Name: 의 탐지를위한 동결 건조 루프 - 매개 등온 증폭 시약의 개발 Coxiella burnetii의 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-04-18T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 27 s
Description: 배우세요 동결 건조 LAMP 시약을 활용한 Coxiella burnetii 검출법으로, 저자원 환경에서 Q열 진단을 위한 신속하고 안정적인 분자생물학적 방법을 익히실 수 있습니다.

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이 연구는 해군 의료 연구 센터, 연구 작업 단위 6000.RAD1.J.A0310에 의해 지원되었다. 이 문서에 표현 된 의견은 저자의 것이며, 반드시 해군, 국방부, 또는 미국 정부의 부서의 공식적인 정책이나 입장을 반영하지 않습니다. 웨이 메이 칭은 미국 정부의 직원이다. 이 작품은 그녀의 공무의 일환으로 제조 하였다. 제목 17 USC §105은 &#39;이 제목에서 저작권 보호는 미국 정부의 모든 작업에 사용할 수 없습니다.&#39;고 제공 제목 17 USC §101은 그 사람의 공무의 일환으로 병역 구성원 또는 미국 정부의 직원에 의해 제조 된 작품으로 미국 정부의 작업을 정의합니다.

1. LAMP 반응에 대한 표준으로 플라스미드 DNA 희석 준비 <ol><li> DNA 농도 플라스미드 (C. burnetii RSA 493의 포함 대상 유전자 IS1111a)를 결정하기 위해 260 nm에서 광학 밀도 (OD)를 측정하는 분광 광도계를 사용합니다. (1)의 OD (260)는 DNA의 50 μg의 / μL 동일합니다. </li><li> 카피 수에 플라스미드 DNA의 양을 변환합니다. 플라스미드의 크기는 6,330 bp의이기 때문에,이 플라스미드의 분자량은 4.1 × 106 G (6330 BP X 649g / BP)이다. (단계 1.1 결정) 플라스미드 DNA의 농도는 34.2 NG / μL이다. 이 DNA 샘플 1 μL는 DNA의 5 × 10 9 사본 (34.2 × 10 -9 g / 4.1 × 10 6 GX 6.02 × 10 23)에 동일시, 플라스미드 DNA의 34.2 NG가 포함되어 있습니다. </li><li> 5 × 8 사본 DNA 샘플을 만들기 위해 10 배 희석 물을 90 μL로 플라스미드 DNA (5 × 109 카피 / μL)의 10 μL를 추가 / μL. </li><li> 반복 단계 1.3, 5 × 7의 DNA 샘플을 준비하기 위해 5 × 106, 5 × 105, 5 × 104, 5 × 103, 5 × 2, 5 × 10 1 5 X 10 0 사본 / μL. </li></ol> 2. LAMP 반응에 대한 샘플에서 DNA 템플릿을 준비 <ol><li> 제조사의 프로토콜에 따라 상업적 DNA 미니 키트를 사용하여 인간 혈장 시료로부터 DNA 추출을 수행한다. 추출에 200 μL 샘플의 전체를 사용하여 20 ㎕의 부피에서 추출한 DNA를 용출시킨다. </li></ol> 3. 배 LAMP 반응 버퍼를 준비합니다 <ol><li> 10 배 폴 버퍼 200 μL, 5 M 트리메틸 320 μL, M 황산 4,의 dNTP 혼합물의 280 μL (10 mM의 각) 및 물 188 ㎕의 2 배 LAMP 버퍼의 1 mL로 한 12 μl를 섞는다. 10 초 동안 펄스 텍싱에 의해 섞는다. </li></ol> 4. 표준 LAMP 반응을 수행 <ol><li> 배 LA의 12.5 μl를 혼합3 단계에서 제조 된 MP 완충액 (40 mM 트리스 - 염산 (PH 8.8), 20 mM의 KCl을 16 mM의 황산, 20 mM의 (NH4) 2SO4, 0.2 % 트리톤 X-100, 1.6 M 트리메틸 1.4 밀리미터의 dNTP 혼합물)의 프라이머 혼합물 1.2 μL, BST DNA 중합 효소 (8 U / μL) 1 μL, 및 0.2 ㎖의 PCR 용 튜브에 반응 혼합물 (20 μL)을 만들어 물 5.3 μL. </li><li> 20 ㎕의 반응 혼합물에 5 (1 단계 또는 2) DNA의 μl를 넣고 잘 섞는다. </li><li> 근접 튜브는 수조 또는 히팅 블록에 60 분 동안 60 ℃에서 배양한다. 이는 앞서 결정된 최적의 반응 온도이다. </li><li> 반응을 종료 10 배 겔 로딩 버퍼의 5 μl를 추가합니다. </li><li> 핵산 얼룩 인터 물들 2 % 아가 로스 젤에 반응 생성물의로드 5 μL. </li><li> 1X TBE 버퍼에서 35 분 동안 100 V에서 젤을 실행합니다. </li><li> 자외선에 의한 결과를 시각화합니다. </li></ol> 5. 재구성와 LAMP 반응을 수행시약 <ol><li> 10 배 폴 버퍼 125 μL, 5 M 트리메틸 200 μL, 1 M 황산의 7.5 μl를 혼합, 물 667.5 μL를 재구성 버퍼의 1 mL로한다. 10 초 동안 펄스 텍싱에 의해 섞는다. </li><li> 밀봉 된 알루미늄 호일 가방에서 동결 건조 된 시약을 포함하는 튜브를 제거합니다. 알루미늄 박 백이 밀폐되지 않으면 튜브를 사용하지 않는되거나 손상된 경우. </li><li> 동결 건조 된 시약을 다시 중단 각각의 튜브에 재구성 버퍼의 20 μl를 추가합니다. </li><li> 버퍼 위아래로 5 회 피펫 팅하여 섞는다. 동결 건조 된 시약을 완전히 재현 탁하고 있는지 확인하기 위해 살펴 보자. 백색 분말은 튜브에 사라집니다. </li><li> 재구성 된 시약 (1 단계 또는 2에서) DNA 템플릿의 5 μl를 넣고 잘 섞는다. </li><li> 근접 튜브는 수조 또는 히팅 블록에 60 분 동안 60 ℃에서 배양한다. </li><li> 반응을 종료 10 배 겔 로딩 버퍼의 5 μl를 추가합니다. </li><li> 로드 반응의 5 μL핵산 얼룩 인터 물들 2 % 아가 로스 젤 제품. </li><li> 1X TBE 버퍼에서 35 분 동안 100 V에서 젤을 실행합니다. </li><li> 자외선에 의한 결과를 시각화합니다. </li></ol> 6.에서 재구성 버퍼 HNB 또는 형광 인터 염료 함유으로 LAMP 반응을 수행 <ol><li> 10 배 폴 버퍼 125 μL, 5 M 트리메틸 200 μL, 1 M의 7.5 μl의 황산, 20 mM의 HNB (또는 100 배 형광 인터 염료의 12.5 μL) 660 μL (또는 655 μL)의 물에 7.5 μl를 혼합 재구성 버퍼 1 ㎖를 확인합니다. 10 초 동안 펄스 텍싱에 의해 섞는다. </li><li> 5.6 - 단계 5.2를 반복 섹션 6에서 제조 재구성 된 버퍼를 사용합니다. </li><li> 육안에 의한 결과 (HNB 함유 반응) 또는 UV 등 (인터 형광 염료를 함유하는 반응)을 시각화. </li></ol> 7. 튜브 스캐너와 실시간 LAMP 반응을 수행 <ol><li> reconstitut에 DNA μL 5 추가형광 인터 염료, 가까운 튜브를 포함하는 튜브 스캐너에 삽입 에드 시약. </li><li> 60 ° C에서 설정 배양 온도. 60 분 동안 520 nm에서의 형광을 측정한다. </li></ol>

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</ol>

저자는 공개 아무것도 없어.

이전에, 우리는 삽입 요소 IS1111a (14) 대상으로 민감하고 특정 LAMP 분석을 개발했다. 그것은 매우 C.의 다른 균주 사이에서 보존되어 있기 때문에 IS1111 소자 선택한 burnetii와 박테리아의 사본의 높은 번호 (110-7) (클레 2006). 우리의 결과는 LAMP가 Coxiella DNA의 적은 하나 염색체 사본에 상관 관계가있다 IS1111 요소의 약 25 복사본을 감지 할 수있는 것으로 나타났다. 본 연구에서는 BST DNA 중합 효소, LAMP 프라이머 및 dNTPs를 동결 건조하고 압축 된 알루미늄 호일 가방에 포장. 이 동결 건조 된 시약의 감도는 25 사본 유지; 적어도 하나의 월의 새로 제조 한 시약 유사한 RT에 저장 될 때. 알루미늄 호일 가방이 제대로을 열기 전에 봉인되어 있는지 확인하는 것이 매우 중요합니다. 알루미늄 박 백이 밀폐되지 않으면 튜브를 사...

작은 그람 음성 박테리아 Coxiella burnetii는 전 세계적으로 인수 공통 전염병 인 Q 열병의 원인 물질이다. 때문에 Q 열병의 전세계 유통 및 C의 높은 감염에 burnetii는 해외 배치 미군과 민간인은 발병 지역에서 감염 될 위험이 있습니다. 급성 및 만성 감염 : Q 열병은 두 가지 형태로 나타난다. Q-급성 발열 독감 유사 증상, 간염, 폐렴 자체를 제공하고, 일반적으로 낮은 사망률 자기 한정 질환이다. 만성 Q-열이 덜 유행하면서, 자주 1,2 방치하면 훨씬 더 높은 사망률을 가지고 심내막염, 발생합니다. 따라서 조기 진단 적절한 치료가 환자 치료에 중요 안내합니다. 중합 효소 연쇄 반응 (PCR) 및 실시간 정량 PCR (qPCR에) 분석법 C. 검출을 위해 개발되어왔다 세포 배양 및 임상 샘플 3-5 &lt;에 burnetii DNA/ SUP&gt;. PCR 및 qPCR에 모두 비용과 일상적인 작업을위한 자원이 제한된 지역에서 자주 쉽게 사용할 수 없습니다. 원래 Notomi 6 설명, 루프 - 매개 등온 증폭 (LAMP)는 다른 DNA 증폭 방법을 제공합니다. LAMP은 표적 유전자의 적어도 6 독립 영역을 인식 특별히 설계된 프라이머 세트와 함께 나선 치환 DNA 합성 BST DNA 중합 효소를 사용한다. LAMP의 가장 중요한 장점은 증폭 등온 조건에서 발생한다는 것이다. 따라서, 단지 수욕 가열 블록 또는 인큐베이터가 필요하다. 이 방법은 여러 리케차 7-9 병원균을 검출하기 위해 사용되어왔다. 겔 전기 영동에 의해 증폭 된 DNA 제품의 시각화에 의한 비특이적 증폭 오탐 (false positive)에서 진정한 양성을 차별화 할 수있는 가장 정확한 방법입니다. 그러나 겔 전기 영동에 관련된 절차 리소스 제한 AR위한 실용적이지 않다EAS. 몇몇 다른 방법이 반응 생성물을 검출하기 위해 개발되었다. 피로 인산 마그네슘을 형성 (10) 또는 인터 형광 염료를 사용하여 유도 된 탁도 11,12 UV 광 하에서 가시화 될 수 등이 대안은 겔을 실행하는 것보다 더 유리하다. Q 열병이 발병 13 곳 열대 및 아열대 국가에서 주위 온도가있는, 25 ° C, 37 ° C에서 보관하면 램프 시약은 1 개월 안정적이었다. 램프와 분석은 C.의 존재를 검출하기 위해 실험실에서 개발 된 플라즈마 샘플 14 burnetii. 여기서 우리는 동결 건조 된 시약의 LAMP 반응 혼합물의 제조를위한 간단한 프로토콜을 설명한다. 실온에서 저장 될 때 동결 건조 된 시약은 1 개월 안정하다. 쉽게 시각화 방법과 결합 될 때, 이는 C. 검출에 사용하는 이상적인 방법은 자원 제한 설정에서 burnetii.

<table><tbody><tr><td>LAMP 프라이머</td><td>Eurofins MWG 오페론</td><td>10 nmol, 무염</td><td>고객이 설계한 염분</td></tr><tr><td>Bst DNA 중합효소</td><td>New England Biolabs</td><td>M0275L</td><td>8 units/ml</td></tr><tr><td>10x Thermo pol buffer</td><td>New England Biolabs</td><td>B9004S</td><td></td></tr><tr><td>dNTP 혼합물</td><td>New England Biolabs</td><td>N0447L</td><td>10 mM each</td></tr><tr><td></td><td>Betaine Sigma-Aldrich</td><td>B0300</td><td>5M, 트리메틸글리신</td></tr><tr><td>마그네슘 황산염</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M3409-1ML</td><td>1 M</td></tr><tr><td>10x Bluejuice</td><td>Invitrogen</td><td>10816-015</td><td>겔 로딩 버퍼</td></tr><tr><td>SYBR green</td><td>Invitrogen</td><td>S7585</td><td>10,000x, 튜브에서 제품 시각화</td></tr><tr><td>GelRed</td><td>Phoenix Research Products</td><td>RGB-4103</td><td>10,000x, 겔 내 제품 시각화</td></tr><tr><td>동결 건조 시약</td><td>유전자 도달</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hydroxynaphthol blue</td><td>Fluka</td><td>33936-10G</td><td></td></tr><tr><td>ESE퀀트 튜브 스캐너</td><td>Qiagen</td><td></td><td>실시간 감지</td></tr></tbody></table>

의 탐지를위한 동결 건조 루프 - 매개 등온 증폭 시약의 개발<em&gt; coxiella burnetii의</em

The Development of Lyophilized Loop-mediated Isothermal Amplification Reagents for the Detection of Coxiella burnetii

Coxiella의 burnetii는 Q 열병을 일으키는 원인이되는 에이전트는 의무적 세포 내 세균이다. PCR 기초 진단 분석법 C. 검출을 위해 개발되어왔다 세포 배양 및 임상 시료에서 burnetii DNA. PCR은 특수 장비와 다양한 최종 사용자 교육을 필요로하며, 따라서, 특히 자원이 제한된 지역에서 일상적인 작업에 적합하지 않습니다. 우리는 C.의 존재를 검출하는, 루프 - 매개 등온 증폭 (LAMP) 분석법을 개발 환자 샘플에서 burnetii. 이 메소드는 수조 또는 히팅 블록에 60 ° C의 주위에 하나의 온도에서 수행된다. 이 LAMP 분석의 감도는 반응 당 25 카피의 검출 한계 PCR 매우 유사하다. 이 보고서는 동결 건조 된 시약 및 hydroxynaphthol 청색 (HNB) 또는 반응 인터 형광 염료와 UV 램프를 사용하여 결과를 시각화하여 반응의 제조를 설명한다. 램프 시약은 lyophili했다평탄화 및 검출 감도의 손실없이 한달 동안 실온 (RT)에 저장된다. 반응 혼합물을 준비 복잡한 단계를 포함하지 않기 때문에이 LAMP 분석법이 특히 강하다. 이 방법은 Q 열병이 발병 자원 제한 설정에서 사용하기에 이상적이다.

0.2 ML 튜브 내부의 동결 건조 램프 시약은 BST DNA 중합 효소, 프라이머, 및 dNTPs를 포함되어 있습니다. 재구성 버퍼의 20 μl를 다시 일시 동결 건조 된 시약에 사용된다. (1)가 새로 제조 한 시약 및 동결 건조 시약 아가 로스 젤에 LAMP 반응 결과를 보여줍니다. 동결 건조 된 시약의 활성을 감소하지 않습니다. DNA 주형.도 2의 25 카피를 검출 할 수있는 양의 시약에 의해 제조 LAMP 반응은 HNB 또는 반응에 존재하는 인터 형광 염료와 반응 생성물의 검출을 나타낸다. 반응에 HNB의 첨가 반응에 존재하는 DNA 템플릿의 25, 50, 100 사본 파란색 보라색에서 시각적 색상 변화를 생성합니다. 반응 인터 형광 염료를 포함하는 것이 DNA 템플릿 25, 50, 100 카피가 존재하는 자외선 강한 형광 신호를 나타낸다. 튜브 스캐너...

여기에서는 환자 샘플에서 C. burnetii를 검출하기 위해 동결건조 시약을 사용하는 간단한 루프 매개 등온 증폭(LAMP) 방법을 설명했습니다.

의 탐지를위한 동결 건조 루프 - 매개 등온 증폭 시약의 개발<em&gt; Coxiella burnetii의</em

Coxiella burnetii, the agent causing Q fever, is an obligate intracellular bacterium. PCR based diagnostic assays have been developed for detecting C. ...

본 실험의 전반적인 목표는 환자 검체 내 C.burnetii 검출을 위해 동결 건조 시약을 이용한 간편한 LAMP법을 개발하는 것입니다. 이 프로토콜의 주요 장점은 시약 보관을 위한 냉동 보관이 필요하지 않다는 점입니다. 이 방법은 Q열이 풍토병인 자원 제한 지역에서 사용하기에 이상적입니다.우리 실험실의 기술자인 Tatiana가 절차를 시연하겠습니다. C.burnetii RSA493의 표적 유전자인 IS1111a DNA를 사용하여, 260 nanometers에서 분광광도계로 플라스미드 농도를 측정합니다. 다음 계산식을 사용하여 플라스미드 DNA 농도를 복제 수로 변환합니다. 여기서 6330은 플라스미드의 길이와 염기쌍 수를 나타내며, 34.2 nanograms per microliter는 방금 분광광도계를 사용하여 측정한 플라스미드의 농도입니다.그 다음, 마이크로리터당 다음의 카피 수가 되도록 플라스미드를 8~10배 연속 희석하여 준비합니다. LAMP 반응을 위한 DNA 템플릿을 준비하려면, 200 µL의 인간 혈장 샘플을 사용하여 DNA miniprep kit의 제조사 프로토콜에 따라 DNA를 추출합니다. 최종 샘플을 20 µL 부피로 희석합니다.다음 시약들을 혼합하여 2x LAMP 반응 버퍼 1 milliliter를 준비합니다. 10초 동안 펄스 볼텍싱으로 혼합합니다. 표준 LAMP 반응을 수행하려면, 0.2 milliliter PCR 튜브에 2x LAMP 버퍼 12.5 microliters, 프라이머 믹스 1.2 microliters, Bst DNA polymerase 1 microliter, 그리고 물 5.3 microliters를 혼합합니다.다음으로, 20 µL의 반응액에 5 µL의 DNA를 추가하고 잘 혼합한 후, 항온수조 또는 히팅 블록에서 60 °C로 60분 동안 배양합니다. 배양이 끝나면 튜브에 10x gel loading buffer 5 µL를 첨가하여 반응을 종료시킵니다. 그런 다음, 핵산 삽입 염색제로 염색된 2% agarose gel에 반응 생성물 5 µL를 로딩합니다.1x TBE에서 100V로 35분 동안 겔 전기영동을 수행한 후, UV 램프를 사용하여 결과를 시각화하십시오. 재구성된 시약을 사용하여 LAMP 반응을 수행하려면, 다음 시약들을 혼합하여 1mL의 재구성 버퍼를 준비하십시오. 10초 동안 펄스 보텍싱하여 혼합하십시오.다음으로, 밀봉된 알루미늄 호일 백에서 동결건조 시약이 들어 있는 튜브를 꺼냅니다. 단계 4.2에서는 백을 열기 전에 알루미늄 호일 백이 제대로 밀봉되어 있는지 확인하는 것이 매우 중요합니다. 알루미늄 백이 밀봉되어 있지 않거나 손상된 경우 튜브를 사용하지 마십시오.각 시약 튜브에 reconstitution buffer 20 µL를 넣고 피펫팅을 5회 반복하여 섞어줍니다. 동결 건조된 시약이 완전히 재현탁되었는지 확인하십시오. 그 후, 재현탁된 시약에 DNA template 5 µL를 넣고 잘 섞어줍니다.항온수조 또는 히팅 블록에서 60 °C로 60분 동안 배양합니다. 배양 후 반응을 종료시키기 위해 10x 젤 로딩 버퍼 5 µL를 첨가한 다음, 반응 생성물 5 µL를 핵산 삽입 염색약으로 염색된 2% agarose 젤에 로딩합니다. 1x TBE 버퍼에서 100 V로 35분 동안 전기영동을 수행한 후, UV 광선을 통해 결과를 시각화합니다.hydroxynaphthol blue(HNB) 또는 인터칼레이팅 염료를 이용해 LAMP 반응을 수행하려면, HNB 또는 형광 인터칼레이팅 염료가 포함된 다음 시약들을 혼합하여 1 milliliter의 재구성 버퍼를 준비하십시오. 10초 동안 펄스 보텍싱하여 혼합합니다. 앞서 설명한 대로 LAMP 반응을 수행하고, UV 광원 또는 육안으로 결과를 확인하십시오.튜브 스캐너를 사용하여 LAMP 반응을 수행하려면, 형광 삽입 염료가 포함된 재구성된 시약에 5 µL의 DNA를 첨가한 후 닫힌 튜브를 튜브 스캐너에 삽입하십시오. 배양 온도를 60 °C로 설정하고 60분 동안 520 nm에서 형광을 측정하십시오. 이 그림은 갓 제조한 시약과 동결 건조된 시약을 사용한 아가로스 겔 상의 LAMP 반응 결과를 보여줍니다.동결건조된 시약이 활성을 유지하는지 관찰하십시오. 두 시약으로 준비된 LAMP 반응 모두 25 copies의 DNA 템플릿을 검출하였습니다. 이 그림에서는 HNB 또는 형광 인터칼레이팅 염료를 이용한 반응 생성물의 검출 결과가 나타나 있습니다.반응액에 HNB를 추가하면 DNA 템플릿이 25, 50, 100 copy 포함된 반응에서 보라색에서 파란색으로의 시각적 색상 변화가 나타납니다. 또한, 반응액에 형광 인터칼레이팅 염료를 포함시키면 유사한 DNA copy 수가 존재할 때 UV 광원 하에서 강한 형광 신호가 나타납니다. 여기에는 형광 인터칼레이팅 염료를 사용하여 튜브 스캐너로 형광 신호를 실시간으로 모니터링한 결과가 제시되어 있습니다.반응액에 DNA 템플릿이 각각 10^6, 10^4, 10^3, 100 copy 포함된 경우, 14, 18, 21, 23분 후에 형광 신호가 기선(baseline) 위로 나타납니다. 숙달되면 이 절차는 90분 이내에 완료할 수 있습니다. 본 분석법은 개발 이후 자원이 제한된 지역에서 Coxiella burnetii 감염을 빠르게 진단할 수 있는 길을 열어주었습니다.이 영상을 시청하고 나면 동결건조된 LAMP 시약을 재구성하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다. 환자 검체는 감염성이 있을 수 있으므로, 이 절차를 수행하는 동안 항상 안전 예방 조치를 취해야 함을 잊지 마십시오.

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Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

출처: 돔슬, K. J. 외. 동물성 식품 내 살모넬라 선별과 배양 분리 확인을 위한 루프 매개 등온 증폭.  J. Vis. 경험 (2020).이 영상은 일정한 온도에서 DNA를 증폭하여 목표 박테리아 유전자를 검출하는 루프 매개 등온 증폭(LAMP) 기법을 시연합니다. 반응 혼합물은 등온 마스터 믹스, 표적 유전자에 대한 특정 프라이머, DNA 주형이 포함된 샘플을 첨가하여 준비됩니다. 증폭은 LAMP 기기에서 시작되며, 실시간 형광 모니터링을 통해 표적 유전자의 존재를 확인합니다.

박테리아 유전자 검출을 위한 루프 매개 등온 증폭

이 비디오는 배양된 상피 세포 내에서 GFP 태그가 지정된 Coxiella 돌연변이의 세포 내 성장을 평가하는 방법을 보여줍니다. 돌연변이 표현형은 면역염색 및 형광 현미경을 사용하여 시각화되어 세포 내 성장에 대한 돌연변이의 영향을 연구할 수 있습니다.

진핵 세포 내 Coxiella 돌연변이의 세포 내 성장 평가

닭의 Eimeria 감염 진단은 여전히 까다롭습니다. 기생충 형태학 및 숙주 병리학 주도 접근법은 일반적으로 결론을 내리지 못하는 반면, PCR을 기반으로 하는 분자 접근법은 비용과 전문성 면에서 까다로운 것으로 입증되었습니다. 이 프로토콜의 목적은 루프 매개 등온 증폭(LAMP)을 eimerian 감염에 대한 간단한 분자 진단으로 확립하는 것입니다.

의 종 특이 검출을위한 루프 - 매개 등온 증폭 (LAMP) 분석 실험<em&gt; 에이 메리아</em&gt; 닭을 감염이

Provided는 열 순환기 또는 현미경 및 스테이지 히터를 사용하여 DNA 샘플의 초기 농도를 정량화하기 위한 실시간 재조합효소 중합효소 증폭 분석을 개발하기 위한 프로토콜입니다. 또한 내부 양성 대조군의 개발도 설명되어 있습니다. 원시 실시간 형광 데이터를 처리하기 위한 스크립트가 제공됩니다.

내부 양성 대조군과 양적 재조합 효소 중합 효소 증폭 분석 개발

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세대와의 멀티 표현형 높은 콘텐츠 상영<em&gt; Coxiella burnetii의</em&gt; 트랜스포존 돌연변이

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배우세요 동결 건조 LAMP 시약을 활용한 Coxiella burnetii 검출법으로, 저자원 환경에서 Q열 진단을 위한 신속하고 안정적인 분자생물학적 방법을 익히실 수 있습니다.

의 탐지를위한 동결 건조 루프 - 매개 등온 증폭 시약의 개발

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