Name: 전체 마운트하여 제브라 피쉬 배아 시편 스테인드 관찰 및 분석을위한 평면 마운트 준비 현장에서 하이브리드 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-07-17T16:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 36 s
Description: 배우세요 제브라피쉬 배아의 평면 마운트 기법으로 WISH 염색 후 요크를 제거하여 발달 단계의 구조를 명확히 관찰하는 방법입니다. 이 기술은 신장 전구체와 같은 세포 영역을 연구하는 데 필수적입니다.

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이 작품은 부분적으로 다음의 각에서 RAW로 자금에 의해 지원되었다 : NIH 보조금 K01 DK083512, DP2 OD008470 및 R01 DK100237; 5-FY12-75 천 바질 오코너 초보 학술 보조금 수상 # 3 월; 과학 및 생물 과학학과의 노트르담 대학의 대학에서 기금을 시작합니다. 우리는 특히 줄기 세포 연구 육성 노트르담 대학에 관대 한 선물을 부여 전체 갤러거 가족과 함께, 엘리자베스와 마이클 갤러거에게 감사의 말씀을 전합니다. 출자자는 연구 설계, 데이터 수집 및 분석, 게시 할 수있는 의사 결정, 또는 원고의 준비에 역할을했다. 우리는 그들의 지원을 위해 생명 과학학과의 직원을 감사하고, 우리의 제브라 피쉬 식민지의 보호와 복지에 탁월한 헌신 노트르담 Zebrafish의 연구 센터. 마지막으로, 우리는 것과 같이, 자신의 의견, 토론과이 작품에 대한 통찰력에 대한 우리의 연구 실험실의 구성원을 감사물론 자연적으로 우리의 연구를위한 가장 우수한 채찍 도구를 만들기 위해 고양이 수염을 흘렸다 제공하는 메리 골드 (Maripooka)와 초속 Wingert 등.

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저자가 공개하는 게 없다.

제브라 피쉬는 최근 몇 년 동안 연구 커뮤니티 전반에 걸쳐 매우 중요한 모델 생물적일 수있다. 제브라 피쉬가 높은 척추 동물의 유전 적 보존의 상당한 정도를 전시하고, 그들의 해부학, 번식 및 수명주기에 관한 장점은 실험 분석이 종은 매우 순종합니다. 더욱이, 제브라 피쉬에 적용 분자 기술의 진보는 더욱 과학적 연구에서이 모델 생물의 사용을 장려하고있다. 예를 들어, 형질 전환 제브라 피쉬 라인의 큰 다양성은 질병의 진행을 연구하고 기관 형성 등의 개발의 핵심 메커니즘을 기초 많은 근본적인 질문에 대답하기 위해 생성되었습니다. 따라서, 질병 및 개발 연구 모두에서 제브라 피쉬의 동적 사용을 기반으로, 세포 라벨링 방법 및 신호 정량 데이터 분석의 중요한 부분입니다. 동안 형광등을 사용 방법tibodies가 형질 전환 지브라 피쉬에서 단백질 발현을 검출하는 데 사용될 수 있으며, 연구자들은 전형적으로 고정 된, 비 - 형질 전환 지브라 피쉬 샘플의 유전자 전 사체의 시공간 현지화를 검사 WISH 12-16 같은 표준 절차에 의존한다. 사실, WISH 생물학 (16)에서 가장 널리 사용되는 방법 중 하나이며, 유전자 돌연변이 및 화학적 유전 섭동의 표현형을 특성화하는 데 사용되는 중요한 도구이다. 그럼에도 불구하고, WISH는 잠재적 인 함정과 도전의 번호와 연결되어 있습니다. 안티센스 ribroprobe의 특이성을 확인하기 위해, 감지 리보 프로브는 안티센스 riboprobe 염색 패턴의 특이성을 평가하기위한 컨트롤로 사용할 수 있습니다. 섹션 (4, 5)는 라벨 및 플루오 레세 인 표지 프로브이어서 digoxygenin-표지 프로브의 검출 순서로 제시되어 있지만,이 순서는 역전 될 수있다. 일반적으로 약한 신호 (낮은 발현 수준과 유전자) 최고의 digoxygenin 표지 프로브 및이 얼룩 감지탐지 및 레드 기판을 사용하여 강한 신호 (더 풍부하게 표현 된 유전자)의 염색 뒤에 보라색 기판으로 처음 개발. 두 색 반응이 수행하려는 경우, 그것은 라벨 및 기판의 다양한 조합이 데이터 수집 및 분석을위한 가장 적합한 절차를 찾기 위해 검사되는 것이 추천된다. 또한, 시간은 4 ~ 5가 24 시간 게시물 수정 미만의 태아에게 맞는 절에서 제공하는 항체 배양 및 세척을 차단 제공; 이전의 배아와이 동일한 단계의 긴 간격으로 샘플에 소금 축적으로 이어질 수 있습니다. 표준 제브라 피쉬 배아 WISH 문제 해결을위한 광범위한 팁은 이미 문학 12 ~ 16에 기록되어있다. 틀림없이 가장 일반적인 딜레마는 높은 배경이다. 우리는 필요한 경우 하룻밤 MABT &#39;슈퍼 워시&#39;의 추가는 우리의 경험, 생각, 단계 4.7 15-20 세척에 MABT 세척의 수를 증가 추천4.8 단계로 진행하기 전에 10 개 이상의 짧은 MABT 세척과 함께 사용하면 뛰어난 결과를 제공합니다. 또 다른 예를 들어 딜레마 긴 리보 프로브에서 발생할 수있는 불량 프로브 침투입니다. 알칼리 가수 분해를 통해 단계 3.6 다음 riboprobe 전단은 이에 대응 할 수 있습니다. 젊은 샘플 우리의 경험에서, 프로브 전단은 일반적으로 필요하지 않습니다. 그러나, 하나는이 소원 실험의 결과에 영향을주는 요소 수와 같은 매개 변수에 유의해야하고, 우리는 필요에 따라 자신의 소원 실험 매개 변수를 세분화하는 사회에서 이미 공개적으로 사용할 수있는 유용한 문제 해결 지침의 검토를 제안 연구 12. 기존의 WISH 기술 12-16 외에도 WISH 방법론과 공식화 된 다른 프로토콜의 발전의 지속적인 출현이 있었다. 여기에는 fluores의 사용을 통해 같은 신호 검출하는 새로운 방식을 포함cence 17-19, 마이크로 RNA (20)의 국산화를 가능하게 방법에 관한 것이다. 얼룩 (들)이 쉽게 원하는 시점에서 관심의 샘플 내에서 시각화 할 수없는 경우도 있으므로, 현재 셀의 표시 방법에 적용된 많은 개선에도 불구하고, 이러한 절차의 효과는 무효가됩니다. 이 제한은 잠재적으로이 시간에 발생하는 다양한 발달 과정에 대한 우리의 이해의 격차로 이어질 수있는, 그것은 제브라 피쉬의 개체 발생의 초기 배아 단계에 관한 특히 연구자에 대한 문제가있다. 정상적인 제브라 피쉬를 개발하는 동안, 난황은 점진적으로 배아 나이 11로 크기가 감소합니다. 배아가 인접 난황에 비해 크기 때문에 따라서이 나중에 발달 단계 (&gt; 24 시간 게시물 수정)에서, WISH 염색을 분석하는 매우 간단합니다. 그러나,이 (초기 somitogenesis에 꼬리 봉오리 단계로부터 그렇지 않은 경우 배아불투명 난황 가끔 얼룩의 시각화를 모호하게 할 수있는 질량은) 노른자 주위에 위치한다. 결과적으로, 평면 실장의 방법은 (도 1 및도 2에 도식화) 초기 지브라 피쉬 배아 샘플의 특성화와 관련된 영상 및 데이터 분석 문제를 완화하기 위해 고안되었고, 광범위 절연 유전자 변이의 체계적인 표현형 이후 사용되어왔다 첫 번째 큰 규모의 유전 화면 21. 평면 실장 기술의 출현 이후, 초기 발달 단계의 분석은 크게 향상되었다. 노른자는 배아에서 제거되면, 이미지의 원하는 방향으로 유리 슬라이드에 배아 평면을 배치 할 수있다. 이 2 차원 위치는 시료를 회전시킬 필요성을 제거하는, 한번에 전체 배아의 시청을 가능하게한다. 많은 조직은 같은 배아의 광범위한 영역에있는혈액 및 신장을 형성 전구체. 또한, 하나는 한 번에 여러 가지 개발 조직을 비교할 필요가있다. 평면 설치 동시에 휴대 그룹의 전체 도메인을 볼 수, 따라서 크게 같은 조직 또는 세포 카운트에 대한 면적 측정 등 quantifications 도움이 될 수 있습니다 연구원 수 있습니다. 이 기술은 궁극적으로 조혈, 신경 및 기관 형성의 기초가 중요한 발달 다양한 메커니즘에 관한 많은 발견으로 이어질 도움이되었습니다. 따라서, 한 번 마스터, 연구원이 간단한 기술에 대한 응용 프로그램은 매우 충실합니다. 예를 들어, 조혈 동안 계보 선택을 검토 한 연구에서, 평면 14, 18 체절 단계 (SS)에 제브라 피쉬 배아의 준비를 마운트는 사이 PU.1 아연 손가락 전사 인자의 발현 패턴에 발생한 변경 사항을 설명하기 위해 사용 된 야생형과 gata1 모르 폴리 노 배아 (22)를 주입했다.이 방법은 gata1 가장 가능성이 시점 주위 중간 세포괴 (ICM)에 PU.1의 발현을 조절하는 것을 나타내는, 18 SS에서 확장 PU.1 도메인의 검출을 가능하게했다. / - - gtpbp1 및 epsin 등 다양한 적혈구 유전자 스테인드 추가 평면 장착 배아는 gata1했다 VLT 돌연변이 체에서 이러한 유전자의 표현의 손실을 보여 주었다. 또한 분석 biklf 및 GATA 활동에 독립적으로 알려졌다 testhymin 같은 erythoid 유전자의 발현에 변화가 없었다. 따라서, 자신의 다른 실험 결과와 함께, 그것 gata1가 myelo-적혈구 계통 내의 세포의 분화 조절에 필수적인 것으로 밝혀졌다. 신경 능선 개발의 연구에서, 평면 마운트는 연구 (마피아 M610) 돌연변이 몽 블랑에 crestin 식을 검사하는 데 사용되었다몽블랑과 tfap2a 유전자의 기능 (23)의 역할을 조사. 10, 20 SS에서 crestin 표현은 완전히 머리를 폐지하고, 궁극적으로 몽블랑의 중요성과 tfap2a 규제에 결론이 그룹을 보조, 일반 야생 형 식에 비해 폭도 M610 돌연변이의 트렁크 지역에서 감소 하였다 신경 능선을 형성하는 동안. 또한, 기관 형성의 측면에서, 평면 마운트 pronephros로 알려진 제브라 피쉬 배아 신장의 개발 과정에서 초기 신장 전구 필드에 고유 한 도메인의 존재의 발견을 사용할 수있다. 제브라 피쉬 배아 신장 전구 세포가 pronephros을 구성하는 네프론 기능 단위로 상승을 제공하는 방법을 연구하는 보존 아직 해부학 간단 시스템, nephrogenesis 6,7로 알려진 프로세스 (그림 4)를 제공합니다. 플랫 마운트 분석은 다시의 문서 도메인에 유용했다NAL 조상 이전에 알려지지 않았다 (그림 5), 6,7 패터닝 pronephros 동안 RA 신호의 변화의 결과를 해부하다. 이와 함께, 이러한 예는이 평면 정상적인 발달 및 질병 상태 중에 발생하는 다양한 과정의 연구에 마운트 프로토콜에 대한 많은 다양한 응용 프로그램이 실제로 있다는 것을 시사한다. 개념적으로,이 평면 마운트 절차는 전반적으로 매우 간단하다. 그러나,이 방법을 마스터하는 데 필요한 기교의 조작과 정도는 시각적 데모의 부재에서 마스터에 매우 도전이 될 수 있습니다. 따라서,이 프로토콜은 연구자, 더이 기술을 수행하고 조직의 처리를 최적화 할 수있는 시약에 대한 우리의 조언을 공유하는 방법을 이해하는 기회를 제브라 피쉬 모델에 새로운 특히를 사용하도록 컴파일 된. 우리는이 프로토콜은 궁극적으로 지역 사회에서 다른 사람들이 U로 가장 이상적인 샘플 조건을 세분화 할 수 있기를 바랍니다SED 프리미엄 이미징, 데이터 분석 및 출판물에 그 결과를 통신. 궁극적으로,이 실험 결과의 프레 젠 테이션을 모호하게 할 수있는, 초기 배 발생 중에 제브라 피쉬의 해부학 적 방해물을 극복하기 위해 연구를 활성화하고이 간단하지만 중요한 기술의 사용을 통해 이러한를 해결해야합니다.

제브라 피쉬, 다니오 rerio는 발달 생물학의 연구에 널리 사용되는 생물이되고있다. 제브라 피쉬는 가족 Cyprinidae에 속하는 열대 담수 척추 동물 종이다. 그들은 쉽게 얻을 저렴하고, 하나를 유지하기 쉽다 있었던 것에 지브라 피쉬는 원래 전위 수질 오염의 위험에 대한 정보를 얻기 위해 환경 연구에 사용 하였다. 지난 30 년 동안, 제브라 피쉬는 이유로 호스트에 대한 유전자 다루기 쉬운 척추 동물 모델 시스템으로 인식되고있다. 제브라 피쉬는 포유 동물 2,3 고등 척추 동물과 해부학 및 생리 학적 보존의 높은 수준을 보여줍니다. 최근 게놈 서열 주석 인간 유전자의 약 70 %가 적어도 하나의 제브라 피쉬의 대응 4이 있다고 밝혔다. 예를 들어, 신장 개발 과정에서 중요한 역할을 많은 orthologous 유전자는이 종의 5 ~ 7 사이에 확인되었습니다. 이 드라세포 및 분자 생물학 관련하여 보존 매틱 정도는 제브라 피쉬 8 인간의 질병의 다양한 모델을 만들 연구자 사용할 수 있으며, 제브라 피쉬 화학 유전 스크린 (9)를 이용하여 잠재적 인 약물 요법을 식별하기위한 유용한 도구가되었다. 또한, 제브라 피쉬 모델뿐만 아니라 복잡한 발달 과정과 인간에서 볼 수 있습니다 다양한 질환을 요점을 되풀이하지만, 몇 가지 추가 속성도 함께 배아 연구를위한 모델 생물로의 매력을 높일 수 있습니다. 제브라 피쉬는 난생하고 수정 (10)의 시작에서 태아에 쉽게 접근 할 수있는 연구자를 제공하는 방송 산란을 통해 재현하고 있습니다. 다른 장점은 태아의 크기, 투명도 및 빠른, 외부 개발 (10)이 (가) 있습니다. 또한, 제브라 피쉬의 성인은 높은 생산력을 가지고 일반적으로 200 ~ 500 사이의 범위는 상대적으로 큰 클러치 크기를 생산일주일, 궁극적으로 쉽게 9 이러한 표현형 기반 화학 화면으로 높은 처리량 실험을 수행 할 연구원을 가능하게한다. 그럼에도 불구하고, 제브라 피쉬 모델에 의해 전시되는 장점의 과다에도 불구하고, 분석 및 초기 개발 단계에서 얻은 실험 결과의 통신과 관련된 문제가 있습니다. 어떤 경우에는, 제브라 피쉬 배아의 고유 해부학 하나의 데이터의 시각화를 모호 있었다. 발달이 진행됨에 따라 (11)을 수정 한 후, 초기 셀은 여러 분열 이벤트를 겪는다. 낭 배기 후, 배아 축이 노른자 11 감싸되도록 tailbud 단계 (10 HPF)에서 나온다. 이후의 개발은 분할 기간을 통해 진행되는 트렁크 대량으로 성장하고 또한 축 방향으로 길게 연장되는 노른자의 일부와 함께 꼬리 자체 골목 중앙 노른자 질량에서, 연장하도록11. tailbud 20 체절 단계 (19 HPF) 사이에, 같은 WISH 등 다양한 염색 프로토콜의 이용 후 특정 발달 기능을 관찰하기 위해 시도, 모두에 의한의 배아 및 불투명도의 형상을 시각화하고 사진에 도전 할 수있다 난황. 이러한 문제를 해소하기위한 한 가지 방법은 노른자를 제거하고 더 간단한 방식으로 분석 할 수있는 이차원 샘플로 배아를 평탄화하는 것이다. 다음과 같은 프로토콜 및 비디오 자원이 성공적으로 deyolk 및 평면 하나 또는 두 개의 컬러 WISH 염색의 예를 사용하여, 고정 및 염색 다음 배아를 마운트하는 방법에 대한 가이드를 제공합니다. WISH 보존 시료에서 특정 핵산의 검출을 가능하게하고, 따라서 조직 내에서 검출되는 유전자 발현의 사이트 (들)을 허용 널리 사용되는 기술이다. WISH 기술은 광범위하게 설명되었지만, 다양한 색상의 기판뿐만 아니라 수행 할 수 플루orescent 탐지 시스템 12-20. 여기에서 우리는 개발의 tailbud와 분할 단계 사이에 제브라 피쉬 배아에 사용되는 우리의 수정 WISH 프로토콜을 제공합니다. 아래 프로토콜의 초기에 언급 한 바와 같이 대체 WISH 프로토콜은 그러나 여기서 설명하는 플랫 마운트 절차와 호환된다. 또, 평면 실장 등이 프로토콜에 설명되지 않은 전체 마운트 면역 조직 또는 세포 계보 추적 라벨 등 기존의 시각화 기법을 임의의 개수와 함께 이용 될 수있다. 전반적으로, 평면 설치의 기술은 더 나은 제브라 피쉬의 배아 발달의 초기 단계 실험에서 얻은 데이터의 뛰어난 분석 및 프리젠 테이션을 활성화 할 수 있습니다.

<table><tbody><tr>증류수 중 <td>50 X E3</td><td></td><td></td><td>250mM NaCl, 8.5mM KCl, 16.5mM CaCl2, 16.5mM MgSO4. 오염을 억제하기 위해 메틸렌 블루(1 x 10-5 M)(Sigma M9140)를 보충하십시오.</td></tr><tr><td>1 X E3</td><td></td><td></td><td>50 X E3를 증류수에 희석합니다.</td></tr><tr><td>메쉬 차 여과기</td><td>English Tea Store</td><td>SKU #ASTR_KEN, MPN#1705</td><td></td></tr><tr><td>배아 배양 접시</td><td>Falcon</td><td>35-1005</td><td></td></tr><tr><td>전사 피펫</td><td>Samco</td><td>202, 204</td><td></td></tr><tr><td>평평한 바닥 마이크로 원심분리기 튜브</td><td>VWR</td><td>87003-300; 87003-298</td><td></td></tr><tr><td>유리 바이알</td><td>Wheaton</td><td>225012</td><td></td></tr><tr><td>1x PBST</td><td></td><td></td><td>1x PBS에 0.1% Tween-20 세제, 10x PBS를 증류수에 희석하여 만듭니다.</td></tr><tr><td>Tween-20 stock</td><td>American Bioanalytical</td><td>AB02038</td><td></td></tr><tr><td>10x PBS</td><td>American Bioanalytical</td><td>AB11072</td><td></td></tr><tr><td>파라포름알데히드</td><td>전자 현미경 서비스</td><td>19210</td><td></td></tr><tr><td>4% PFA/1X PBS</td><td></td><td></td><td>1x PBS에 4% PFA(w/v)를 용해하고 흄 후드의 열판에서 끓입니다. -20°C에서 보관하기 위해 부분 표본을 식히고 동결하십시오. 사용 직전에 해동하고 재고를 다시 냉동하지 마십시오.</td></tr><tr><td>필터 살균 장치</td><td>Corning</td><td></td><td>430516 1L 필터 시스템, 0.45 & m CA</td></tr><tr><td>MeOH</td><td>Sigma</td><td>34860-4L</td><td></td></tr><tr><td>Proteinase K</td><td>Roche</td><td>03-115-879-001</td><td>증류수에 용해시켜 proteinase K stock(10mg/ml)을 만들고 -20°C에서 부분 표본을 저장합니다.</td></tr><tr><td>HYB+</td><td></td><td></td><td>50% 포름아미드, 5x SSC, 0.1% Tween-20, 5 mg/ml 효모 토룰라 RNA, 50 &mu; 지/&무; l 헤파린</td></tr><tr><td>DIG/FLU 표지 리보프로브 in vitro 전사 반응 시약</td><td>Roche</td><td>11175025910; 11685619910</td><td>제조업체 지침을 참조하십시오.</td></tr><tr><td>SP6 RNA 중합효소</td><td>Roche</td><td>11487671001</td><td></td></tr><tr><td>T7 RNA 중합효소</td><td>Roche</td><td>10881775001</td><td></td></tr><tr><td>T3 RNA 중합효소</td><td>Roche</td><td>11031171001</td><td></td></tr><tr><td>RNase 1 억제제</td><td>Roche</td><td>3335399001</td><td></td></tr><tr><td>DNase 1 억제제, 10x DNase 1 완충액</td><td>Roche</td><td>4716728001</td><td></td></tr><tr><td>글리코겐</td><td>Roche</td><td>10901393001</td><td></td></tr><tr><td>에탄올 (EtOH)</td><td>Sigma</td><td>E7023</td><td>분취량: 100% EtOH 및 70% EtOH의 분취액 50ml(분자 등급 물로 희석), -20°C에서 보관.</td></tr><tr><td>분자 등급 증류수</td><td>Mediatech</td><td>25-055-CM</td><td></td></tr><tr><td>수조</td><td>열</td><td>51221073</td><td>모델 2831</td></tr><tr><td>Nanodrop</td><td>Thermo</td><td>ND-2000C</td><td></td></tr><tr><td>포름 아미드</td><td>미국 생물 분석</td><td>AB00600</td><td>-20 °C에서 보관하십시오.</td></tr><tr><td>20x SSC</td><td>American Bioanalytical</td><td>AB13156</td><td></td></tr><tr><td>MAB</td><td></td><td></td><td>2 L 수식 : 증류수 1.5 L에 말레 산 23.2 g, NaCl 17.5 g, 트리스마 염기 55.0 g를 혼합 한 다음 1M Tris-HCl pH 9.5 8 ml를 첨가 한 다음 2 L. 오토 클레이브에 채 웁니다.</td></tr><tr><td>MABT</td><td></td><td></td><td>MAB + 0.1%(v/v) Tween-20</td></tr><tr><td>블록 용액</td><td></td><td></td><td>50ml의 신선한 분취액으로 만듭니다: BSA 10ml(10% 실험실 재고), FCS 5ml(재고 상태) 및 MABT 35ml. 사용하지 않는 블록을 4 &deg에 저장하십시오. 항체 용액에 사용하는 C. 참고: BSA 및 FCS 재고를 37 &deg에서 해동합니다. C&ndash; 더 높은 온도에서 해동하면 두꺼운 젤이 됩니다(사용하지 마십시오).</td></tr><tr><td>FCS(태아 송아지 혈청)</td>는 <td>Invitrogen</td><td>16140089</td><td>부분 표본을 5 또는 10 ml 분량으로 비축하고 -20°C에서 보관합니다.</td></tr><tr><td>BSA (소 혈청 알부민) 주식</td><td>American Bioanalytical</td><td>AB00448</td><td>BSA 플레이크를 실온에서 빠른 교반으로 용해시켜 MAB에 희석 한 10 % 주식을 만든 다음 -20 °C에서 10ml 분취액을 보관하고 용해되지 않은 BSA 플레이크를 4°C에서 보관합니다.</td></tr><tr><td>항 digoxigenin 항체</td><td>Roche</td><td>11-093-274-910</td><td>4 &deg; C.에 저장.</td></tr><tr><td>항플루오레세인 항체</td><td>Roche</td><td>11-426-338-910</td><td>Store at 4 &deg;C.</td></tr><tr><td>12-웰 염색 접시</td><td>BD-Falcon</td><td>35-3225</td><td></td></tr><tr><td>사전 염색 완충액</td><td></td><td></td><td>100mM Tris pH 9.5, 50mM MgCl2, 100mM NaCl, 0.1%(v/v) Tween-20. 항상 신선하게 만드십시오 : 며칠 동안 침전됩니다.</td></tr><tr><td>염색 용액 - 보라색</td><td></td><td></td><td>필요한 10ml마다 : 45 &# 956 추가; NBT의 l과 35 &#956; l의 BCIP를 새로운 사전 염색 완충액에 복사합니다(배아 샘플에는 사용되지 않음).</td></tr><tr><td>염색 용액 - 빨간색</td><td></td><td></td><td>필요한 10 ml마다 : 31.5 &# 956 추가; INT의 l 및 35 &#956; l의 BCIP를 새로운 사전 염색 완충액에 복사합니다(배아 샘플에는 사용되지 않음).</td></tr><tr><td>NBT 주식</td><td>Sigma</td><td>N6876</td><td>-20 &deg에 저장됨; C; 분말 70% DMF, 30% 물에 50mg/ml를 희석했습니다.</td></tr><tr><td>INT 주식</td><td>Sigma</td><td>I8377</td><td>-20 &deg에 저장; C; 70% DMF, 35% 물에 55mg/ml를 희석한 분말.</td></tr><tr><td>BCIP 주식</td><td>Sigma</td><td>B8503</td><td>-20 &deg에 저장됨; C; 100% DMF에 50mg/ml로 희석된 분말.</td></tr><tr><td>DMF (dimethylformaldehyde)</td> <td>American Bioanalytical</td><td>AB00450</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Glycine Sigma</td><td>G8898</td><td>0.1 M 글리신, pH 2.2</td></tr><tr><td>작은 플라스틱 페트리 접시</td><td>Corning</td><td>430589, 430588</td><td></td></tr><tr><td>글리세롤</td><td>Sigma</td><td>G7893</td><td></td></tr><tr><td>미세 집게</td><td>Roboz</td><td>RS-1050</td><td>Dumont 핀셋 패턴 # 55</td></tr><tr><td>래쉬 도구</td><td></td><td></td><td>초강력 접착제를 사용하여 피펫 팁(P10-P1000 크기 사용 가능)에 적절한 속눈썹을 부착하여 구성됩니다. 우리는 자연적으로 벗겨진 인간 속눈썹, 자연적으로 빠진 동물 수염 또는 뻣뻣한 모피 털 또는 제약 또는 소매점의 미용 부서에서 구입한 천연 또는 합성 속눈썹을 사용합니다(매우 긴 속눈썹은 피펫 팁에 안정적으로 장착하는 것이 가장 적합합니다). 피펫 팁은 바늘 홀더(예: , Fisher 08-965-A)와 같은 직선 막대(길이 8-10cm)/em)에 부착되어 있습니다. 이러한 수제 도구의 이미지는 그림 3를 참조하십시오.</td></tr><tr><td>유리 슬라이드</td><td>Thermo-Fisher</td><td>4445</td><td>White Frost</td></tr><tr><td>Glass coverslip</td><td>Thermo-Fisher</td><td>12-540A</td><td>18 x 18 mm</td></tr><tr><td>모델링 클레</td>이 <td>Hasbro</td><td>Playdoh</td><td>다른 공예 모델링 클레이 제품으로 대체 할 수 있습니다.</td></tr><tr><td>슬라이드 홀더</td><td>Thermo-Fisher</td><td>12-587-10</td><td>슬라이드를 평평하게 보관할 수 있는 판지 트레이.</td></tr><tr><td>실체 현미경</td><td>니콘</td><td>SMZ645, SMZ1000</td><td></td></tr><tr><td>복합 현미경</td><td>니콘</td><td>80i, 90i</td><td></td></tr></tbody></table>

전체 마운트하여 제브라 피쉬 배아 시편 스테인드 관찰 및 분석을위한 평면 마운트 준비<em&gt; 현장에서</em&gt; 하이브리드

Flat Mount Preparation for Observation and Analysis of Zebrafish Embryo Specimens Stained by Whole Mount In situ Hybridization

제브라 피쉬 배아는 이제 일반적으로 발달 과정의 유전자 제어를 조사하고 선천성 이상을 모델로 기본 및 생물 의학 연구에 사용됩니다. 인생의 첫 번째 날 동안, 제브라 피쉬 배아는 수정, 절단, 낭 배기, 분할, 이러한 신장, 심장, 중추 신경계와 같은 구조의 기관 형성 등 많은 발달 단계를 통해 진행됩니다. 배아 라운드 노른자 질량과 공동으로 개발하고 있기 때문에 젊은 제브라 피쉬 배아의 해부학은 이러한 이벤트의 많은 관련된 조직의 시각화 및 분석을위한 몇 가지 과제를 제시한다. 따라서, 정확한 분석 및 tailbud 20 체절 단계와 같은 사용하여 염색 된 것과 같은 (각각 10, 19 시간 포스트 수정 (HPF),) 사이의 고정 된 배아 표본 실험 표현형의 이미징 전체는, 현장 하이브리드 (WISH)에 탑재 노른자 B에서 배아를 제거하는 것이 바람직하다모두와 유리 슬라이드에 평면을 배치합니다. 그러나, 편평한 마운트 절차를 수행하는 단계 지루한 일 수있다. 따라서, 평면 성공적이고 효율적인는 준비가 크게 절개 기법의 시각적 데모를 통해 용이하게 장착하고, 또한 최적의 조직 처리를 보조 시약을 사용하여 도움을 주었다. 여기서, 우리는 제브라 피쉬 배아에서 유전자 발현 중 하나 또는 두 가지 색 검출을 위해 우리 WISH 프로토콜을 제공하고, 평면 실장 절차 더러워 고정 표본이 예에서 수행 될 수있는 방법을 보여준다. 이 평면 장착 프로토콜은 초기 제브라 피쉬의 개발 과정에서 나오는 많은 배아 구조의 연구에 광범위하게 적용 가능하며, 고정 된 배아 샘플에서 수행 다른 염색 방법과 함께 구현 될 수있다.

평면형 장착 프로토콜 절차 몸 축 이차원 준비 (도 1a)에, 중앙에 위치한 노른자위 공 감싸되는 정상적인 해부학에서 제브라 피쉬 배아의 변환을 수반한다. 젊은 제브라 피쉬 배아의 전체 마운트 영상은 배아 축이 노른자를 감싸 방법의 특성에 의해 제한됩니다. 그 결과, 전체의 횡 방향 또는 등쪽 전체 스테인드 배아 표본만을 축 또는 애매한 특정 조직 (도 1b)의 일부를 캡처 할 수 마운트. 비교함으로써, 배아의 deyolking 및 평탄화 한 번 (그림 1B)에 시각화 할 수있는 전체 배아 축 수 있습니다. 이러한 제한은 레이블 WISH 스테인드 (13)를 통해 somites 7에 인접 신장 전구 세포의 하위 집합을 표시 (보라색) irx3b을 감지하는 안티센스 리보 프로브로 표지 된 배아 및 myod1 (적색) 검사에 의해 입증 된somites (그림 1B). irx3b + 신장 조상의 필드 irx3b 성적이 좌우 카메라 각도와 시각화 신장 필드가 사실상 불가능하고, 중추 신경계에 풍부하기 때문에 측면보기 마운트 전체에 가려; 필드가 노른자 (그림 1B)를 감싸 때문에 배아 등의 카메라보기로 회전 할 때 더, irx3b + 신장 조상의 분야는 부분적으로 만 볼 수 있습니다. 그러나, 평면 설치 다음과 같은 배아의 지느러미보기 irx3b + 트렁크 및 기타 배아 구조 (그림 1B)를 따라 somites 관련 간단한 방식으로 분석 할 수있는 신장 조상의 전체 필드 수 있습니다. 따라서, 정교한 공간 도메인은 이상적으로이 방법으로 설명 할 수있다. 몇 가지 주요 단계는 평면 마운트 절차의 성공적인 실행에 참여하고 있습니다. 이 techniqu을 수행하려면전자, 노른자 공을 먼저 배아 실체 현미경을 사용하여 시각 동안 같은 미세 집게 한 쌍의 미세한 악기와 함께 할 수있는 적절한 배아 (그림 2A)에서 분리해야합니다. 노른자 공의 원유 제거 후, 미세한 속눈썹 도구는 배아 (그림 2B)에 부착 남아있다 노른자 과립을 쳤어요하기 위해 사용된다. 남은 노른자위 과립의 제거는 배아 조직의 시각화를 용이하게하는 것을 돕는다. 마지막으로, 배아 deyolked는 관측 및 제품 이미징 소프트웨어를 사용하여 샘플의 문서와 현미경에 부착 된 카메라를 가능하게 유리 슬라이드 (도 2c)에 안정적으로 위치 시키도록 조작된다. 속눈썹 도구는 손잡이 원하는 경우 (그림 3A, 재료 테이블)에 장착 할 수있는 순간 접착제를 사용하여 피펫 팁에 적합한 속눈썹을 부착하여 구성 할 수있다 만든 장치입니다. 다른 속눈썹 샘플 생산 조달 할 수있다길이와 각 사용자들이 평면 마운트 절차 실험을 시작하면 서로 다른 선입견을 가질 수있다 테이퍼 (그림 3B)의 측면에서 약간 다른 특성을 가진 도구를 채찍. 채찍 샘플의 예는 자연, 인간의 속눈썹을 흘렸다 자연스럽게 동물 철사 머리카락이나 수염을 흘리다, 그리고 마지막으로 상업적으로 이용 가능한 속눈썹의 합성 품종 소매 화장품 부서에서 찾을 수 있습니다. 주변과 유리 슬라이드 (도 4a)에 위치 샘플 (들)을 함유하는 근거리 고해상도 분석을 위해 이미징 될 수있다. 프로브의 조합은 두 가지 색상 소원을 초기 개발 단계에서 야생형 배아의 신장을 야기 개발 신장 조상 레이블을 한 다음 평면 준비가 샘플 (그림 4B, 4C를 수행 한 마운트에 사용되었다 ). 초기 체절 단계에서, 신장 전구 세포는 일까지 U 자형 패턴 내에서 구분됩니다부수적으로 델타 C (DLC) (빨강) (왼쪽 열, 그림 4B) 6,7을 표현 근축 중배엽 주변 (보라색) pax2a 성적 증명서의 유효 이자율 식입니다. DLC 성적 증명서는 보라색 기판 검출하고, 후뇌 마커 krox20 (빨간색)와 함께 표시되었을 때 이전에 언급 한 바와 같이 비교, 신장 조상의 주동이의 하위 도메인은 DLC (오른쪽 열, 그림 (b))을 표현하는 시각화 된 6,7. 플랫 마운트 준비는 나중에 somitogenesis 단계를 연구하는 유사하게 사용할 수 있습니다. 14 체절 단계에서, 우리는 신장 마커 pax2a, slc4a4 및 somites (그림 4C)를 표시 smyhc1 (빨간색)와 함께 (보라색) slc12a3의 발현을 분석 하였다. 공개하면서이 조합은, pax2a로 전체 신장 전구 도메인의 매핑을 사용하는 주동이의 하위 도메인 EXPR 세포의 하위 집합slc4a4a을 essed 및 slc12a3을 표현 신장 조상의 비 중첩 꼬리 하위 도메인으로 구분 하였다. 두 가지 색의 WISH 플랫 마운트 준비는 작은 분자 6,7의 환경 노출 (그림 5)에서 유전자 변이 또는 다른 동요와 제브라 피쉬의 기관 형성 기간 동안 휴대 도메인의 연구에 가치가있다. 제브라 피쉬의 NLS와 리브 돌연변이는 알데히드 탈수소 효소 1A2 레티노 산 (RA)의 생합성에 필요한 효소를 인코딩 (이전 raldh2로 알려진 aldh1a2,)에 변이를 항구. RA는 사구체 6,7라고도 배아 신장의 혈액 필터를 만들기 위하여 올릴 족 세포 세포의 형성 등 많은 신 세포 유형의 적절한 발달에 필수적이다. WISH는 병용 t의 경계와 wt1a와 족 세포의 전구 세포에 라벨을 실시 하였다그는 야생형 배아 krox20와 smyhc1와 후뇌로 somites을 개발, 돌연변이 배아, 리브 돌연변이 배아 및 ALDH 효소의 화학 억제제, DEAB (그림 5)으로 처리 배아를 NLS. DEAB 처리 된 배아 wt1a 성적 증명서의 폐기 (그림 5, 오른쪽 열)을 보여 주었다 동안 부족한 aldh1a2 식 배아, 야생형의 배아에 비해 감소 wt1a 식을 보여 주었다. 종합하면, 이들 결과는 대표적인 평면 실장 기술은 분석 및 문서 초기 배아의 정밀도 차이를 해부하고, 따라서 귀중한 개발 연구에 구현하는 방법을 보여준다. <img alt="그림 1" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51604/51604fig1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51604/51604fig1.jpg" /> 플랫 마운트 prepa의 그림 1. 개요제브라 피쉬 배아에 대한 배급. 중앙 노른자 질량이 평평한 표면에 제거하고 배아가 안정적으로 배치되어 있기 때문에 A) 평면 설치의 절차는 배아 축을 따라 조직을 동시에 볼 수 있습니다. 전체 마운트의 B) 이미지 측면과 등 부분에 얼룩이 배아를 기원합니다, 다음 평평한 마운트 준비가 수행 된 후. 배아는 irx3b (보라색)과 myod1 (적색) 인코딩 유전자 성적 증명서를 감지하는 안티센스 프로브로 염색했다. <img alt="그림 2" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51604/51604fig2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51604/51604fig2.jpg" /> 그림 2. 제브라 피쉬 배아에 대한 평 마운트 절차의 개략도. A) 배아 제 조잡한 노른자 질량의 대부분을 제거 할 수있다 deyolked 후 (B) 복부 표면 미세 잔존 난황 과립을 제거 deyolked되고,배아를 세척 후 (C)는 시각적 분석 및 / 또는 사진 촬영을위한 유리 슬라이드 등의 측면을 장착합니다. <img alt="그림 3" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51604/51604fig3highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51604/51604fig3.jpg" /> 그림 3. 예를 채찍질 도구의 사진이 미세 집게와 비교. A) 제 속눈썹 도구는 뷰의 상단에 제공되는 밀리미터 참조, 참조. B) 미세 집게 옆에 채찍질 도구의 확대 된 뷰를 제공하는 메트릭 자에 인접하여 위치, 미세 집게의 표준 쌍과 함께 몇 군데 있었다 . 두 개의 서로 다른 속눈썹 도구에서 얻은 채찍을 표시하는 데 사용되는 별표 (*)로 도시되어 자연적으로 인간의 속눈썹을 흘리다, 그리고 두 개의 별표 (**)는 자연스럽게 흘려 고양이 수염에서 얻은하고 정돈 된 속눈썹을 표시하는 데 사용 다소 무딘 끝을 확인합니다. 각 캘리포니아에있는SE는, 속눈썹은 피펫 팁을 통해 스레드와 점진적으로 처리 장치에 부착 된 피펫으로 속눈썹을 고정 / 안정 강한 실을 만드는 순간 접착제의 여러 코트에 부착 하였다. <img alt="그림 4" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51604/51604fig4highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51604/51604fig4.jpg" /> 야생형 제브라 피쉬 배아의 신장 전구 분야의 발달 변화의 그림 4. 특성. A) (B, C). B) 야생 유형 1에서 배아, 3, 5 체절 단계가주는 신 전구 필드의 구성을 평가하기 위해 두 가지 색상 WISH에 의해 염색에 분석을 위해 몇 군데 지역을 나타내는 회로도를 밀어 배아 신장, 또는 pronephros에 상승. (보라색 염색) 전사 인자 pax2a을 인코딩 (왼쪽 열) 성적 증명서는 신장 P를 포함하여 태아의 여러 집단을 표시중간 중배엽에서 나온다 rogenitor 필드. 노치 리간드 DLC를 인코딩 성적 증명서 (빨간색으로 염색) 근축 중배엽에서 형성 somites을 표시합니다. (보라색 염색) DLC의 성적 표현과 후뇌 rhombomere 마커 krox20 (빨간색으로 염색)이 같은 배아에서 조사하는 경우 (오른쪽 열), DLC 표현 somites에 인접 신장 조상의 주동이의 하위 도메인에서 관찰 할 수있다 14 체절 단계에서 pax2a. C) 야생 형 배아와 DLC의 공동 염색 동안 가려되었다 1-5)을 두 번이나 (보라색 신장 마커의 조합으로 트리플 염색, 체절 마커 smyhc1 (빨강) 와 후뇌 rhombomere 마커 krox20 (또한 빨간색). 이 단계에서 (상단 패널), pax2a 성적은 신장 전구 세포 경계를 구분하는 것을 계속한다. (중간, 낮은 패널) 신장 전구 영토 내에서 주동이의 하위 도메인이 표시됩니다slc4a4 및 slc12a3을 인코딩 성적 증명서에 의해 꼬리 하위 도메인을 표시합니다. <img alt="그림 5" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51604/51604fig5highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51604/51604fig5.jpg" /> (보라색) wt1a의 15 체절 단계에서 그림 5. 유전자 변이 또는 레티노 산의 생합성을 조절하는 화학 물질의 유전 섭동에 의한 표현형의 특성을 평면 장착 준비의 사용. WISH 발현 패턴과 smyhc1/krox20 (빨간색)을 비교 하였다 레티노 산 (RA) 생산의 부족과 야생의 종류와 태아 사이에 의한 알데히드 탈수소 효소 1A2 (NLS 및 리브 돌연변이) 또는 diethylaminobenzaldehyde (DEAB)와 retinaldehyde 탈수소 효소 활성 화학 물질의 억제에 결함. 리브의 RA 생산의 감소는, NLS보다 약간 더 심한리브 배아는 야생 유형의 DEAB 처리를 wt1a 표현의 완전한 폐기와 연결되어있는 동안 유사하게, NLS에게 돌연변이 배아를 개최보다 wt1a 성적 증명서의 약간 감소 염색을 표현하고있다.

제브라 피쉬 배아 발달 생물학 연구를위한 훌륭한 모델입니다. 배아 동안, 제브라 피쉬의 샘플 관찰 및 분석을위한 세 가지 차원의 과제를 제시하는 노른자 대량으로 개발할 수 있습니다. 이 프로토콜은 현장 (WISH) 스테인드 제브라 피쉬 배아 표본 전체 마운트의 2 차원 평면 장착 준비를 만드는 방법에 대해 설명합니다.

The zebrafish embryo is now commonly used for basic and biomedical research to investigate the genetic control of developmental processes and to model ...

본 절차의 전반적인 목적은 초기 발달 단계의 염색된 고정 제브라피쉬 배아를 더 잘 시각화하는 것입니다. 이는 먼저 C two hybridization의 home mount를 사용하여 제브라피쉬 배아를 염색함으로써 수행됩니다. 그다음, 플랫 마운트(flat mount)할 배아를 선택하고 미세 핀셋을 사용하여 난황에 중앙 절개를 가한 뒤, 래시 툴(lash tools)을 이용해 남은 난황 과립을 부드럽게 긁어내어 제거합니다.마지막으로, 시료의 적절한 이미징을 위해 배아를 글리세롤과 함께 슬라이드에 마운팅합니다. 결과적으로, 평면 마운팅(flat mounting)은 난황을 제거하고 배아를 2차원적으로 배치함으로써 염색된 배아를 등쪽 뷰에서 더 잘 시각화할 수 있게 해줍니다. 초기 발달 단계의 온전한 배아를 이미징하는 기존 방법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은, 평면 마운팅이 난황낭을 제거하여 배아 전체를 관찰할 수 있게 한다는 점입니다.이 방법은 배아 내 신장 전 성별 영역의 특성을 규명하는 것과 같이 발달 분야의 핵심 질문들에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 일반적으로 이 방법이 처음인 연구자들은 배아를 매우 섬세하게 다뤄야 하며, 난황낭을 제거하는 데 필요한 적절한 압력을 익히는 데 시간이 걸리기 때문에 어려움을 겪습니다. 본 절차의 시연은 Winger 실험실의 대학원생인 저와 Zoe, 그리고 Amanda가 진행하겠습니다.텍스트 프로토콜에 따라 배아를 수집, 고정 및 염색한 후, X-P-B-S-T 한 방울을 사용하여 평면 마운팅할 배아를 선택합니다. 배아를 플라스틱 또는 유리 페트리 접시로 옮깁니다. 그런 다음 접시를 실체 현미경 아래에 두고, 미세 핀셋을 사용하여 배아를 굴려 머리와 꼬리 끝이 모두 보이는 측면 모습이 되도록 조절합니다.다음으로, 미세 핀셋을 사용하여 배아를 고정하고, 다른 핀셋으로 배아의 머리와 꼬리 사이 중앙 위치의 난황에 절개창을 냅니다. 그 후 미세 핀셋으로 난황강 내의 난황을 긁어냅니다. XPBS 한두 방울을 사용하여 배아에 남아 있는 난황 찌꺼기를 씻어내십시오.배아를 평평한 유리 슬라이드로 옮깁니다. 배아가 유리 슬라이드에 평평하게 밀착된 상태를 유지하도록 버퍼의 가장자리로 끕니다. 배아를 고정한 상태에서, 래쉬 툴(lash tool)을 사용하여 복측 표면을 부드럽게 긁어내어 난황 과립을 제거합니다.PBST 용액에 과도한 난황이 섞여 혼탁해지거나 용액이 증발하기 시작하면, 새 용액을 1~2방울 추가하고 배아를 이 신선한 완충액으로 끌어당깁니다. 난황이 충분히 제거되면, 배아를 PBST가 담긴 페트리 접시로 조심스럽게 옮겨 최종 헹굼을 수행합니다. 그 후 배아를 100% glycerol이 담긴 페트리 접시로 옮겨 5분 동안 배양합니다.배아를 유리 슬라이드에 고정하려면, 100% glycerol 한두 방울이 떨어져 있는 깨끗한 유리 슬라이드로 배아를 옮깁니다. 이때 배아의 복측 난황 면이 유리 슬라이드 쪽을 향하도록 배치합니다. 래시 툴(lash tool)을 사용하여 배아를 glycerol 방울의 가장자리로 끌어당겨, 슬라이드에 밀착되어 평평한 상태를 유지하게 합니다.배아 축이 휘어 있는 경우, 미세 핀셋을 사용하여 남은 난황에 조심스럽게 작은 절개를 내어 장력을 완화함으로써 슬라이드 위에 평평하게 놓일 수 있도록 합니다. 18 by 18 유리 커버슬립의 네 모서리에 모델링 클레이를 소량씩 뭉쳐서 배치합니다.커버슬립을 배아 위에 천천히 올리되, 글리세롤 내에 기포가 최소화되도록 커버슬립의 각도를 조절합니다. 마지막으로, 유리 사이의 공간을 채우고 표본이 밀리는 것을 방지하기 위해 커버슬립 측면에 100% glycerol을 한 방울 더 추가하고, 실체 현미경 또는 복합 현미경을 사용하여 여기와 같이 이미지를 촬영합니다. 신장으로 발달하는 신장 전구세포를 표지하기 위해 두 가지 색상의 wish와 프로브 조합을 사용하였으며, 초기 배아를 평면 마운팅하였습니다.14 somite 단계에서 신장 전구세포는 빨간색으로 표시된 delta C를 동시에 발현하는 중간중배엽을 둘러싸고 PAX two A 전사체를 발현함으로써 U자형 패턴으로 구분됩니다. delta C를 C crox 20과 함께 이중 표지했을 때, delta C를 발현하는 신장 전구세포의 앞쪽 하위 도메인이 드러났습니다. 14 somite 단계에서 PAX two A, SLC four A four, SLC 12 A three, 그리고 S-M-Y-H-C one의 발현을 분석함으로써 PAX two A를 통해 전체 신장 전구세포 영역을 매핑할 수 있었으며, 앞쪽 하위 도메인의 세포 일부가 SLC four A four를 발현한다는 것을 확인했습니다.이는 SLC 12 A 3를 발현하는 신장 전구세포의 coddle 서브도메인과 겹치지 않았습니다. 이 그림에서, 레티노산 생합성에 필요한 Retinaldehyde dehydrogenase 2 유전자에 돌연변이가 있는 배아 또는 DEAB 및 ALD H 억제제로 처리된 배아는 각각 WT 1 A의 발현이 감소하거나 소실된 상태로 발달하였으며, 이는 flat mount 제작법을 이용한 2-color FISH가 기관 형성 과정 중 세포 도메인 연구에 유용함을 보여줍니다. 유전적 돌연변이가 있거나 화학적으로 저분자 화합물에 노출된 제브라피시에서 유용하며, 이 기술을 숙달하면 적절히 수행했을 때 10분에서 15분 정도 소요됩니다.이 절차 이후, 신장 분절의 경계가 어디에 위치하는지와 같은 추가적인 질문에 답하기 위해 이미징과 같은 다른 방법들을 수행할 수 있습니다. 영상을 시청한 후, 여러분은 난황을 제거하여 원하는 구조를 더 잘 시각화하기 위해 염색된 제브라피시 배아를 평면 장착(flat mount)하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

현장 하이브리드화의 전체 마운트 발달 생물학에서 가장 널리 사용되는 기법 중 하나입니다. 여기, 우리는 단일 유전자의 정확한 표현 패턴을 분석하는 두 유전자의 표현 도메인의 중복을 결정하는 현장 하이브리드화 프로토콜을 두 번 형광 높은 해상도를 제시한다. 우리는 조직 조직을 강조하기 위해 propidium 요오드화물 핵 카운터 얼룩이 포함됩니다.

Zebrafish 전체 마운트 고해상도 더블 형광등 현장에서 하이브 리다이 제이션

이 기사에서는 장기 이미징을 위해 살아있는 제브라피시 배아를 장착하는 방법을 설명합니다. 이 방법은 비용 효율적이며 도립 현미경에서 이미징하기 위해 일반 유리 바닥 현미경 접시를 사용하여 쉽게 수행할 수 있습니다. 장착은 서로 다른 농도의 아가로스 층에서 수행됩니다.

Layered Agar Mounting: 도립 현미경을 사용한 장기 이미징을 위한 살아있는 제브라피시 배아 준비

이 비디오는 저융점 아가로스를 사용하여 6웰 플레이트에 살아있는 제브라피시 배아를 장착하는 방법에 대한 단계별 지침을 설명합니다. 또한 살아있는 배아의 이미지를 획득하고 소프트웨어를 사용하여 분석하는 프로세스를 제공합니다.

한천 장착(Agar Mounting): 장기 이미징을 위해 살아있는 제브라피시 배아를 장착하는 기본 방법

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해부 및 제브라 피쉬 배아의 측면 장착 : 척수 개발의 분석

제브라 피쉬의 개발은 배아가 낮은 농도의 아가로 오스와 광학적으로 명확한 폴리머 튜브에 포함 된 빛 시트 현미경과 일에 따라 할 수있다.

다층 제브라 피쉬의 장기 라이트 시트 현미경에 장착

여기에서는 정상적인 발달을 방해하지 않고 살아있는 제브라피시 배아의 후체 발달을 장기간 타임 랩스 이미징할 수 있는 다목적 장착 방법을 제시합니다.

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속눈썹 개발 적절 한 organogenesis에 생명 이다입니다. 이 프로토콜 레이블을 하 고는 제 브라의 ciliated 셀을 시각화 하는 최적화 된 방법을 설명 합니다.

Multiciliated 셀 전체 마운트 형광 제자리에서 교 잡 및 면역 형광의 결합 된 프로토콜을 통해 Zebrafish에 시각화

이 문서에서는 연장된 시간 경과 공초점 현미경 검사법을 위해 깨지기 쉬운 제브라피시 배아를 장착하는 방법에 대해 설명합니다. 이 저가형 방법은 모든 반전된 현미경에 이미징을 위해 일반 유리 바닥 현미경 접시를 사용하여 쉽게 수행할 수 있습니다. 장착은 다른 농도에서 아가로즈의 층에서 수행됩니다.

전체 얼룩말 배아의 연장된 시간 경과 공초점 현미경 검사법을 위한 레이어형 장착 방법

여기에서, 우리는 zebrafish 배아 및 애벌레의 전체 준비에 있는 단백질의 형광 항체 중재한 검출을 위한 프로토콜을 제시합니다.

제브라피시 배아와 애벌레의 전체 마운트 면역항암화학

광시트 현미경을 사용하여 온전한 융모막 내에서 초기 제브라피시 배아를 이미징하기 위한 샘플 준비 전략이 설명되어 있습니다. 70% epiboly 및 bud 단계에서 배아가 융모막 내에서 획득하는 다양한 방향을 분석하고 광시트 시스템을 사용하여 배아 전체에서 세포 규모의 해상도를 얻기 위한 이미징 전략을 자세히 설명합니다.

Light Sheet Microscopy Imaging and Mounting Strategies for Early Zebrafish Embryos

배우세요 제브라피쉬 배아의 평면 마운트 기법으로 WISH 염색 후 요크를 제거하여 발달 단계의 구조를 명확히 관찰하는 방법입니다. 이 기술은 신장 전구체와 같은 세포 영역을 연구하는 데 필수적입니다.

전체 마운트하여 제브라 피쉬 배아 시편 스테인드 관찰 및 분석을위한 평면 마운트 준비

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