Name: 蒸発低減文化条件は、マイクロタイタープレートに多細胞スフェロイド形成の再現性を高め (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-03-07T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 24 s
Description: 学ぶ液体オーバーレイ法を用いた384ウェルプレートでの均一な多細胞スフェロイド形成技術。培地蒸発低減により再現性を向上させ、がんスクリーニングや創薬研究への応用が可能となる。

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この作品は、チェコ教育省、青年、およびスポーツ（LO1304）、チェコ共和国の科学技術振興機構（TE01020028）からの助成金によってサポートされていました。著者は、環境蓋の静止画を撮影するための博士ラクシュマンバラナシに感謝したいと思います。

アガロースでコーティングされたプレートの調製<ol><li>低融点アガロースの0.75グラムを計量し、血清を含まない（フェノールレッドの有無にかかわらず）マッコイ5A培地の100ミリリットルに追加します。電子レンジ内の溶液を加熱し、完全にアガロースを溶解するために、すべての1-2分を旋回。それを殺菌するための解決策をオートクレーブ。 </li><li>約70℃にアガロースオートクレーブし冷却し、層流ボックス内の真空濾過により500ミリリットル、0.22μmのフィルター上部からそれをフィルタリングします。一度に全体のソリューションを使用していない場合はより小さなボリュームに0.75％フィルタリングアガロース溶液（FAS）を等分。低温室または4週間まで4℃の冷蔵庫で、このすぐに使用アガロース溶液を無菌的に保管してください。 </li><li> 70％エタノール（エタノール）でカセットコンビ試薬ディスペンサーとプライムにplastic-または金属傾け調剤カセットで小さなチューブを取り付け、その後、フローボックス内の滅菌リン酸緩衝生理食塩水（PBS）で。 </li><li>使用前に、FAS私の保存されたアリコートを加熱<html> nは、マイクロ波は、溶融しました。総理アガロース溶液とコート384ウェル、組織培養（TC）との分注カセットは、FASの15μLとマイクロプレート「特別な」 - 処置しました。プレート内のアガロースは細胞を播種する前に、15〜20分間冷却してください。低温室で、または4℃、直射光からポリエチレン袋に包まれ、無菌的にアガロースコーティングしたプレートを保管してください。 注：原液中のアガロースの濃度の変化を防止するために、0.75％FASの繰り返し加熱を避けてください。上記の条件で保存した場合、アガロースでコーティングされたプレートは、最長2週間保存することができます。 FASは、プレートのコーティング時の加熱を必要としません。 </li><li>カセットのヒントやチューブに残っているアガロースを除去するために、70〜80℃の滅菌水でそれをプライミングすることにより、分注カセットをきれいにしてください。 </li></ol> 2.細胞培養およびMCTSの形成<ol><li>培養ヒト結腸直腸癌HCT116細胞を、前述のように小娘= &quot;外部参照&quot;&gt; 8。 </li><li>アガロースでコーティングされたの必要数を削除し、384ウェル、冷蔵保存からマイクロTC処理し、15分間室温（RT）にそれらを平衡化。 </li><li> 70％エタノールと滅菌PBSで標準管分配カセットをプライミングすることによって、細胞播種のためのコンビ試薬ディスペンサーを準備します。ディスペンサーの手動設定ボタンを使用して、メディアに必要μLに播種量と分注速度を調整します。 注記：全細胞播種プロセスは、無菌条件下で層流ボックス内で行われます。 </li><li>組換え細胞解離酵素を用いて組織培養フラスコから接着細胞を解離します。完全増殖培地50μL中ウェル当たり2.5×10 4細胞/ mlの密度でシード細胞と無菌ビーカー中の細胞懸濁液のストックを作ります。複数の384-WPを播種する際、ビーカーの底に沈降するのを防ぐために、マグネチックスターラーを用いて細胞をかき混ぜます。 </li><li>許可しますプレートを室温で30分間休憩した後、4×gで15分間遠心分離します。 </li><li>一方、蒸発還元環境蓋を取り、短辺中の滅菌H 8mLの2 Oまたは5％のジメチルスルホキシド（DMSO）で塗りつぶし5mLのピペット（ 図1A）を使用して（左および右）。まず、ゆっくりと上下にピペットチップを掃引することにより、左側の谷に液体を充填4mLのを分配します。右側の谷で、この手順を繰り返します。 注：サイドトラフに追加された液体は、蓋の中央部で合流し、ガス交換（ 図1A）のためのギャップを残さないことを確認してください。蓋の外部にH 2 Oの浸透2 O結果Hの過剰量を添加し、続いて384ウェルTCプレートの外側のウェルに。 </li><li> （ 図2Aを滅菌H 2 Oで384ウェルTCプレートの液溜りを記入し、液体充填環境蓋との定期的なプレートの蓋を交換）。 </li><li>湿度95％、5％CO 2及び20％O 2、37℃のロータリーインキュベーターにプレートを置き、そして細胞を4日間MCTSesに凝集することを可能にします。突然落下湿度レベルを防ぐために、後続の日には長すぎるためのインキュベーターの扉を開けないでください。 </li></ol> 3.培地交換ロボットシステムを使用して<ol><li> MCTSの形成後4日目に、よく自動化されたマイクロプレートウォッシャーディスペンサーを使用して、あたり予め温め媒体の30μLを追加します。 MCTSesは、さらに3日間増殖することを可能にします。彼らは実験のために希望のサイズを達成するまで、定期的に3日ごとに培地を交換してください。 </li><li>各ウェルから培地の定義されたボリュームを吸引するために、経験的にワッシャーマニホールドのz -heightを調整します。ウェルあたり培地を吸引30μL、新鮮な、予め温めた培地を30μLと交換してください。 注：ディスペンシング速度を設定し、ワッシャーマニホールドがダウンして移動する速度最低速度でのウェルにウェル内の乱流を最小限に抑えることができます。 </li></ol> 4. MCTSの高コンテンツイメージングと半自動画像解析<ol><li>画像4X空気対物レンズを用いた高含量の自動画像化システムにおけるMCTS（NA 16）。 </li><li> 4×4に11ミリ秒とビニングに露光時間を設定して実験のために所望のようにウェル当たり全体MCTSをキャプチャするために数と間隔のz -stacksのとピクセルビニングを調整します。 </li><li>プログラミング言語で記述され、社内のルーチンを使用して &quot;は、Readme」に記載されているように、画像を段階的に処理します。 注：.mファイルコード.txtのreadmeファイルには、補助コードファイル（ 図1B）として入手可能です。ルーチン対策2D画像からMCTS面積、長軸と短軸、周囲、および堅牢。 </li></ol><img alt="図1" src="/files/ftp_upload/55403/55403fig1.jpg" /> 図1：環境蓋の調製と半自動ルーチンのフローチャート。正しい（左）および過剰の液体を充填する（右）の量（ここでは、5％DMSO）で充填された蒸発還元環境蓋の（A）画像。矢印は、液体を追加するための短辺のトラフを示します。アスタリスクは、DMSOの正しいボリュームの添加後、蓋の中央にあるギャップを示しています。 （B）半自動画像解析ルーチンに必要な手順を示すワークフロー。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55403/55403fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a>

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</ol>

著者らは、開示することは何もありません。

フィルタリングされたアガロースで384ウェルTCプレートをコーティング LOTにおける標準的技法を被覆するアガロース、アガロースを必要とする、及び/又は分配ユニットは、アガロース6のゲル化を防ぐために加熱保持するプレートを1〜1.5％の低融点を使用することです。直径が0.2〜0.4ミリメートルの範囲の小さなチューブ開口を有する液体分注カセットを使用して複数のプレートを準備している間、アガロースのゲル化は、潜在的な関心事です。それは分配中は追加の加熱を必要としないように分配するカセットを目詰まりの潜在的な問題を克服するために、0.75％FASは、使用されました。なお、それはまた、0.75％FASはとして急速に濾過されていない1〜1.5％、またはさらには0.75％アガロース溶液としてゲル化しないことが観察されました。 0.75％FASを使用して、分注カセットを詰まらせることなく被覆する35未満の全384ウェルTCプレートをとります。カセットは、残留Aを除去するために加熱された水でプライミングすると、最後に洗浄することができますカセットを使用して...

腫瘍中の癌細胞は、生理学的に細胞外マトリックスと相互作用する細胞に囲ま複雑な3次元（3D）構造に配置されています。ほぼ組織内のすべてのセルは、3D環境内に存在する、より生理学的に関連する腫瘍の特性を模倣するインビトロ腫瘍モデルでの必要性は、いくつかの3次元培養技術1、2、3の開発をもたらしました。これらのモデルは、現在、3D 2の治療薬への転移および細胞応答に腫瘍微小環境の役割を研究するための基礎的な研究ツールになってきています。また、2次元（2D）細胞培養物4と比較して、3Dモデルは、細胞シグナル伝達経路に影響を与える、腫瘍-間質相互作用のよりよい理解を可能にします。 癌細胞株の多腫瘍スフェロイド（MCTSes）は、しばしば、3DセルCで使用されていますin vivoでの腫瘍に対するそれらの相対的な近さに起因するultureモデル。使用中のいくつかの技術のうち、アガロースでコーティングされたプレート上でMCTS生成の液体オーバーレイ技術（LOT）は、リード最適化とターゲットバリデーション5、6、7、8、9、10、11のために大きな関心を集めています。これが成功しLOT 6、7を使用してMCTS培養における化合物ライブラリーのパイロットの画面を実行することができました最近の研究から明らかです。しかし、媒体の蒸発によって誘導される不均一な損失にMCTSの形態と成長のウェル間の変動は、マイクロタイタープレートを使用して、LOT（MPS）を伴う一般的なハードルがあります。その結果、不均一なMCTSesの形成は有意との関連性を損ないます薬理学的アッセイ8、12、13からのデータ。自動液体分注装置を使用する際の再現性の問題に加えて、LOTベースのハイスループットアッセイに影響を与える別の実用的な問題は、アガロースでMPのコーティングです。分配ユニットは、アガロースのゲル化を防ぐために加熱保持することができるが、分注カセットおよび管の目詰まりは、ロボットシステム6のための潜在的な問題です。 これらの課題のいくつかを克服するために、我々は最近、MCTS文化8用のLOTでいくつかの変更を考案しました。これらの修飾は、主に一般的ハイスループットスクリーニング実験室で発見された機器を用いたMPから不均一媒体の損失を防止することができる方法に基づいています。 3に均一なサイズで再現性のMCTSesの世代のために修正されたLOTの詳細な手順84ウェルプレート（WPS）は、ここに提示されています。原稿は、特に断面積の測定のために明確に定義された境界を持っていない、部分的に崩壊し、薬剤処理MCTSesで、MCTSサイズの評価のための半自動化ルーチンを示しています。

<table><tbody><tr><td>アガロース</td><td>シグマ アルドリッチ</td><td>A9414</td><td>低融点</td></tr><tr><td>マッコイズ 5A ミディアム</td><td>シグマ アルドリッチ</td><td>M8403</td><td></td></tr> <tr><td>インチラピッド"FiltermaxフィルターTPP</td><td></td><td>99505</td><td>0.22 &mu;m、500 mL</td></tr><tr><td>マルチドロップ&トレード;Combi試薬ディスペンサー&nbsp;</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>5840300</td><td></td></tr><tr><td>スモールチューブディスペンシングカセット&nbsp;</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>24073295</td><td>メタルチップ&nbsp;</td></tr><tr><td>384ウェルTCプレート&nbsp;</td><td>PerkinElmer</td><td>6057308</td><td>プレートタイプ - CellCarrier</td></tr><tr><td>スタンダードチューブ分注カセット</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>24072670</td><td></td></tr><tr><td>MicroClime 環境蓋</td><td>Labcyte</td><td>LLS-0310</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma</td><td>D4540</td><td></td></tr><tr><td>ロータリーインキュベーター (SteriStore)</td> <td>HighRes Biosolutions</td><td>23641</td><td>シリアル番号:D00384</td></tr><tr><td>マイクロプレートウォッシャーディスペンサー&nbsp;</td><td>BioTek</td><td>不特定の</td><td>モデル: EL406&nbsp;</td></tr><tr><td>ハイコンテントイメージングシステム(CellVoyager)</td><td>横河電機株式会社</td><td>詳細不明</td><td>Model:CV7000</td></tr><tr><td>Orange G</td><td>New England Biolabs</td><td>B7022S</td><td></td></tr><tr><td>TrypLE&trade;Express recombinant cell dissociation reagent</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>12604021</td><td>フェノールレッドフリー</td></tr></tbody></table>

蒸発低減文化条件は、マイクロタイタープレートに多細胞スフェロイド形成の再現性を高め

Evaporation-reducing Culture Condition Increases the Reproducibility of Multicellular Spheroid Formation in Microtiter Plates

密接にインビボ条件で模倣する腫瘍モデルは、潜在的な抗癌薬のスクリーニングのための薬物発見および開発にますます普及しつつあります。多腫瘍スフェロイド（MCTSes）を効果的にリード最適化および標的バリデーションのためのインビトロモデルにおけるそれらの優れた製造、固形腫瘍の生理学的条件を模倣します。 MCTS培養のための利用可能な様々な技術のうち、アガロース上に液体オーバーレイ方式は、MCTSの世代のための最も安価な方法の一つです。しかし、ハイスループットスクリーニングのための液体オーバーレイを使用してMCTS培養の信頼できる転送をアガロースウェルにわたって均一MCTS形成の非再現性を有するマイクロタイタープレート（MPS）のコーティングを含む多くの制限によって妥協されてもよいです。国会議員は、薬物のためのプレート全体の使用を防止する、プレートの外部から媒体の過度の蒸発に起因するエッジ効果に有意傾向がありますテスト。この原稿は、均一なMCTS形成の拡張性と再現性を高めるために液体オーバーレイ技術に詳細な技術改良を提供します。薬物治療が提示された後に加えて、MCTSの評価のためのシンプルな、半自動、および普遍的に適用するソフトウェア・ツールの詳細については備えています。

特に、周辺井戸からの媒体の不均一な損失は、小さな培養容量を持つ国会議員で頻繁に遭遇する問題です。このような、よく制御された温度/加湿システムと蒸発低減国会議員とプレートの蓋付きインキュベーターと実質的に改善された培養条件は、井戸8を横切る媒体の重大な損失を低減します。相対蒸発を測定するために、オレンジG（OG）の等容積を各ウェルに添加し、3日間のOGの吸光度の変化は、標準、ロータリーインキュベーターで定期的かつ環境ふたを有するプレートに記録しました。プレートウェルプレート（ 図2A）の端からの距離に基づいて6つのグループに分けました。グループ1-4では、標準のインキュベータ（ 図2B）で定期的にふたを有するプレートの経時OGの吸光度に大きな変化がありました。 OGの吸光度の変化からもありましたが、グループ環境蓋/回転式インキュベーターの組み合わせ（ 図2C）の下のプレート中の1ウェルは、変動係数（CVが）標準インキュベータ（...

マイクロタイタープレートからの培地の不均一な損失は、均一な多細胞腫瘍スフェロイド形成の再現性に影響を与えます。重要な媒体の損失を低減するために培養条件を改善するスフェロイド形成の再現性及び液体オーバーレイ技術を使用して回転楕円体に基づくアッセイの結果を改善します。

Tumor models that closely imitate in vivo conditions are becoming increasingly popular in drug discovery and development for the screening of potential ...

本手順の全体的な目的は、384ウェルプレートにおける液体オーバーレイ法を用いた均一なスフェロイド形成のスケールアップ能力と再現性を向上させることです。この手法の主な利点は、複数のプレートにわたる過剰な培地操作を削減し、それによってスフェロイド形成の再現性を向上させられる点にあります。当研究室では、節足動物のスクリーニング試験に向けた3Dスフェロイドの培養法を開発・検証してきましたが、本研究では多細胞培養プレートにおけるエッジエフェクトを評価することを目的としました。本日は、研究室のポスター担当であるSonaと共に、この手順を実演します。まず、低融点アガロースを0.75 g量り取り、フェノールレッド含有または不含、かつ血清不含のMcCoy's 5a培地100 mLに加えます。この溶液を電子レンジで加熱し、1〜2分ごとに攪拌して、アガロースを完全に溶解させてください。次に、溶液をオートクレーブで滅菌します。オートクレーブ後のアガロースを約70 °Cまで冷却した後、ラミナーフローボックス内で500 mLの0.22 µmボトルトップフィルターを用いてろ過します。続いて、溶液を一度にすべて使用しない場合は、分注して保存します。この調製済みアガロース溶液は、コールドルームまたは4 °Cの冷蔵庫に無菌状態で最大4週間保存してください。フローボックス内で、プラスチック製または金属チップ付きの分注カセットをコンビ試薬分注器に取り付けます。チューブウェイトを70 %エタノールの容器に入れ、カセットをプライミングします。次に、チューブのウェイトをPBSの容器に移動させ、再度プライミングを行います。続いて、保存されていたろ過済みアガロース溶液のアリコートを電子レンジで加熱し、融解させます。ディスペンシングカセットをアガロース溶液でプライミングし、プロトコルを開始して、384ウェル組織培養処理済みマイクロプレートに15 microlitersのろ過済みアガロース溶液をコーティングします。プレート内のアガロースを15〜20分間冷却した後、ビデオの次のセクションで説明するように細胞を播種するか、あるいは4°Cで直射日光を避けて保存してください。最後に、ディスペンシングカセットを洗浄するため、チューブウェイトを70〜80°Cの滅菌水に入れ、ディスペンサーのプライムボタンを押します。これにより、カセットチップとチューブ内に残っているアガロースが除去されます。以下の細胞播種工程は、無菌条件下でラミナーフローボックス内で行ってください。まず、必要な数のアガロースコーティング済み384ウェル組織培養処理マイクロプレートを冷暗所から取り出し、室温で15分間静置して温度を順化させます。その間に、標準チューブディスペンシングカセットに70%エタノールと滅菌PBSを充填し、細胞播種用のコンビ試薬ディスペンサーを準備します。次に、ディスペンサーの手動設定ボタンを使用して、分注量を必要なµLに、分注速度を「中」に調整します。組換え細胞解離酵素を用いて、組織培養フラスコから接着性のヒト大腸癌HCT116細胞を回収します。滅菌ビーカー内で、完全増殖培地50 µLあたり、1ウェルあたり2.5 × 10⁴ cells/mLの密度となるように細胞懸濁液ストックを調製します。384ウェルプレートを複数播種する場合は、細胞がビーカーの底に沈殿するのを防ぐため、マグネチックスターラーを使用してください。ディスペンサーを用いて、384ウェルプレートの各ウェルに2500個の細胞を分注します。プレートを室温で30分間静置してください。その間に、蒸発抑制用環境マイクロプレート蓋を用意し、5 mLピペットを用いて、5% ジメチルスルホキシドを左側の溝に4 mL分注し、ゆっくりと上下に掃引するように加えます。右側の溝でも同様の操作を繰り返します。側面の溝に加えた液体が蓋の中央で混ざり合わないようにし、ガス交換のための隙間を確保してください。液量を多く加えすぎると、蓋の外側に漏れ出し、その後384組織培養プレートの外側のウェルに混入します。30分経過後、顕微鏡で細胞を確認してください。プレートを30分間静置することで、細胞がウェル底面に完全に沈降し、互いに接近します。これは、1ウェルあたり1つのスフェロイドを形成させるために重要です。播種したプレートを4 Gで15分間遠心分離します。遠心後、384ウェル組織培養プレートのリキッドリザーバーに滅菌水を満たし、通常のプレート蓋を液体充填済み環境蓋に交換します。プレートを、湿度95％、CO2 5％、酸素 20％に設定した37 °Cの回転インキュベーターに入れ、細胞が多細胞腫瘍スフェロイド（MCTS）に凝集するまで4日間培養します。その後数日間は、湿度レベルが急激に低下しないよう、インキュベーターのドアを長時間開けないようにしてください。NCTS形成後の4日目に、自動マイクロプレートウォッシャーディスペンサーを使用して、各ウェルに予熱した培地を30 µL添加します。MCTSsをインキュベーターに戻し、実験に最適な大きさに達するまでMCTSsを成長させます。3日ごとに培地を交換する際は、ウォッシャーマニホールドのZ方向の高さを経験的に調整し、分注速度およびウォッシャーマニホールドがウェルに下降する速度を最低速に設定して、ウェル内の乱流を最小限に抑えます。ウェルあたり30 µLの培地を吸引し、あらかじめ温めておいた新しい培地30 µLと交換します。その後、細胞をインキュベーターに戻します。開口数16の4倍エア objectives を使用したハイコンテンツ自動イメージングシステムで、MCTSを撮影します。イメージングソフトを使用して、露光時間を11 millisecondsに、ビニングを4×4に設定します。各ウェルのMCTS全体を撮影できるよう、実験に応じてz-stackの数と間隔、およびピクセルビニングを任意に調整してください。2D画像を段階的に処理し、MCTSの面積、長軸および短軸、周囲長、およびsolidityを測定します。具体的な手順については、付属のm-codeおよびテキスト形式のリードミーファイルを参照してください。本ルーチンの適用可能性を検討するため、生後7日目のMCTSに、抗がん剤であるパクリタキセル（PTX）、ビンクリスチン（VCR）、オキサリプラチン（OXA）、ドキソルビシン（DOX）、および5-フルオロウラシル（5-FU）を3つの異なる濃度で4日間投与しました。MCTSの画像をここに示します。これらの画像を用いて、薬物処理したMCTSの面積、長軸および短軸、周囲長、ならびに solidity を、対照群（CTLs）と比較して解析しました。幾何学的体積の算出には、長軸および短軸を用いました。薬物処理後、MCTSの面積および体積に濃度依存的な減少が認められました。0.01 µg/mLのVincrystine、0.4 µg/mLのDoxyrubicin、および5-FluorouracilではMCTSの面積が増加しましたが、体積が有意に増加したのは0.001 µg/mLのVincrystine処理後のみでした。MCTSの周囲長に有意な差が見られたのは、MCTSのサイズに完全に影響を及ぼしたPacklitaxel、Doxyrubicin、および5-Fluorouracilの最高濃度においてのみでした。0.25 µg/mLのPacklitaxel、0.06 µg/mLのVincrystine、および100 µg/mLのDoxyrubicinと5-Fluorouracilによる処理は、solidityの有意な低下をもたらし、これはMCTSsの完全または部分的な崩壊を示しています。以上の結果から、本手法が潜在的な抗がん剤の研究において有用であることが示されました。習得後、適切に実施すれば、この手技は2時間で完了させることができます。本手順を試みる際は、すべての細胞株が特定の3D培養法に適しているわけではなく、細胞株によって形成されるスフェロイドの形状、サイズ、組織学的な特徴、および増殖速度に差異が生じることに注意することが重要です。私たちが開発した刺激ルーチンでは、特に、断面積を測定するための境界が明確に定義されていない、薬剤処理により部分的に崩壊したスフェロイドにおいて、スフェロイドサイズの効果的な評価が可能です。このビデオを視聴することで、ここで提示する改変には追加の機器や消耗品を必要とせず、節足動物スクリーニングラボで日常的に導入できることを十分に理解していただけるはずです。

evaporation-reducing-culture-condition-increases-reproducibility

Research

JoVE Journal

Cancer Research

がん研究

我々は、市販のマイクロウェルプレートを使用して、均一なサイズや組成制御の腫瘍スフェロイドの大量（数十万、何千）の生成のためのプロトコルを紹介する。...

マイクロウェルプレートを用いてサイズ制御の腫瘍球、多数の生産

ここでは、細胞凝集を通じて3D細胞スフェロイドを形成するための迅速で柔軟なプロトコルについて説明します。これは、複数の細胞タイプに容易に適応でき、細胞遊走、浸潤、アノイキスアッセイなどのさまざまなアプリケーションでの使用や、細胞-マトリックス相互作用のイメージングと定量化に適しています。...

3Dスフェロイド生産のための効率的で柔軟な細胞凝集法

細菌の成長の定量的評価はシステム...

細菌の増殖の高精度、高スループットの分析

ここでは、生体内腫瘍の物理化学勾配を2D培養よりもはるかに優れた3D癌細胞スフェロイドで生存率と死亡を評価するためのいくつかの簡単な方法を紹介する。したがって、スフェロイドモデルは、生体内条件への翻訳を改善した癌薬効の評価を可能にする。...

癌細胞の3Dスフェロイド培養における細胞生存率と死の評価

ここでは、化学的エピジェネティック消去と機械化関連の手がかりを組み合わせて、遺伝子トランスフェクションやレトロウイルスベクターを必要とせずに哺乳類の多能性細胞を効率的に生成する方法を紹介します。したがって、この戦略はトランスレーショナル医療にとって有望であり、幹細胞オルガノイド技術の顕著な進歩を表しています。...

エピジェネティック修飾と生体力学的手がかりを組み合わせて哺乳類多能性細胞を生成する2段階戦略

ここでは、3D懸濁液培養における表皮スフェロイドの系統的培養のためのプロトコルについて説明する。このプロトコルは、様々な上皮組織タイプで使用し、いくつかのヒト疾患および状態のモデリングのための幅広い用途を有する。...

ケラチノサイト幹細胞の可塑性をモデル化する高スループット表皮球面培養システムの確立

これらのプロトコルは、タツノオトシゴの細胞外フラックス分析を使用して、3Dがん細胞株由来スフェロイドにおけるミトコンドリアエネルギー代謝を調べるのに役立ちます。...

細胞外フラックス解析を用いた単一3D微細組織スフェロイドのミトコンドリアエネルギー代謝の探索

本プロトコルは、3Dプリントされたスタンプ様デバイスを使用して、大規模かつ費用対効果の高い方法で組織スフェロイドを作製する技術を記載している。...

3Dプリントされたスタンプ状デバイス による 組織スフェロイドの生成

本プロトコルは、初代がん細胞から3D腫瘍培養モデルを生成し、細胞生存率アッセイおよび顕微鏡検査を使用して薬物に対するそれらの感受性を評価することを記載しています。...

患者由来の腫瘍サンプルから3次元スフェロイドを樹立し、薬物に対する感受性を評価

再現性の高いスフェロイドを増殖させるためのプロトコルと、画像キャプチャとプロテオミクスを用いた表現型特性評価について紹介します。...

機能的3Dスフェロイド細胞培養の半自動表現型解析(英語)

ここでは、フォローアップのマルチパラメーター生細胞顕微鏡検査を実施するためのさまざまな多細胞スフェロイド形成方法について説明します。蛍光寿命イメージング顕微鏡(FLIM)、細胞自家蛍光、染色色素、およびナノ粒子を使用して、生きた三次元(3D)がんおよび幹細胞由来スフェロイドにおける細胞代謝、低酸素症、および細胞死の解析のためのアプローチを実証します。...

多細胞スフェロイドの作製およびマルチパラメーター生細胞蛍光寿命イメージング顕微鏡(FLIM)

学ぶ液体オーバーレイ法を用いた384ウェルプレートでの均一な多細胞スフェロイド形成技術。培地蒸発低減により再現性を向上させ、がんスクリーニングや創薬研究への応用が可能となる。

蒸発低減文化条件は、マイクロタイタープレートに多細胞スフェロイド形成の再現性を高め

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