Name: 사용자 정의 MicroRNA의 Microarray 실험을 수행 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-10-28T12:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 4 s
Description: 배우세요 사용자 정의 microRNA 마이크로어레이 실험 방법을 통해 RNA 분리, 형광 염료 라벨링, 하이브리드화 및 신호 분석을 수행하는 전체 과정을 익히세요. 이 기술은 유전자 발현 연구에 필수적입니다.

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작품은 약물 남용 센터 국립 연구소 (P50 DA 011806)와 국방의 미국 육군과 (W81XWH - 07 - 1-0183)에 의해 부분적으로 지원되었다.

1. 사용자 정의 miRNA의 microarrays의 인쇄 <ol><li> microarray는 대학이나 회사에서 microarray 핵심 시설 서비스를 이용 슬라이드 인쇄합니다. microarray 제조의 품질은 microarray 실험의 성공을 위해 가장 중요한 요소 중 하나입니다. 가능하면 몇 가지 서비스를보십시오. 이상적으로, 하나는 한 번에 50-100 슬라이드를 인쇄 것이며, 모든 슬라이드가 잘 구분하여, 각각의 장소와 동일 보입니다. </li><li> microarray 지원, 우리는 격차 II 코팅 슬라이드를 사용합니다. </li><li> miRNA 프로브 위해, 우리는 NCode 멀티 종 (species)이 Microarray 프로브가 V2 세트 miRNA 사용합니다. </li><li> 10 μm의 3 X SSC에있는 모든 oligonucleotides를 해산하고 quadruply 슬라이드 그들을 인쇄할 수 있습니다. GAAPS II 슬라이드에 대한 지침에 따라 자외선 조사에 의해 슬라이드를 수정. 인쇄 프로브와 함께 지역과 측면을 표시하는 다이아몬드 펜으로 슬라이드 레이블. 22 스토어 ° C. </li></ol> 2. 샘플 준비 <ol><li> 모든 방법또는 시약이 한 그것이 작은 RNAs를 유지로 RNA를 분리하는 데 사용할 수 있습니다. 우리는 일반적으로 260nm와 280nm 판독하여 측정 RNA의 준비 만족 수량 및 품질과 함께, 총 RNA를 추출하기 위해 Trizol (Invitrogen)을 사용합니다. </li><li> RNA 라벨, 1 X 버퍼 (50 MM의 HEPES, pH를 7.8, 20 MM MgCl 2, 10 μg / ML BSA, 10 % 5' - pCU - DY547 - 3 '6 0.5 μg과 함께 총 RNA의 믹스 ~ 25 μg을 위해 DMSO) 포함 ~ 20 대 T4 RNA ~ 10 밀리미터 DTT와 ATP에 대한 10 X T4 RNA Ligase 한 버퍼의 ~ 0.02-0.03 최종 볼륨 보충 Ligase 1. </li><li> 2-24시간의 냉장고 안에 얼음 진행 라벨 수 있습니다. 0.3 M의 아세트산 나트륨과 에탄올 3 권와 RNA를 침전. 효율적인 결합과 강수량 들어, 이상이 MG / ML에서 총 RNA를 해산하고, ~ 20 μl의 총 내고 볼륨을 유지. <ol><li> 적은 RNA를 사용할 경우, 입력 RNA 및 5'가 - pCU - DY547 - 3 '는 크기를 줄일 수 있습니다의 금액입니다. &lt;/ 리&gt; </li><li> RNA가 매우 묽은 경우, 강수량을 도울 효모 tRNA 등 통신 사업자를 추가합니다. </li></ol></li><li> Ulysis 알렉사 형석 하이브 리다이 제이션 프로세스 제어로 647 핵산 라벨링 키트 6을 사용 포유 동물 miRNAs의 하위 집합에 해당 참조의 DNA oligonucleotides 총 1 μg의 결합 및 레이블. CentriSep 칼럼을 사용하여 표시된 DNA를 정화하고 -20 ° C.에 어두운에 저장 </li></ol> 3. Microarray의 하이브 리다이 제이션 <ol><li> 처음으로 슬라이드를 사용하려면, 37 3 X SSC, 0.1 % SDS, 30-60 분 0.2 % BSA의 필터링 솔루션에 슬라이드를 미리 잡종 ° C. 잠수함 물이 몇 번에서 다음 이소프로판올에. 22 5 분 100g에서 슬라이드 어댑터 ° C.있는 원심 분리기를 사용하여 슬라이드를 건조 </li></ol> 참고 : 우리는 microarray의 하이브 리다이 제이션을 수행하기 위해 코닝 microarray의 하이브 리다이 제이션 챔버와 Lifterslips의 에리 과학의 mSeries을 사용합니다. <ol start="2"><li> 리 씻어공기 건조하기 전에 물에 fterslips 다음 에탄올로. microarray의 하이브 리다이 제이션 챔버 기지 내부에 슬라이드와 슬라이드의 위에 lifterslip 놓으십시오. lifterslip은 슬라이드 연락은 흰색 스트립과 탐사 영역을 커버합니다. </li><li> 어둠 속에서, 레이블 RNA를 시켰던을 돌린다. 70 % 에탄올로 한 번 씻고, 그리고 공기는 펠렛을 건조. 펠렛은 붉은해야합니다. </li><li> 400 MM 나 2 HPO 4 산도 7.0, 0.8 % BSA 5 % SDS, 정화의 1/15-1/100 μl와 12 % 포름 아미드 6, RNA 샘플마다 라벨 참조 DNA (2.4)이있는 하이브 리다이 제이션 솔루션을 준비합니다. 추가 참조 DNA의 양은 다른 oligonucleotides는 (2.4) 얼마나 많은 레이블 아르에 따라 달라집니다. 100 개 이상있다면 덜 희석이 필요합니다. </li><li> 하이브 리다이 제이션 솔루션 ~ 60 μl로 잘 RNA 펠렛를 해산. </li><li> 코닝 microarray의 하이브 리다이 제이션 챔버 자료의 가습 우물의 물을 각각 20 μl를 추가합니다. </li><li> t 추가슬라이드에 표시 RNA 및 참고 DNA의 그 혼합물. 얇은 pipet 팁을 사용하여 부드럽게 lifterslip의 가장자리를 터치하고, 솔루션은 흡입을 통해 lifterslip 및 슬라이드 사이의 공간을 입력할 수 있습니다. </li><li> 하이브 리다이 제이션 챔버가베이스 커버를 통해 장소, 그때 금속 클립과 챔버를 봉인. </li><li> 코닝에서 챔버 카세트와 함께 제공되는 비닐 봉투 안에 전체 챔버 놔. </li><li> 침수 종이 타월로 용기 내부 챔버 카세트 (들)을 장소, 플라스틱 포장과 용기를 커버하고 37 안에 자리 ° ~ 24 시간 동안 C 습기, 휴대 문화 인큐베이터. 이러한주의 사항 (3.6, 3.9, 3.10)은 하이브 리다이 제이션 솔루션이 부화하는 동안 밖으로 건조하지 않도록. </li></ol> 4. 포스트 하이브 리다이 제이션 처리 <ol><li> 챔버 카세트를 하나씩 분해. 22 2 X SSC에 잠수함 슬라이드와 lifterslip ° C. lifterslip 자연 슬라이드 떨어질 것입니다. 0.8 X SSC에 놓으십시오. 빨래두 번, 그리고 0.8 X SSC에있는 슬라이드 0.4 X SSC, 총 1-2 분 안에 세 번. 슬라이드 어댑터와 원심 분리기를 사용하여 슬라이드를 건조시킵니다. 물로 lifterslips을 씻고 나중에 다시 사용하기 위해 저장할 수 있습니다. </li><li> 모든 적합한 스캐너, 예를 들어, Perkin 엘머 ScanArray 5000 또는 분자 장치 축삭 GenePix 4000B microarray 스캐너와 슬라이드를 검사합니다. 해당 이미지 파일을 얻기 위해 파장 547 nm의 가까이에와 647 nm의에서 스캔. </li><li> 입력, 4.2에서 이미지 파일)에서 픽셀 농도를 정할 같은 BlueFuse 같은 프로그램을 사용합니다. 추가 고려 대상에서 microarrays에 대한 비정상적인 명소를 제외하는 프로그램을 각각의 장소를 검사합니다. 이러한 비정상적인 명소는 일반적으로 가난한 슬라이드 인쇄하거나 슬라이드 하이브 리다이 제이션 후 처리에서 발생. </li><li> 데이터 분석 및 프레 젠 테이션 등 GeneSpring 및 Excel과 같은 프로그램을 사용합니다. microarray 데이터 정상화를위한 일반적인 고려 사항은이 문서의 범위를 넘어있는, 적용됩니다. </li><li> 일단 만족스러운 신호는 AF를 얻을 수 있습니다ter 4.3), 재사용 7 microarray 슬라이드를 스트립. 10~20분를위한 62의 얼룩 접시에 미리 예열, 1 ㎜ NaOH 및 0.1 X SSC ° C에서 다음 젖어, 물속에 슬라이드를 씻어. 일단 부화를 반복합니다. 22까지 부드럽게 흔들어 60 분 동안 물에 몇 번 슬라이드 ° C. 씻으십시오 원심 분리기를 사용하여 슬라이드, 22에서 저장 ° C. 건조 </li><li> 재생 슬라이드를 사용하려면, 다시 그들을 미리 잡종 필요가 없습니다. 간단히 이소프로판올 다음 물 속에 그들을 씻고, 바로 하이브 리다이 제이션 전에 슬라이드를 건조. </li></ol> 5. 대표 결과 : 우리는 대부분 샘플 수천 글로벌 miRNA 발현을 프로필에 설명된 절차를 따라했습니다 즉, 여러 조건 하에서 인간의 표본으로 zebrafish에서 격리 RNAs가. 그림 1은 매우 정확하고 강력한 하이브 리다이 제이션 신호를 증명하기 위해 microarray의 스캔 이미지를 보여줍니다 슬라이드. 피어슨 correlati기술 사이의 계수에 대한 microarray의 하이브 리다이 제이션의 복제 우수한 재현성을 나타내는 ~ 0.99 7, 수 있습니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/3250/3250fig1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 1"> 하이브 리다이 제이션 후 스캔 miRNA의 microarray 슬라이드 1 복합 이미지를 그림. 노란색 반점이 동일한 프로브에 DNA와 RNA 모두에 의해 hybridizations에서 동안 레드 명소 참조 DNA, DY547 - 라벨 RNA 샘플에서 녹색 관광 명소로 hybridizations에서 결과.

<ol><li>Ambros, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+functions+of+animal+microRNAs%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">The functions of animal microRNAs.</a> Nature. 431, 350-355 (2004).</li>
<li>Friedman, R. C., Farh, K. K., Burge, C. B., Bartel, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Most+mammalian+mRNAs+are+conserved+targets+of+microRNAs%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Res%22%5BJournal%5D)">Most mammalian mRNAs are conserved targets of microRNAs.</a> Genome Res. 19, 92-105 (2009).</li>
<li>Chekulaeva, M., Filipowicz, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+miRNA-mediated+post-transcriptional+regulation+in+animal+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of miRNA-mediated post-transcriptional regulation in animal cells.</a> Curr. Opin. Cell Biol. 21, 452-460 (2009).</li>
<li>Farazi, T. A., Spitzer, J. I., Morozov, P., Tuschl, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((miRNAs+in+human+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pathol%22%5BJournal%5D)">miRNAs in human cancer.</a> J. Pathol. 223, 102-115 (2011).</li>
<li>Small, E. M., Olson, E. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pervasive+roles+of+microRNAs+in+cardiovascular+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Pervasive roles of microRNAs in cardiovascular biology.</a> Nature. 469, 336-342 (2011).</li>
<li>Thomson, J. M., Parker, J., Perou, C. M., Hammond, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+custom+microarray+platform+for+analysis+of+microRNA+gene+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">A custom microarray platform for analysis of microRNA gene expression.</a> Nat. Methods. 1, 47-53 (2004).</li>
<li>Zhang, X., Xu, W., Tan, J., Zeng, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stripping+custom+microRNA+microarrays+and+the+lessons+learned+about+probe%3Aslide+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Biochem%22%5BJournal%5D)">Stripping custom microRNA microarrays and the lessons learned about probe:slide interactions.</a> Anal. Biochem. 386, 222-227 (2009).</li>
<li>Griffiths-Jones, S., Saini, H. K., van Dongen, S., Enright, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((miRBase%3A+tools+for+microRNA+genomics%5BTitle%5D)+AND+%22Nucl.+Acids.+Res%22%5BJournal%5D)">miRBase: tools for microRNA genomics.</a> Nucl. Acids. Res. 36, D154-D158 (2008).</li>
<li>Landgraf, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+mammalian+microRNA+expression+atlas+based+on+small+RNA+library+sequencing%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">A mammalian microRNA expression atlas based on small RNA library sequencing.</a> Cell. 129, 1401-1414 (2007).</li>
<li>Chiang, H. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mammalian+microRNAs%3A+experimental+evaluation+of+novel+and+previously+annotated+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Genes.+Dev%22%5BJournal%5D)">Mammalian microRNAs: experimental evaluation of novel and previously annotated genes.</a> Genes. Dev. 24, 992-1009 (2010).</li>
</ol>

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

깊은 시퀀싱 기술의 최근 발전에도 불구하고, microarray는 DNA와 RNA의 높은 처리량 분석을위한 가능한 선택 남아있다. 깊은 시퀀싱에 비해 microarray 실험은 저렴하고 있으며, 전형적인 분자 생물학 연구소의 실험과 유연성을 허용하고 시간을 절약할 수 데이터 분석 사내의 대부분을 수행할 수 있습니다. 앞으로, microarrays 가능성이 적합 집중적으로 유전자, 예를 들어 세트를 심문하러 있으며, 전부 또는 게놈 또는 miRNAs의 전사 요소의 일부와 같은 원칙과 여기에 제시 절차는 공부를 지정 microarray 실험에서 사용할 수 있습니다 miRNAs 이외에도 유전자 가족. 물론, microarrays에 대한 주요 단점은 시퀀스 정보는 사전을 사용할 수 있어야합니다 수 있습니다. 얼마나 많은 miRNA 유전자가 불분명하다 있지만 이것은 모델 생물에서 대부분의 단백질 유전자 가족 문제가되지 않습니다. 우리가 사용하고있는 프로브 세트 miRBase 8을 기반으로 설계되었습니...

<table border="1"><tbody><tr><th> 항목 </th><th> 공급 업체 </th><th> 카탈로그 번호 </th><th> 댓글 </th></tr><tr><td> NCode 멀티 종 Microarray 프로브 세트 V2를 miRNA </td><td> Invitrogen </td><td> MIRMPS201 </td><td> miRBase 릴리스 9.0 (2006 년 10 월)에 따라 설계되었습니다. 그것은 1140 ~ 수정되지 않은, 웜, 비행, zebrafish, 마우스, 쥐, 인간 miRNAs을 위해 프로브로 34-44 NT 긴 oligonucleotides, 그리고 snoRNAs 등 내부 통제 프로브의 숫자가 포함되어 있습니다. miRNA 프로브는 따라서 성숙 miRNAs ~ 44 NT의 크기 보완 시퀀스 doublets 있습니다. 분석을 위해 하나가 관심의 특정 게놈 (S)에서 miRNAs에 초점을 맞출 수 있습니다. </td></tr><tr><td> Trizol </td><td> Invitrogen </td><td> 15596018 </td><td> 총 RNA 샘플 빠르고 준비하고 수치 쉽고 같은 mRNA 분석과 같은 다운 스트림 애플 리케이션에 적합하지만 우리는 또한 사용, 라벨에 대한 작은 RNA 분획을 농축 있습니다. </td></tr><tr><td> T4 RNA Ligase 일 </td><td> 뉴 잉글랜드 Biol복근 </td><td> M0204L </td><td></td></tr><tr><td> Ulysis 알렉사 형석 647 핵산 라벨링 키트 </td><td> Invitrogen </td><td> U21660 </td><td> 이 키트 또는 유사한 제품뿐만 아니라 실험적인 RNA 샘플 또는 컨트롤 RNA를 (대신 제어 DNA의) 라벨을 사용하실 수 있습니다. </td></tr><tr><td> 5&#39; - pCU - DY547 - 3 &#39; </td><td> Dharmacon </td><td> 사용자가 만든 </td><td> 작은 RNA 분획은 비슷하게 내고으로 분류하실 수 있습니다. </td></tr><tr><td> CentriSep 열 </td><td> 프린스턴 분판 </td><td> CS - 901 </td><td></td></tr><tr><td> GAPSII 코팅 슬라이드 </td><td> 코닝 </td><td> 40,004 </td><td> 슬라이드의 다른 유형도 사용할 수 있습니다. </td></tr><tr><td> Microarray의 하이브 리다이 제이션 챔버 </td><td> 코닝 </td><td> 2551 또는 40080 </td><td> 하이브 리다이 제이션 실 및 coverslips 다른 종류도 작동합니다. 상용 하이브 리다이 제이션 기계를 사용하면 ~ 2 시간, 크게 예 하이브 리다이 제이션 시간을 줄일 수 있습니다. </td></tr><tr><td> Lifterslips </td><td> 일ermo / 에리 과학 </td><td> 25X60I - M5439 - 001 - LS </td><td></td></tr><tr><td> BlueFuse </td><td> BlueGenome </td><td></td><td></td></tr><tr><td> GeneSpring </td><td> 애질런트 </td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

사용자 정의 microrna의 microarray 실험을 수행

Performing Custom MicroRNA Microarray Experiments

microRNAs는 (miRNAs) 널리 eukaryotes 1 표현됩니다 ~ 22 세포핵 (NT) 긴 RNA 분자의 큰 가족입니다. 복잡한 genomes는 주로 사후 transcriptionally 대상 유전자 2, 3의 방대한 숫자의 표현을 억제 miRNAs 중 적어도 수백, 인코딩. miRNAs는 생물 학적 과정 1 광범위한 제어합니다. 또한, 변경 miRNA 발현이 같은 암 등 인간의 질병와 관련된되었으며, miRNAs는 질병 및 예후 (豫后) 4, 5에 대한 생체 역할을 수 있습니다. 그것은 표현과 여러 가지 조건에서 miRNAs의 기능을 이해하기 위해, 따라서, 중요합니다. 실시간 PCR, microarray, 깊이 시퀀싱 : 세 가지 주요 방법은 프로필 miRNA 발현에 고용되었습니다. miRNA의 microarray의 기술은 일반적으로 저렴 높은 처리량되는 장점을 가지고 있으며, 실험 및 분석 단계의 대부분은 카 수 있습니다대부분의 대학, 의과 대학 및 관련 병원에서 분자 생물학 연구실에서 지휘를 맡는​​. 여기, 우리는 사용자 정의 miRNA의 microarray 실험을 수행하는 방법을 설명합니다. miRNA 프로브 세트는 miRNA의 microarrays를 만들어 유리 슬라이드에 인쇄됩니다. RNA는 작은 RNA 수종을 보존하는 방법이나 시약을 사용하여 절연하고 형광 염료와 함께 표시됩니다. 컨트롤로서, miRNAs의 하위 집합에 해당 참조의 DNA oligonucleotides는 다른 형광 염료로 분류됩니다. 참조 DNA는 슬라이드와 하이브 리다이 제이션의 품질을 증명하기 위해 제공되며, 또한 데이터 정규화에 사용됩니다. RNA와 DNA가 혼합하여 데이터베이스에있는 miRNAs 대부분의 프로브를 포함하는 microarray 슬라이드에 hybridized입니다. 세탁 후, 슬라이드 이미지를 얻기 위해 스캔하고, 개별 명소의 농도는 계량입니다. 이러한 원시 신호는 추가로 처리하고 해당 miRNAs의 표현 데이터로 분석됩니다. Microarray 슬라이드는 옷을 벗긴 채 microarrays의 비용을 절감하고 microarray 실험의 일관성을 향상시키기 위해 생성하실 수 있습니다. 동일한 원칙과 절차를 정의 microarray 실험의 다른 유형에 적용됩니다.

사용자 정의 microRNA의 microarray 실험을 수행 간단한 절차 설명합니다. 단계, RNA, RNA 라벨링 및 참조 DNA를 분리 microarrays에 샘플을 hybridizing, microarrays를 검색, quantifying 및 하이브리드화 신호를 분석 등이 있습니다.

사용자 정의 MicroRNA의 Microarray 실험을 수행

마이크로RNA(miRNA)는 진핵생물에서 널리 발현되는 약 22 뉴클레오티드(nt) 길이의 RNA 분자들로 구성된 거대 가족군입니다 1. 복잡한 게놈은 ...

이 절차의 전반적인 목표는 마이크로 RNA 마이크로어레이 실험을 수행하는 것입니다. 이는 먼저 마이크로 RNA 프로브 라이브러리가 포함된 프린트된 마이크로어레이 슬라이드를 확보하고, 적절한 품질과 양의 RNA 샘플을 준비함으로써 이루어집니다. 그 다음, RNA와 대조군 DNA 샘플을 형광 염료로 표지합니다.그 다음, 표지된 핵산을 하이브리드화를 위해 마이크로어레이 슬라이드에 첨가합니다. 마지막으로, 마이크로어레이 슬라이드를 세척 및 스캔하고 슬라이드를 재생합니다. 결과적으로, 개별 microRNA 프로브의 하이브리드화 강도에 대한 슬라이드 분석을 통해 microRNA의 전장 게놈 발현을 나타내는 결과를 얻을 수 있습니다.이 방법은 정상적인 생리학적 조건 또는 병리학적 조건이 전역적 규모에서 마이크로어레이 발현에 어떻게 차별적인 영향을 미치는지와 같이 유전자 발현 분야의 핵심적인 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 마이크로어레이 제작의 품질은 마이크로어레이 실험의 성공을 결정짓는 가장 중요한 요소 중 하나입니다. 소형 RNA를 보존하는 방법으로 RNA를 분리하고 2 mg/mL 이상의 농도로 재현탁한 후, 약 25 µg의 총 RNA를 T4 RNA Ligase 1, DTT 및 ATP가 보충된 1X HEPs 버퍼 내의 0.5 µg 5' P-C-U-D-Y 5 4 7 3'와 먼저 혼합하여 20 µL 반응 부피에서 RNA를 표지합니다. 사용 가능한 RNA 양이 더 적은 경우, RNA 양과 반응 규모를 줄이십시오.RNA가 매우 희석된 경우, 침전물을 돕기 위해 yeast tRNA와 같은 캐리어를 추가하고, 냉장고 내 얼음 위에서 2~24시간 동안 반응물을 배양하십시오. 다음으로, sodium acetate를 0.3 molar가 되도록 첨가한 후, ethanol을 3배 부피로 넣고 -20 °C에서 하룻밤 동안 RNA를 침전시킵니다. 슬라이드를 처음 사용하는 경우, 3 XSSC, 0.1% SDS, 0.2% BSA가 포함된 여과 용액에서 37 °C로 30~60분 동안 사전 하이브리드화하십시오.다음으로, 슬라이드를 물에 몇 차례 담갔다 뺍니다. 그 후 이소프로판올에 담갔다가, 슬라이드 어댑터가 장착된 원심분리기를 사용하여 22 °C에서 100 ×g로 5분 동안 슬라이드를 건조합니다. 리프터 스트립을 물로 헹굽니다.그 후 공기 중에서 건조하기 전 에탄올 상태에서, 마이크로어레이 하이브리드화 챔버 베이스 내부에 슬라이드를 놓고 슬라이드 위에 리프터 슬립을 올려 리프터 슬립이 프로브 영역과 흰색 스트립을 덮도록 합니다. 어두운 곳에서 슬라이드를 접촉시키고, 침전된 표지 RNA를 원심 분리하여 가라앉힌 후 70% ethanol로 한 번 세척하고 펠릿을 공기 중에서 건조합니다. 펠릿은 붉은색을 띠어야 합니다.RNA 샘플당 정제된 표지 참조 DNA를 부피 대비 1/15에서 1/100 비율로 사용하여 하이브리드화 용액을 준비합니다. 하이브리드화 용액이 마르지 않도록 약 60 microliters의 하이브리드화 용액으로 RNA 펠릿을 완전히 용해합니다. 배양하는 동안 마이크로어레이 하이브리드화 챔버 베이스의 각 가습웰에 20 microliters의 물을 추가합니다.표지된 RNA와 참조 DNA 혼합물을 슬라이드에 추가합니다. 얇은 피펫 팁을 사용하여 리프터 슬립의 가장자리를 가볍게 터치하고 흡입합니다. 용액이 리프터 슬립과 슬라이드 사이의 공간으로 들어가게 합니다.하이브리드화 챔버 커버를 베이스 위에 덮습니다. 그다음 금속 클립으로 챔버를 밀봉합니다. 챔버 카세트와 함께 제공된 플라스틱 백 안에 챔버 전체를 넣습니다.마지막으로, 챔버 카세트를 젖은 페이퍼 타월이 들어 있는 용기에 넣습니다. 그런 다음 용기를 플라스틱 랩으로 덮고 37 °C의 습윤 세포 배양 인큐베이터에 약 24시간 동안 보관합니다. 하이브리드화 후 슬라이드를 처리하려면, 챔버 카세트를 하나씩 분해하여 슬라이드와 리프터 슬립을 22 °C의 2X SSC에 담급니다.리프터 슬립은 슬라이드에서 자연스럽게 떨어집니다. 슬라이드를 0.8 XSSC로 2회, 이어서 0.4 XSSC로 3회, 총 1~2분 동안 세척하십시오. 슬라이드 어댑터가 장착된 원심분리기를 사용하여 슬라이드를 건조합니다. 다음으로, 마이크로어레이 스캐너로 슬라이드를 스캔하고 BlueFuse와 같은 프로그램을 사용하여 이미지 파일의 강도를 정량화하십시오.개별 스팟을 검사하여 하이브리드화 이후 포어 슬라이드 프린팅이나 슬라이드 취급 과정에서 주로 발생하는 비정상적인 스팟을 제외하십시오. 데이터 분석 및 제시를 위해 gene springing 및 excel과 같은 프로그램을 사용하여 마이크로어레이를 재사용하십시오. 슬라이드를 물로 헹군 다음, 62 °C로 예열된 1 mM NaOH 및 0.1 X SSC 염색 접시에 10~20분 동안 담가 슬라이드를 스트립하십시오.인큐베이션을 두 번째로 반복합니다. 22 °C에서 부드럽게 흔들어주며 최대 60분 동안 물로 슬라이드를 여러 번 세척합니다. 원심분리기를 사용하여 슬라이드를 건조시킨 후 22 °C에서 보관합니다.슬라이드는 사전 하이브리드화 없이 사용할 수 있습니다. 이 그림은 매우 정밀하고 강한 하이브리드화 신호를 보여주는 마이크로어레이의 스캔 이미지입니다. 빨간색 점은 참조 DNA의 하이브리드화 결과이며, 초록색 점은 DY 5 47로 표지된 RNA 샘플의 결과이고, 노란색 점은 DNA와 RNA 모두 동일한 프로브에 하이브리드화되어 나타난 결과입니다.마이크로어레이 하이브리다이제이션 기술적 반복 시료 간의 피어슨 상관계수는 약 0.99로, 이는 매우 우수한 재현성을 나타냅니다. 이 영상을 시청한 후에는 micronase뿐만 아니라 mRNA와 같은 다른 유형의 핵산을 정량화하기 위한 맞춤형 마이크로어레이 실험 수행 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

우리는 사전 microRNA의 설정 및 분석 서비스를 선보일 예정 써모 과학 매트릭스 멀티채널 피펫과 수작업으로뿐만 아니라 로봇을 사용하여 QPCR위한 96 잘 배열.

정량 실시간 PCR (qPCR) 배열을 사용하여 사전 마이크로 RNAS과 microRNAs의 프로 파일링

여기 샘플 제한된 양의 작업 특히, microRNA (miRNA) 표현 수준에 대해 비용과 시간 효율 높은 처리량 검사 도구로 microfluidic 플랫폼와 함께 최적화된 멀티 플렉스 반전 transcriptase 정량 PCR (qRT - PCR) 프로토콜을 설명합니다.

높은 처리량 MicroRNA의 프로파일 : 최적 멀티 플렉스 플루 동적 ArrayTM의 IFCs에 Nanoliter의 규모 qRT - PCR

이 비디오는 특정 유전자 발현을 측정하기 위해 항체 마이크로어레이를 사용하여 miRNA 형질 주입된 폐암 세포의 단백질 발현을 연구하는 기술을 설명합니다. 특색지어진 프로토콜에서는 세포 주기 및 혈관 신생을 중단하는 데 있어 조합 miRNA 치료의 활성 식별을 위해 항체 마이크로어레이를 수행합니다.

항체 마이크로어레이: miRNA 처리된 폐암 세포의 단백질 발현을 연구하는 기술

exosomes에서 안정 마이크로 RNA (miRNA에)의 존재는 생체로 및 치료 개입에 대한 경로로 자신의 잠재력 유틸리티, 간 커뮤니케이션의 새로운 형태로 엄청난 관심을 생성했습니다. 여기에 우리가 전송되는 miRNA에를 식별하는 정량 PCR에 의해 다음 혈액과 문화 미디어에서 exosome 정화를 보여줍니다.

혈액과 문화 매체에서 파생 Exosomes의 정화 및 마이크로 RNA 프로파일

에스트로겐과 마이크로 RNA 모두를 통해 신호 분자는 유방암의 발전과 성장에 중요하다. 에스트로겐은 전사 인자이다 에스트로겐 수용체를 활성화합니다. 많은 전사 인자는 마이크로 RNA의 발현을 조절할 수 있으며, 에스트로겐 조절 마이크로 RNA는 다른 대규모 기법을 사용하여 프로파일 링 할 수있다.

유방암 세포에서 에스트로겐 조절 마이크로 RNA의 프로파일

순환 마이크로 RNA는 최근 각종 암 및 기타 질환에 대한 유망한 새로운 바이오 마커로 등장했다. 이 문서의 목적은 세 가지 다른 프로브 기반의 실시간 PCR 플랫폼 및 정량화 및 마이크로 RNA 순환의 풍요 로움을 결정하는 데 사용할 수있는 방법을 논의하는 것입니다.

프로브 기반의 실시간 PCR은 마이크로 RNA의 정량 측정을위한 접근 방법

여기, 우리 조기 폐 암 발견에 대 한 순환 예측에 관한 서명 분류자 테스트를 수행 하는 시험 검사는 BioMILD에 채택 하는 상세한 프로토콜 제시.

예측에 관한 기반 액체 생 검: 플라즈마 미르 폐 암 검 진에 대 한 서명 분류자 (MSC)의 경험

여기 우리가 폐 식 평가 하는 방법을 설명 예측 하는 miRNAs의 염증 유전자를 조절 하기 위해 마우스를 사용 하 여 오존에 노출 또는 estrous 주기의 여러 단계에서 공기를 필터링.

폐 예측에 관한 프로 파일링 걸쳐 the Estrous 사이클 오존에 노출 된 쥐에

이 프로토콜은 프로브 기반 실시간 중합효소 연쇄 반응(PCR), 설포호다민 B(SRB) 분석, 3' 번역되지 않은 영역(3' UTR) 클로닝 및 루시퍼라제 분석제를 사용하여 관심 있는 miRNA의 표적 유전자를 확인하고 miRNA의 기능을 이해합니다.

종양 세포에서 MicroRNA 수준, 기능 및 관련 표적 유전자를 평가하기 위한 시험관 내 프로토콜

여기서는 작은 RNA를 격리하고, microRNAs를 보강하고, 처리량이 높은 시퀀싱을 위한 샘플을 준비하기 위한 단계별 전략을 설명합니다. 그런 다음 시퀀스 읽기를 처리하고 오픈 소스 도구를 사용하여 microRNAs에 정렬하는 방법을 설명합니다.

MicroRNAs를 격리하고 시퀀싱하고 오픈 소스 도구를 사용하여 분석하기 위한 완벽한 파이프라인

우리는 네 개의 플라스미드를 가진 시험관 내에서 세포에서 사용되는 인트로닉 마이크로RNA 생물발생 리포터 어세이를 개발하였다: 하나는 인트로닉 miRNA를 가지고 있고, 하나는 표적을 가지고 있고, 다른 하나는 조절 단백질을 과발현하기 위해, 다른 하나는 레닐라 루시페라제이다. miRNA를 처리하고, 표적 서열에 결합함으로써 루시퍼라제 발현을 조절할 수 있었다.

포유류 세포에서 인트로닉 마이크로RNA 성숙을 분석하기 위한 리포터 분석

배우세요 사용자 정의 microRNA 마이크로어레이 실험 방법을 통해 RNA 분리, 형광 염료 라벨링, 하이브리드화 및 신호 분석을 수행하는 전체 과정을 익히세요. 이 기술은 유전자 발현 연구에 필수적입니다.

사용자 정의 MicroRNA의 Microarray 실험을 수행

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