で細胞を懸濁後、上清を除去します。 4℃で20分間氷上で細胞をインキュベートします。 </li><li> 5分間、300×gで遠心分離細胞は、コンジュゲート抗体カクテルに再懸濁細胞を、上清を除去します。また、100μlのアイソタイプコントロール抗体の混合物中の細胞（1×10 5）の小さいアリコートを染色します。 20分間氷上で細胞をインキュベートします。 </li><li>未結合の抗体を除去し、300×gで細胞を5分間、2％FBS / PBS溶液と遠心分離機の2ミリリットルを追加します。上清を吸引し、洗浄を繰り返します。 </li><li>アイソタイプ対照および0.5 mg / mlのプロピジウムIOの300μlのソートする抗体染色されたサンプルの細胞ペレットを再懸濁しdide / 2％FBS / PBS溶液。ソートするまで氷上にチューブを置きます。 </li></ol> 4.セルソーティング<ol><li>楽器を設定するには、以下の材料を使用します。そのような市販の蛍光粒子、リン酸緩衝生理食塩水ベースのシース流体などAccudrop蛍光ビーズとして遅延ビーズ、ドロップなどのアライメントビーズ。 </li><li>マルチパラメータ蛍光活性化細胞選別装置で精製されたヒトのLECを分離します。楽器を設定し、製造業者の推奨に従って整列します。また、補正行​​列を生成するので、PE-CyのチャネルにかかるPEなどの蛍光色素の発光のを通してかなりのブリードを除去するために、各ソートで単一染色補正制御を実行します。 注 ：FACSの割合が高く100μmのノズルが使用され、細胞は内皮細胞培地に分類される場合、細胞が単離に耐えるソート。 </li></ol> 5.細胞培養後のFACSソートING <ol><li> 5分間300×gで遠心分離細胞は、ソーティング後。上清を吸引し、（細胞を播種するために使用したフラスコに応じて）メディア5〜10mlの中に細胞を懸濁します。 50,000未満のセルがソートされた場合、細胞は、フィブロネクチンコーティングした25cm 2のフラスコ中で培養されます。 </li><li>それ以外の場合は、培養を5％CO 2、空気加湿インキュベーター中で37℃で75 cm 2のフィブロネクチンでコーティングされたフラスコ内の細胞。 2日後にメディアを変更します。 注 ：メディアの変更の間の時間を延長することは、非内皮細胞の生存に有利に働くように思われるので、細胞培地は一日おきに変更されます。細胞がさらに拡大15の最初の分割である場合PROX-1、VEGFR-3、ポドプラニン、CD34およびCD31：私たちは、マーカーの免疫組織化学的検出を用いて、リンパ内皮細胞の表現型を検証します。 </li></ol>

<ol><li>Baluk, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functionally+specialized+junctions+between+endothelial+cells+of+lymphatic+vessels%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Functionally specialized junctions between endothelial cells of lymphatic vessels.</a> J Exp Med. 204 (10), 2349-2362 (2007).</li>
<li>Yao, L. C., Baluk, P., Srinivasan, R. S., Oliver, G., McDonald, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasticity+of+button-like+junctions+in+the+endothelium+of+airway+lymphatics+in+development+and+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Plasticity of button-like junctions in the endothelium of airway lymphatics in development and inflammation.</a> Am J Pathol. 180 (6), 2561-2575 (2012).</li>
<li>Zawieja, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contractile+physiology+of+lymphatics%5BTitle%5D)+AND+%22Lymphat+Res+Biol%22%5BJournal%5D)">Contractile physiology of lymphatics.</a> Lymphat Res Biol. 7 (2), 87-96 (2009).</li>
<li>Witte, M. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structure+function+relationships+in+the+lymphatic+system+and+implications+for+cancer+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Metastasis+Rev%22%5BJournal%5D)">Structure function relationships in the lymphatic system and implications for cancer biology.</a> Cancer Metastasis Rev. 25 (2), 159-184 (2006).</li>
<li>Andrade, M., Jacomo, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anatomy+of+the+human+lymphatic+system%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Treat+Res%22%5BJournal%5D)">Anatomy of the human lymphatic system.</a> Cancer Treat Res. 135, 55-77 (2007).</li>
<li>Kumar, V., Abbas, A. K., Aster, J. C., Ch Fausto, N. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKumar%2C+V+%22Cotran+Pathologic+Basis+of+Disease.+43-78%22">Cotran Pathologic Basis of Disease. 43-78</a>. 2, Elsevier Saunders. Robbins. (2009).</li>
<li>Shayan, R., Achen, M. G., Stacker, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lymphatic+vessels+in+cancer+metastasis%3A+bridging+the+gaps%5BTitle%5D)+AND+%22Carcinogenesis%22%5BJournal%5D)">Lymphatic vessels in cancer metastasis: bridging the gaps.</a> Carcinogenesis. 27 (9), 1729-1738 (2006).</li>
<li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Mulliken+%26+Young%27s+Vascular+Anomalies+Hemangiomas+and%22">Mulliken & Young's Vascular Anomalies Hemangiomas and</a>. , University Press. Oxford. 1059-1076 (2013).</li>
<li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Mulliken+%26+Young%27s+Vascular+Anomalies+Hemangiomas%22">Mulliken & Young's Vascular Anomalies Hemangiomas</a>. 14, University Press. Oxford. 562-594 (2013).</li>
<li>Bellini, C., Hennekam, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+disorders+of+primary+malfunctioning+of+the+lymphatic+system%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Anat+Embryol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Clinical disorders of primary malfunctioning of the lymphatic system.</a> Adv Anat Embryol Cell Biol. 214, 187-204 (2014).</li>
<li>Schook, C. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Primary+lymphedema%3A+clinical+features+and+management+in+138+pediatric+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Primary lymphedema: clinical features and management in 138 pediatric patients.</a> Plast Reconstr Surg. 127 (6), 2419-2431 (2011).</li>
<li>Brouillard, P., Boon, L., Vikkula, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetics+of+lymphatic+anomalies%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Genetics of lymphatic anomalies.</a> J Clin Invest. 124 (3), 898-904 (2014).</li>
<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((for+the+Study+of+Vascular+Anomalies+%28ISSVA%29+classification%5BTitle%5D)+AND+%22Available+from%3A+http%3A%2F%2Fwww.issva.org%2Fclassification.com%22%5BJournal%5D)">for the Study of Vascular Anomalies (ISSVA) classification.</a> Available from: http://www.issva.org/classification.com. , (2014).</li>
<li>Croteau, S. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kaposiform+lymphangiomatosis%3A+a+distinct+aggressive+lymphatic+anomaly%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pediatr%22%5BJournal%5D)">Kaposiform lymphangiomatosis: a distinct aggressive lymphatic anomaly.</a> J Pediatr. 164 (2), 383-388 (2014).</li>
<li>Lokmic, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+human+lymphatic+malformation+endothelial+cells%2C+their+in+vitro+characterization+and+in+vivo+survival+in+a+mouse+xenograft+model%5BTitle%5D)+AND+%22Angiogenesis%22%5BJournal%5D)">Isolation of human lymphatic malformation endothelial cells, their in vitro characterization and in vivo survival in a mouse xenograft model.</a> Angiogenesis. 17 (1), 1-15 (2014).</li>
<li>Smith, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lymphatic+malformations%5BTitle%5D)+AND+%22Lymphat+Res+Biol%22%5BJournal%5D)">Lymphatic malformations.</a> Lymphat Res Biol. 2 (1), 25-31 (2004).</li>
<li>Chen, E. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Similar+histologic+features+and+immunohistochemical+staining+in+microcystic+and+macrocystic+lymphatic+malformations%5BTitle%5D)+AND+%22Lymphat+Res+Biol%22%5BJournal%5D)">Similar histologic features and immunohistochemical staining in microcystic and macrocystic lymphatic malformations.</a> Lymphat Res Biol. 7 (2), 75-80 (2009).</li>
<li>Norgall, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Elevated+expression+of+VEGFR-3+in+lymphatic+endothelial+cells+from+lymphangiomas%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+cancer%22%5BJournal%5D)">Elevated expression of VEGFR-3 in lymphatic endothelial cells from lymphangiomas.</a> BMC cancer. 7 (2), 75-80 (2007).</li>
<li>Garzon, M. C., Huang, J. T., Enjolras, O., Frieden, I. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vascular+malformations%5BTitle%5D)+AND+%22Part+I.+J+Am+Acad+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Vascular malformations.</a> Part I. J Am Acad Dermatol. 56 (3), 353-370 (2007).</li>
<li>Osborn, A., Dickie, P., Adams, D., Dickie, B. 20th International workshop on Vascular Anomalies. ISSVA. , Melbourne, Australia. (2014).</li>
<li>Baluk, P., McDonald, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Markers+for+microscopic+imaging+of+lymphangiogenesis+and+angiogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+N+Y+Acad+Sci%22%5BJournal%5D)">Markers for microscopic imaging of lymphangiogenesis and angiogenesis.</a> Ann N Y Acad Sci. 1131, 1-12 (2008).</li>
<li>Lokmic, Z., Mitchell, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+the+microcirculation.+Tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Part+B%2C+Reviews%22%5BJournal%5D)">Engineering the microcirculation. Tissue engineering.</a> Part B, Reviews. 14 (1), 87-103 (2008).</li>
<li>Lokmic, Z., Mitchell, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualisation+and+stereological+assessment+of+blood+and+lymphatic+vessels%5BTitle%5D)+AND+%22Histol+Histopathol%22%5BJournal%5D)">Visualisation and stereological assessment of blood and lymphatic vessels.</a> Histol Histopathol. 26 (6), 781-796 (2011).</li>
<li>Hagerling, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+multistep+mechanism+for+initial+lymphangiogenesis+in+mouse+embryos+based+on+ultramicroscopy%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">A novel multistep mechanism for initial lymphangiogenesis in mouse embryos based on ultramicroscopy.</a> EMBO J. 32 (5), 629-644 (2013).</li>
<li>Pollmann, C., Hagerling, R., Kiefer, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualization+of+lymphatic+vessel+development%2C+growth%2C+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Anat+Embryol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Visualization of lymphatic vessel development, growth, and function.</a> Adv Anat Embryol Cell Biol. 214, 167-186 (2014).</li>
<li>Breiteneder-Geleff, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Angiosarcomas+express+mixed+endothelial+phenotypes+of+blood+and+lymphatic+capillaries%3A+podoplanin+as+a+specific+marker+for+lymphatic+endothelium%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Angiosarcomas express mixed endothelial phenotypes of blood and lymphatic capillaries: podoplanin as a specific marker for lymphatic endothelium.</a> Am J Pathol. 154 (2), 385-394 (1999).</li>
<li>Kaipainen, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+the+fms-like+tyrosine+kinase+4+gene+becomes+restricted+to+lymphatic+endothelium+during+development%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Expression of the fms-like tyrosine kinase 4 gene becomes restricted to lymphatic endothelium during development.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 92 (8), 3566-3570 (1995).</li>
<li>Schacht, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((T1alpha%2Fpodoplanin+deficiency+disrupts+normal+lymphatic+vasculature+formation+and+causes+lymphedema%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">T1alpha/podoplanin deficiency disrupts normal lymphatic vasculature formation and causes lymphedema.</a> EMBO J. 22 (14), 3546-3556 (2003).</li>
<li>Kriehuber, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+characterization+of+dermal+lymphatic+and+blood+endothelial+cells+reveal+stable+and+functionally+specialized+cell+lineages%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Isolation and characterization of dermal lymphatic and blood endothelial cells reveal stable and functionally specialized cell lineages.</a> J Exp Med. 194 (6), 797-808 (2001).</li>
<li>Florez-Vargas, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+analysis+of+D2-40+and+LYVE-1+immunostaiing+in+lymphatic+malformations%5BTitle%5D)+AND+%22Lymphology%22%5BJournal%5D)">Comparative analysis of D2-40 and LYVE-1 immunostaiing in lymphatic malformations.</a> Lymphology. 41 (3), 103-110 (2008).</li>
<li>Makinen, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PDZ+interaction+site+in+ephrinB2+is+required+for+the+remodeling+of+lymphatic+vasculature%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">PDZ interaction site in ephrinB2 is required for the remodeling of lymphatic vasculature.</a> Genes Dev. 19 (3), 397-410 (2005).</li>
<li>Connell, F. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+coding+regions+of+VEGFR3+and+VEGFRC+in+Milroy+disese+and+other+primary+lymphoedemas%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Genet%22%5BJournal%5D)">Analysis of coding regions of VEGFR3 and VEGFRC in Milroy disese and other primary lymphoedemas.</a> Hum Genet. 124 (6), 625-631 (2009).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

LECが、外来抗原といくつかの栄養素の吸収と輸送に対する免疫応答を体液の恒常性を維持する上で重要な役割を果たしています。 LEC恒常性は、細菌感染症および腫瘍転移などの疾患プロセスの影響を受けることができますが、LECが、また影響を受けた患者のための機能不全リンパ管の形成とかなりの罹患率につながる体細胞変異を開発することができます。 in vivoでの移植およびex vivo実験を通してリンパ管腫の病因のより多くの理解を得て、新たな治療の選択肢を発見するためには、まずCD34 Negの CD31 順位の選択戦略15を用いた磁気ビーズ選択戦略に基づいて、LEC分離法を開発しました。しかし、得られた培養物は、多くの場合、除去が困難であった内皮細胞以外の細胞を含んでいました。その後、この方法は、CD34 低 CD31 順位 VEGR3 Pを表現するのLECをソートするために、FACSを用いて精製し、OSポドプラニン順位表現型。このアプローチは、ポスト·ソ...

リンパ脈管系の主な機能は、リンパ液、脂質、タンパク質、および細胞成分を含む過剰な間質液を吸収し、血液の静脈系にそれを行うことです。リンパ毛細管のネットワークが、それは外来抗原の存在についてスクリーニングされたリンパ節に外来抗原を中和する白血球の免疫監視および展開における重要なプロセスをリンパ節を導きます。 片方向リンパ系は、初期リンパ毛細管、リンパエントリ1,2を許可する特殊な細胞間結合を有する薄肉のフラット内皮細胞の不連続な単層を持つユニークな構造を持つ組織で起動します。これらの毛細血管は、増大した間質圧3の存在下での血管の崩壊を防止するためにフィラメントをアンカーを介して隣接する結合組織マトリックスに取り付けられています。毛細リンパ管の収集に空の初期リンパ毛細血管それは、より大きなリンパ管や静脈に合体します。リンパ毛細血管初期と比較して、収集リンパ管は、太い血管の壁を有するリンパバルブをペアにし、いくつかの平滑筋細胞を4埋め込 ​​まれた不連続な基底膜によって包まれています。平滑筋細胞のリンパバルブおよび収縮の協調開閉は3リンパの流れを促進します。胸管と右リンパ管：ヒトでは、身体の様々な領域からのリンパ静脈は2リンパ管を形成するためにマージリンパトランクを形成するために結合します。胸管は、胸下の体の左側から、右側からリンパ液を排出しながら、頭、首、及び胸部の右腕と右側から右リンパダクトドレインリンパ。両方のダクトは頸部5に鎖骨下静脈にリンパ節を行っています。 リンパ系の障害は、広く取得Aに分類されていますND先天性（ 表1）。取得した状態の例にはリンパ管炎および二次性リンパ浮腫です。リンパ管炎は細菌感染によるリンパ管の炎症です。影響を受けたリンパ管が拡張し、多形核細胞を含む滲出液で満たします。皮膚では、これらのリンパ管は、多くの場合、関連する排出リンパ節（リンパ節炎）6の拡大に伴う赤、痛みを伴う皮下スジとして表示されます。二次性リンパ浮腫は、リンパ管やリンパ節障害物への損傷や閉塞の結果として生じます。これは、損傷や障害物へのリンパ遠位の蓄積による慢性進行性の腫れにつながります。先進国では、二次リンパ浮腫は、最も一般的転移腫瘍は、照射後の線維症および炎症後throm、リンパ管または所属リンパ節を妨げ、またはリンパ節の外科的除去後の抗癌療法の結果として悪性度と関連していますbosisおよび瘢痕化7。世界の他の地域では、二次性リンパ浮腫は、 バンクロフト糸状虫 6などの寄生虫によって引き起こされるリンパ管閉塞に続発することができます。 <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td colspan="4"> リンパ血管系の障害 </td></tr><tr><td> 獲得しました </td><td colspan="3"> 先天性の </td></tr><tr><td rowspan="3">リンパ節炎 二次性リンパ浮腫</td><td> 一次リンパ浮腫10 </td><td> 孤発性リンパ管腫13 </td><td> 症候群13とリンパ管腫関連 </td></tr><tr><td rowspan="2"> 例えば ミルロイ症候群 Meige症候群</td><td> シンプル ： リンパ管腫</td><td rowspan="2"> 例えば クリッペルTranaunay症候群 公園ウェーバー症候群 スタージ - ウェーバー症候群</td></tr><tr><td> 組み合わせ ： 毛細管リンパ管腫 毛細血管、リンパ静脈奇形 毛細血管、リンパ、動静脈奇形 毛細血管、リンパ静脈、動静脈奇形</td></tr></tbody></table>リンパ血管系の障害の表1.概要。 リンパ系の先天性障害は、遺伝的変異、リンパ管拡張症とリンパ系の8,9の異常によって引き起こされると考えられ、一次（特発性）リンパ浮腫が含まれます。一次性リンパ浮腫は、おそらく新生突然変異によって引き起こさ、または継承された散発的であることができます。リンパ障害はまた、単離されたまたはより一般症候群10の一部を構成することができます。小児集団は、リンパの97％浮腫は所属リンパドレナージ11を損なうリンパ管構造の異常と散発的です。ミルロイ病は、出生時に明らかまたは直後に12 VEGFR-3遺伝子の変異によって引き起こされる主要なリンパ浮腫の一例です。主に家族の条件が、ミルロイ病もミルロイ病32の家族歴のない幼児で同定することができます。任意のリンパ浮腫の重症度は、リンパの生産とバック静脈循環6にリンパ液を輸送する能力の量に依存します。 臨床症状にその場内皮細胞増殖に基づいて、リンパ系の異常はリンパ性腫瘍やリンパ管腫13に分類されます。 Kaposiformリンパ管腫は、LEC、腫瘍14の一例です。リンパ管腫は、胚発生の間に生じ、子供15,16に比例して成長すると考えられています。彼らはめったに退行ないがremaiできますnは無症候性外傷や感染症が臨床的合併症につながる急速な成長を沈殿するまで。上記の静脈循環への組織からリンパ管網とリンパの伝導の秩序構造はリンパ液で満たされた異常な嚢胞構造の局所的なコレクションで構成されてリンパ管腫に乱されます。これらの嚢胞血管がリンパ循環にまたはそれらが機能的リンパ管のバルブを含んでいることが接続されていることは臨床的または実験的証拠はありませんが、それらのリンパのアイデンティティは、ポドプラニン、CD31、リンパ管内皮受容体1とリンパ細胞マーカーの範囲の発現により確認されています（LYVE-1）、プロスペローのホメオボックスタンパク質1（PROX-1）およびVEGFR-3 15,17,18。これらの嚢胞構造が小さい（microcystic）または（macrocystic）大のいずれかになりますが、ほとんどのリンパ管腫はmicrocysticとmacrocystic部品（ 図1）16の両方を含みます。手術後、充血nは硬化療法および/または無線周波数は、リンパ管腫は、しばしば再発アブレーション。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/52691/52691fig1highres.jpg" width="700" /> 人間のリンパ管とリンパ管腫の図1形態。正常ヒトリンパ（A）とポドプラニン（茶色のラベル、矢印）に対する抗体で標識されたリンパ管腫の血管（BおよびC）。ヒトのリンパ奇形容器は著しい膨張内腔の大きさのかなりの変動によって特徴付けられます。これらのローカライズされた異常な嚢胞構造が小さい（microcystic、*）（B）または大（macrocystic、＃）（C）のいずれかであることができます。ほとんどのリンパ管腫はmicrocysticとmacrocystic成分の両方が含まれている。 <a href="/files/ftp_upload/52691/52691fig1highres.jpg" target="_blank">図の拡大版を表示するには、こちらをクリックしてください。</a> &lt;/ P&gt; 一部の研究者は、リンパ管腫は、LECのが異常な成長の可能性を持っていないが、代わりに通常の循環19への接続に失敗している中で、リンパ脈管構造の発達障害を表すことを示唆しています。しかし、私たちは、LMのLECが速く増殖し、LECの15が LMのLECで一次欠陥があることを示唆している包皮よりもアポトーシスに対してより耐性であることを見出しました。 LMのLECは、マウス異種移植モデルに移植されている場合、それらは、リンパ管の奇形15を連想させる構造を形成します。これは、リンパ管腫は、胎児の発育中にLMのLECで生じる一つ以上の体細胞突然変異によって引き起こされることがあるという仮説を支持しています。実際、最近の報告では、ホスホイノシチド-3-キナーゼ（PIK3CA）遺伝子20のp110α触媒サブユニット内の1つのような変異を同定しました。 DNAシーケンシング技術は、関連する変異Cの進歩を考えるとより容易にこれらの条件の今後の研究を案内する、単離されたLMのLECで同定することがウルド。実行可能なLECの分離が減少栄養利用またはプロアポトーシス剤15に応答して、このような移動、増殖、管形成能と生存のようなアッセイにおける異常と正常のLEC間の比較を容易にするであろう。分離されたLECが、さらに新しいLECの亜集団を描写するために、細胞特異的な遺伝子発現およびプロテオミクス研究を行うために私たちを有効にし、リンパ管腫の臨床管理に適した新規薬剤を発見することになります。 我々は以前新生児包皮とリンパ管腫15からLECの磁気ビーズ分離に基づいて、LEC分離法を発表しています。我々は、CD31について陽性選択にCD34 Negの細胞画分を施し、続いてCD34発現の欠如に基づいて、血管内皮細胞からの正常および疾患のLECを分離する戦略を報告しました。しかし、この方法は、残留非内皮細胞の存在によって妨げられました。これは、従来、後続の結合組織消化に表皮を除去するとは無関係でした。これらの汚染物は、一般的に、最終的にLECの分離を繰り返し、後続の試みにもかかわらず、内皮細胞培養物をover​​grewより迅速に、従って、増殖しました。実際には、2％〜5％と低い非内皮細胞の初期の汚染がLEC群15を圧倒するのに十分でした。これは、LEC細胞の収率および純度を改善するためのオプションとして、蛍光活性化細胞ソーティング方法を探るために私たちを促しました。さらに、我々はCD34 低 CD31 順位 VEGFR-3 順位ポドプラニン順位のLECを識別するために、選択マーカーにVEGFR-3とポドプラニンを追加し、LEC集団の特異性を高めるためにソートマルチパラメータを使用していました。 これらのマーカーを選択するための理論的根拠は、報告される一方のLECと血液血管内皮CEに基づいていましたLLSは、CD31などの一般的な多くの細胞表面マーカーを有する血液の血管内皮細胞に21-23を比較した場合、LECが表現型CD34の発現の変化、ポドプラニンおよびVEGFR-3細胞表面マーカーを示します。 CD31はまた、血小板内皮細胞接着分子1（PECAM-1）としても知られている130 kDaの膜貫通糖タンパク質です。これは、それが血液およびリンパ管21,24,25のすべてのタイプで発現されるので、汎内皮細胞マーカーであると考えられています。 CD34は、ほとんどの造血前駆上の110 kDaの膜貫通糖タンパク質に存在し、細胞、血管内皮細胞およびいくつかのリンパ管26をステム。 VEGFR-3は、血管内皮細胞増殖のための受容体は、CおよびD因子、最初にマウス胚における現像静脈上に存在するが、転写によって調節リンパ仕様に従うことhicken C、SRY関連HMGボックス（SOX）-18因子O valbumin U pstreaM のp romoter t の ranscription Fの俳優 2（COUPTF-II）とPROX-1は、VEGFR-3の静脈の発現が失われ、それは、胚のLEC 25,27に限定となります。ポドプラニンは、38 kDaの膜は、ムコ蛋白、最初のマウス胚発生28のほぼ胚性リンパ管11日目（〜E11.0）に注目し、それを強く微小血管、リンパ管、リンパ管腫でmacrocysticリンパ内皮によってポドプラニンの式で表されている間15以上の変数です。フローサイトメトリー実験は、少なくともいくつかのCD34 高 CD31 順位内皮細胞は、リンパマーカーポドプラニン29を発現することを示唆しています。ヒトのリンパ管の奇形でLYVE-1およびポドプラニン染色の体系的評価の両方がリンパ奇形内皮細胞30を染色するのに有効であることを示したが、正常組織において、LYVE-1は、初期リンパ強く存在することが報告されました毛細血管内皮が、収集リンパ内皮31に減少し、さらには存在しません。私たちの目標として初期、我々は我々のセル選択戦略の一環として、LYVE-1を使用しないことを選択したリンパ管内皮細胞を収集の両方を単離することです。最後に、これらのマーカーを採用する決定はまた、顕微鏡イメージングのためのフローサイトメトリーおよび免疫蛍光研究との間の相関を可能にする機能をリンパ管を標識するために診断的に使用される抗体の利用可能性に基づいていました。 この記事では、組織消化法、細胞染色およびCD34 低 CD31 順位 VEGFR-3 順位ポドプラニン順位のLECならびに包皮とリンパ奇形からCD34 高 CD31 順位 VEGFR-3 順位ポドプラニン順位内皮細胞の正常な分離のために必要なFACSの設定を説明します組織。

<table><tbody><tr><td>DMEM</td><td>Life Technologies (Gibco)</td><td>11965-092</td><td>手術室からの組織サンプルの収集に使用されます。</td></tr><tr><td>EGM-2 MV弾丸キット</td><td>ロンザ</td><td>CC-3202</td><td>EGM-2 MV弾丸キットには、500mlのEBM-2培地とヒトEGF、ヒドロコルチゾン、ゲンタマイシン(GA-1000)、ウシ胎児血清(FBS)、VEGF、ヒトFGF-b、R3-IGF-1、アスコルビン酸が含まれています。</td></tr><tr><td>VEGF-C</td><td>R&D Systems</td><td>2179-VC-025</td><td>Complete endothelial cell media is supplemented with 50 ng/ml VEGF-C</td></tr><tr><td>Antibiotic-antimycotic solution (100x)</td><td>Life Technologies (Gibco)</td><td>15240-062</td><td>This solution contains 10,000&nbsp;ペニシリンのU / ml、10,000&nbsp;ストレプトマイシンのmg / mlと25&nbsp;mg / mlの真菌症抗真菌薬。.1:100希釈でご使用ください。</td></tr><tr><td>ヒト血漿由来フィブロネクチン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F2006</td><td>10 mg/mL 濃度で使用。4&nbspに保管すると、最大1か月間再利用できます。&#176;Cで無菌に保たれています。7&nbsp;を使用150cm2フラスコをコーティングするためのml。</td></tr><tr><td>StemPro Accutase Cell dissociation reagent</td><td>Life Technologies (Gibco)</td><td>A11105-01</td><td>StemPro&reg;アキュターゼ&reg;は、フラスコの全表面積をカバーするために、cm2あたり0.05mlで使用されます。より少ない体積を使用すると、細胞の剥離が不完全になる可能性があります。</td></tr><tr><td>0.4% トリパンブルー色素</td><td>Life Technologies (Gibco)</td><td>15250-061</td><td>生存率染色剤として使用。</td></tr><tr><td>ディスパーゼII</td><td>ロシュアプライドバイオサイエンス</td><td>4942078001</td><td>0.04%で使用</td></tr>コ<tr><td>ラゲナーゼII</td><td>ワーシントンラボ</td><td>417600</td><td></td></tr>%で使用 I<tr><td></td><td>ロシュアプライドバイオサイエンス</td><td>11284932001</td><td>0.01%</td></tr><tr><td>70mmナイロン細胞ストレーナー</td>で使用 <td>BDファルコン</td><td>352350</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">[header]</td></tr><tr><td>PE共役VEGFR-3クローン9D9F9、クローンWM59</td><td>BioLegend</td><td>356204</td><td>1:50</td></tr>希釈<tr><td>PE-Cy7-標識CD34、クローン581</td><td>BioLegend</td><td>343516</td><td>1:200</td></tr>希釈<tr><td>APC標識マウス抗ヒトCD31、クローンWM59</td><td>BioLegend</td><td>303116、</td><td>1:100希釈で使用</td></tr><tr><td>Alexa 488-標識ラット抗ヒトポドプラニン、クローンNC-80。</td><td>BioLegend</td><td>337006</td><td>1:200希釈で使用</td></tr><tr><td>PE標識マウスIgG1、kアイソタイプ、クローン MOPC-21</td><td>BioLegend</td><td>400112</td><td>1:50希釈で使用</td></tr><tr><td>PE-Cy7標識マウスIgG1、kアイソタイプ、クローン MOPC-21</td><td>BioLegend</td><td>400126</td><td>1:200希釈で使用</td></tr><tr><td>APC標識マウスIgG1、kアイソタイプ、クローンMOPC-21</td><td>BioLegend</td><td>400120</td><td>1:100</td></tr><tr><td>希釈で使用Alexa 488標識マウスIgG2a、kアイソタイプ、クローンRATK2758</td><td>BioLegend</td><td>400525</td><td>1:200希釈で使用</td></tr></tbody></table>

マルチパラメータ蛍光活性化細胞選別によるヒトリンパ内皮細胞の単離

Isolation of Human Lymphatic Endothelial Cells by Multi-parameter Fluorescence-activated Cell Sorting

このような一次リンパ浮腫、リンパ管腫やリンパ性腫瘍のようなリンパ系障害は、重大な病的状態を引き起こすが、少しは、その生物学について知られているまれな条件です。罹患および健常組織から高純度のヒトリンパ管内皮細胞（LECの）を単離することは、遺伝的分子·細胞レベルでのリンパ内皮の研究を促進するであろう。それは、これらの調査は、これらの条件の臨床管理を変更することができる新しい治療のターゲットを公開してもよいことが予想されます。のLECとリンパ奇形リンパ管内皮細胞（LMのLEC）ヒト包皮の分離を説明するプロトコルが提示されています。単一細胞懸濁液の組織を得るために刻み、酵素ディスパーゼIIおよびコラゲナーゼIIを用いて処理しました。得られた単一細胞懸濁液は、次いで、分化（CD）マーカーCD34、CD31、血管内皮増殖因子-3（VEGFR-3）およびポドプラニンのクラスタに対する抗体で標識しました。スタイNED生存細胞は、他の内皮細胞及び非内皮細胞からCD34 低 CD31 順位 VEGFR-3 順位ポドプラニン順位 LM LEC集団を分離するために、蛍光活性化セルソーター（FACS）で選別しました。ソートLMのLECを培養し、さらに実験的な使用のためのフィブロネクチンコートフラスコに拡大しました。

初期組織消化に続いて、未分画試料の培養24時間後に、別個の内皮細胞のコロニーは、線維芽細胞様細胞および平滑筋細胞と共に（ 図2A）を観察することができます。選別および細胞培養における24時間後に続いて、CD34 低 CD31 順位 VEGFR-3 順位ポドプラニン順位細胞が付着し、典型的な敷石状の形態（ 図2BおよびC）を示します。上記のFACS法を用いて、純度99.8％の細胞を浄化し、CD34 高 CD31 順位 VEGFR-3 順位ポドプラニン順位内皮細胞と区別することができます。磁気ビーズ分離法を使用する際の戦略をゲート制御し、仕分けの代表的な結果を図3に示されている。これは、問題を解決したが経験しました。これまでに、我々は、LMのLECとLEC包皮、この経過後の通路13に、これらの細胞を継代していますSは形態学的変化と減少...

このプロトコルの目的は、蛍光活性化セルソーティング（FACS）を用いて、ヒトのリンパ奇形嚢胞様血管および包皮を裏打ちするリンパ管内皮細胞を単離することです。その後の細胞培養およびこれらの細胞の拡大は、遺伝的プロテオミクス、機能および細胞分化の研究のための実験的な洗練の新しいレベルを可能にします。

Lymphatic system disorders such as primary lymphedema, lymphatic malformations and lymphatic tumors are rare conditions that cause significant morbidity ...

本手順の目的は、フローサイトメトリー（fluorescence activated cell sorting）を用いて、ヒトリンパ管奇形および前皮のリンパ管を構成する高純度のリンパ管内皮細胞を単離することである。まず、患者の組織サンプルを酵素的に消化させる。次に、得られた単一細胞懸濁液を培養し、リンパ管内皮細胞の数を増強させる。サンプル中で、細胞は目的の細胞表面マーカーに対する抗体で標識され、マルチパラメーター蛍光活性化細胞分取（FACS）を用いて分取されます。最終的に、前皮およびリンパ管奇形由来のリンパ管内皮細胞は、さらなるダウンストリーム解析のために細胞培養で増殖させることが可能です。既存の手法に対する本手法の主な利点は、フローサイトメトリー（FACS）による細胞分取で99%以上の純度の細胞が得られ、混入細胞の過増殖によるリンパ管内皮細胞の喪失に伴う問題を回避できることです。まず、抗生物質・抗真菌剤溶液を添加した10 mLの培地を含む50 mLチューブを計量します。次に、リンパ管奇形または前腕皮膚のサンプルをチューブに移し、再度チューブを計量して組織の重量を決定します。次に、クラス2バイオセーフティキャビネット内で、滅菌済みのピンセットを用いて組織と培地を100 mmの組織培養皿に移し、滅菌済みのハサミで切断します。最後に、組織を1 mm³の大きさに細切にします。その後、これらの断片を、10 mLの新鮮な抗生物質・抗真菌剤入り培地が入った50 mLチューブに移します。チューブを数回かき混ぜて組織を再懸濁させた後、サンプルを遠心分離します。上清を除去し、細切した組織100 mgあたり1 mLの予熱した消化液を加え、37 °Cのインキュベーター内で200 RPMで定速振盪しながら組織をインキュベートします。リンパ管内皮細胞を効率的に濃縮させるためには、細胞がコラゲナーゼおよびDNase反応に十分にさらされ、かつ分離工程で生存できる適切なタイミングを判断することが極めて重要です。これは、組織消化プロセスを慎重にモニタリングし、ほとんどの組織が微細な断片に消化された時点で反応を停止させることで達成されます。インキュベーションの終了時に、ほぼすべての組織が小さな断片に消化されていることを確認し、組織スラリーを70 micronストレーナーでろ過して、滅菌済みの50 milliliterチューブに回収します。次に、ゴムプランジャー付きの3 milliliterシリンジピストンを使用して、細胞外マトリックスのわずかな痕跡しか観察されなくなるまで、残った組織をすり潰します。次に、解離酵素培地と同量の血管内皮細胞培地でセルストレーナーを洗浄し、細胞を遠心分離して回収します。検体の大きさに応じて、最大20 mLの血管内皮細胞培地でペレットを懸濁させます。その後、細胞数をカウントし、フィブロネクチンでコーティングした150 cm²のフラスコに、血管内皮細胞培地最終容量20 mLで2 × 10⁶個の細胞を播種し、一晩培養します。翌朝、抗生物質・抗真菌剤溶液を添加したPBSで3回洗浄し、未結合の細胞を除去します。次に、リンパ管内皮細胞の数を増やすため、新鮮な内皮細胞培地を細胞に添加し、コンフルエント率が約80%になるまで5～7日間培養します。その後、マルチパラメーター蛍光活性化細胞分取（FACS）によるソーティングに向けて、細胞を染色します。まず、細胞培地を除去し、PBSで細胞を3回洗浄します。次に、37°Cで5～7分間インキュベートした後、剥離液7 mLを添加します。解離した細胞を回収し、3倍量の血管内皮細胞培地で酵素を不活化させ、細胞懸濁液を滅菌チューブに移します。細胞を3回遠心分離し、2回目と3回目の遠心後のペレットを5 mLのPBSで洗浄します。最後の洗浄後、ペレットを5 mLの新鮮なPBSに再懸濁し、トリパンブルー排除法により生存細胞数を計測します。細胞計測後、無菌的に細胞をフローサイトメトリー用染色チューブに移し、遠心分離して細胞を沈殿させ、非特異的結合をブロックします。細胞を5%F-B-S-P-B-Sに再懸濁し、氷上で20分間インキュベートします。ブロッキング後、遠心分離を行い、上清を除去して再懸濁します。ペレットをCD 34、CD 31 potaninおよびVEGF receptor three抗体カクテルに懸濁します。氷上で20分間静置した後、細胞を2 mLのF-B-S-P-B-Sで3回洗浄して未結合の抗体を取り除き、再懸濁します。ペレットを氷上で300 µLのF-B-S-P-B-S溶液中のプロピジウムイオダイドに懸濁します。最後に、精製したヒトリンパ管内皮細胞をマルチパラメータ蛍光活性化細胞分取装置でソートします。次に、ソートした細胞を遠心分離し、細胞培養の播種に適した培地でペレットを再懸濁します。ここでは、podoplaninに対する抗体で標識された正常なヒトリンパ管およびリンパ管奇形血管が示されています。ヒトリンパ管奇形血管内における著しい拡張と、管腔サイズの大きな変動に注目してください。実際、分画していないサンプルにおいて、最初の組織消化および24時間の培養後、ほとんどのリンパ管奇形には、小型または微小嚢胞状および大型または大嚢胞状の両方の異常な嚢胞構造が含まれています。ソーティング後さらに24時間細胞培養を行うと、線維芽細胞様細胞や平滑筋細胞に加えて、明確な血管内皮細胞コロニーが観察されます。しかし、CD 34低発現、CD 31陽性、VEGF受容体3陽性のポドプラン陽性細胞は、培養容器に付着し、これらの画像で観察される典型的な石畳状の形態を示します。このビデオを視聴することで、蛍光活性化細胞分取（FACS）を用いて、ヒトリンパ管奇形および皮膚のリンパ管を構成するリンパ管内皮細胞を高純度で単離する方法について深く理解することができます。ヒト一次組織の取り扱いは、人体に有害な感染剤が含まれている可能性があるため、危険を伴う場合があることに留意してください。本手順を実施する際は、手袋、保護メガネ、白衣の着用など、標準的な予防策を常に講じてください。

isolation-human-lymphatic-endothelial-cells-multi-parameter

Research

JoVE Journal

Medicine

医学

このビデオは、血液脳関門(BBB)内皮モデルを介したリンパ球の移動の実験的調査を示しています。in...

微小血管内皮細胞単層におけるリンパ球トランスマイグレーションの研究

リンパ節間質細胞の単離は、線維芽細胞網様体細胞、リンパ管および血液内皮細胞を得るための酵素消化と機械的脱凝集を含む多段階の手順です。記載された手順では、短時間の消化と自動機械的脱凝集を組み合わせて、生存リンパ節間質細胞の表面マーカーの劣化を最小限に抑えます。...

ネズミリンパ節間質細胞の単離

ヒトの皮膚生検から皮膚常在T細胞を効率的に分離するためのプロトコルを記述します。このプロトコルは、フローサイトメトリー分析およびex...

表現型分析のためのヒト皮膚からリンパ球単離と<em&gt; ex vivoで</em&gt;細胞培養

腸管関連リンパ組織パイエル排水腸間膜リンパ節など誘導サイトと粘膜を含むエフェクター...

マウス小腸管免疫系からリンパ球を分離すること

このプロトコルの目的は、説明されているマーカーを用いた肝臓内リンパ管の内皮細胞集団を識別するためにです。コラゲナーゼ IV と DNase...

リンパ管内皮細胞のフローサイトのマウス肝臓の消化

このステップ バイ ステップのプロトコルによる ECs...

ひと誘導多能性幹細胞由来血管内皮細胞 (による ECs) へ白血球接着の評価のためのマイクロ流体アッセイ

このプロトコルは脂肪細胞から良質のRNAを得る方法論および流れのcytometryによって分析のための多数の膜区切られたマーカーの汚損によってSVFマクロファージの表現型化を含む単一のプロセスの人間の内臓の脂肪からの生存可能な脂肪細胞そして間質の管の部分SVFのセルの隔離に有効なコラゲナーゼの消化力方法を提供する。...

RNA解析およびマクロファージ表現型解析に適したヒト内臓脂肪組織からの生存脂肪細胞および間質血管画分の単離

これは、妊娠中および非妊娠マウスの両方から子宮リンパ球細胞を単離する方法である。この方法は、FACSの表現型、細胞分類、機能アッセイ、RNA-seq、プロテオミクスなどの複数の下流アプリケーションに使用できます。ここでのプロトコルは、フローサイトメトリーによる細胞性の細胞の1個の子宮型を表示しています。...

フローサイトメトリーによる分析のための子宮内生リンパ球細胞の分離

この論文では、真皮リンパ管からマウス内皮細胞を磁気ビーズベースで単離する方法について説明しています。単離されたリンパ内皮細胞は、下流の in vitro 実験やタンパク質発現解析に使用できます。...

マウス真皮リンパ管内皮細胞の単離

最近同定された頭蓋内細胞タイプである軟髄膜リンパ内皮細胞(LREC)は、機能が十分に理解されていません。この研究は、マウスからLLECを採取し、 in vitro...

軟髄膜リンパ管内皮細胞の採取と初代培養

学ぶマルチパラメータ蛍光活性化細胞選別によるヒトリンパ内皮細胞の単離法。組織の酵素処理と細胞培養を組み合わせ、99%以上の高純度で細胞を分離し、遺伝学的・機能的研究への応用が可能です。

マルチパラメータ蛍光活性化細胞選別によるヒトリンパ内皮細胞の単離

さらに動画を探す