Name: 리듬-액티브의 준비 체 외 신생아 설치류 Brainstem-척수와 얇은 슬라이스 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-03-23T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 32 s
Description: 학습하세요 설치류 뇌간 절제 및 슬라이스 제작 방법으로 호흡 신경 회로를 연구하세요. 이 기술은 전기생리학 기록을 위한 생존 가능한 뇌 조직을 재현 가능하게 준비하여 호흡 조절 메커니즘을 이해하는 데 필수적입니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

S.B.P은 Loma Linda 대학 여름 학부 연구 화목의 받는 사람입니다.

다음 프로토콜 허용 되어 있으며 기관 동물 관리 및 사용 위원회 (IACUC) Loma Linda 대학에 의해 승인. 동물의 윤리적인 처리를 위한 NIH 가이드라인은 실험실에서 수행 하는 모든 동물 실험에서 따 랐 다. 모든 윤리는이 프로토콜을 수행 하는 개인에 의해 확정 했다.
1입니다. 솔루션
<ol><li>
인공 뇌 척추 액체 (실제)을 준비 합니다.
	<ol>
<li>신선한 실제 1 L 일괄 처리는 다음을 사용 하 여 실험 하기 전에 저녁 준비 제조 법: 7.250 g NaCl (124 m m), 0.224 g KCl (3mm) 2.100 g NaHCO3 (25 m m), 0.069 g NaH2포4 • H2O (0.5 m m), 0.247 g MgSO4 • 7 H2 O (1.0 m m), 그리고 5.410 g D-포도 당 (30mm) 0.221 g CaCl2 • 2 H2O (1.5 m m). 항상 마지막 CaCl2 • 2 H2O를 추가 합니다.</li>
		<li>이온을 제거 된 물 1 L에 구성 요소를 분해. 20-30 분 저 어.</li>
		<li>실제의 pH를 측정 하 고 7.40 ± 0.02로 조정 작은 볼륨을 사용 하 여 (일반적으로 < 0.5 mL) 희석 NaOH, KOH, 또는 HCl의. 참고: 준비 된 실제 냉장고 (4 ° C, pH 7.40 ± 0.02)에 3 일 전에 세균 성장에 영향을 미치는 실험 동안 조직의 생존을 저장할 수 있습니다. 0.2 µ m 필터를 사용 하 여 이후 실험 36 h까지 지속 될 수 있다 균 류 또는 박테리아는 실험실에 의해 오염 줄이기 위해. 효율성을 위해 설명 실제 제조 법 4 L 배치 다음과 같은 프로토콜 조절 수 있습니다 그리고이 볼륨의 실험까지 3 일 동안 지속 됩니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2입니다. 해 부 및 Vibratome 장비 준비
<ol><li>
블레이드를 설정 합니다.
	<ol>
<li>vibratome에 절단 조직에 대 한 신선한 양 날 면도날을 사용 합니다. 100% 에탄올과 블레이드를 세척 하 고 절단 또는 반 블레이드 스냅 및 장착 블레이드 삽입 클램프는 vibratome에 전에 이온된 물으로 린스.</li>
		<li>때마다 새로운 조직 준비 부 러 뜨 리 vibratome에 장착 하거나 자르는 동안 파라핀 석판으로 인하 하는 경우 블레이드를 변경 합니다. 파라핀 잔여물은 신생아 신경 조직을 통해 깔끔하게 잘라 거의 불가능 하 게 됩니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
파라핀 왁 스 슬 래 브를 설정 합니다.
	<ol>
<li>어떤 포함 스타일 파라핀 왁 스를 사용 합니다. 열에 강한 유리 비 커에 미디어를 포함의 10 g을 배치 하 고 낮은 열을 사용 하 여 녹아 액체 파라핀 왁 스 구슬.</li>
		<li>흑연 분말의 약 0.5 g을 추가 하 고 액체 파라핀으로 솔루션을 철저 하 게 하 고 균일 하 게 혼합.</li>
		<li>기판으로는 파라핀에 대 한 작은 플라스틱 슬 래 브를 사용 합니다. 플라스틱의 작은 (0.5-1 ㎝ 두께 약 2 cm2 넓은 x 2) 조각을 삭감 (폴 리카 보 네이트 또는 알루미늄도 사용할 수 있습니다). 기계공의 파일 스크래치 홈을를 사용 하 여 플라스틱 asthis에서 파라핀 플라스틱에 준수 보장에. 참고: 또는 온수 18 G 피하 주사 바늘을 사용 하 여 파라핀 흑연 혼합물은 플라스틱에 부합 되도록 시트에 각된 구멍을 배치.</li>
		<li>목화 제보 주걱의 뒷면을 사용 하 여 반복적으로 녹은 파라핀-흑연 혼합물으로 주걱을 찍기, 떨어지는 플라스틱 블록에 슬러리 및 건물에 파라핀 흑연 플라스틱에 파라핀 흑연 혼합물을 똑 플라스틱 위에 두께 약 1.5 c m.</li>
		<li>파라핀-흑연 혼합의 충분히 두꺼운 층 블록에 입금 됩니다, 일단 냉각 하 고 다음 brainstem 척수에 맞게 모양 블록 옆으로 설정 합니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. 해 부의 및 절연은 Neuraxis
<ol><li>초기 해 부 및 anesthetization을 수행 합니다. 참고: 이 연구에 사용 된 동물 데 생 후 10-20, 쥐 또는 쥐 E18에서 출생 후 일에 이르기까지 배아 하루 18 (E18)에서 크기에서 범위 수 있습니다 5/6. 쥐 또는 쥐 긴장, 치료, 또는 성별 사용할 수 있습니다, 실험적인 디자인에 따라. Isoflurane (25 mL 챔버에 0.25 mL) 사용은 마 취와 증기 두건 아래 예비 해 부를 수행 합니다.<ol>
<li>강아지의 무게를 다음 isoflurane에 거 즈의 2 인치2 조각 x 2의 0.25 mL를 포함 하는 마 취 약 실에 넣습니다. 동물 (아니 철수 반사와 발가락 핀치에 의해 확인) 마 취의 수술 평면에 도달 하면, 핀 페 트리 접시에 동물 파라핀 또는 실리콘 탄성으로 가득 합니다. 참고: Cryoanesthesia13,14, isoflurane 증발15를 통해 또한 신생아 설치류를 취 수 또는 주입16 평형 산소.</li>
		<li>동물 복 부 측을 아래로 두십시오 고 중간 절 개를에서 바로 눈 뒤에 중간 요 추 지역에 척추의 숫자 10 또는 11 메스 블레이드 또는 수술가 위. 피부를 반영 하 고 정수 리/후 두 봉합의 수준에서 동물 decerebrate ( 그림 1참조) 하 고 횡 경 막 아래 동물 transecting 피부를 제거. 그런 다음가 위 또는 메스 어깨 관절에서 절단 하 여 무기를 제거 합니다.</li>
		<li>일단 피부 제거, 동물 실리콘 elastomerin 추가 해 부 및 brainstem 척수의 준비에 대 한 아래쪽으로 관류 챔버에 전송.</li>
		<li>냉장 (4 ° c, pH 7.40 ± 0.02) 실제 저수지 (500 mL 사이드 포트 병)을 지속적으로 거품 실제 95% O2 , 5% CO2 ("carbogen" 라고도 함)의 혼합물으로 산화 하는 고. 해 부, 동안 냉장된 실제 사용 하 여 주기적으로 플러시 brainstem 척수의 격리를 통해 신선한 산소 실제를 제공 하는 챔버. 참고: 적혈구는 나머지 동맥과 정 맥에서 볼 수 있습니다 그리고 때 충분히 산소, 이들은 밝은 빨강.</li>
		<li>하 중력 흐름 관류를 통해 튜브와는 자 지를 일시적으로 사용 하거나 지속적으로 산소 실제 (bolus 볼륨 또는 통해 느린 똑은 자 지, 약 0.5-1.0 mL/min를 사용 하 여)와 조직 perfuse. 이 조직 산화 제 고 분명 수술 필드를 유지 합니다.</li>
		<li>진공 흡입 여과 시스템에서 필요에 따라 과잉 체액을 제거 합니다.</li>
		<li>절 개 해 현미경을 사용 하 여 수행 합니다. 지속적인 확대 모델 확대의 정밀한 조정을 허용 하는 해 부의 각 단계 동안 관심 영역의 최적의 시각화 선호 된다. 참고: 미세 도구 권장 이빨된 조직 집게, 무뚝뚝한 겸 자, #5 집게, 각된 티슈 포 셉, 범위를 포함 한 다양 한 마이크로 해 부가 위 (봄이 위), 그리고 일반 곤충과 마이크로 해 부 핀.</li>
		<li>따라 화살 봉합 두개골의 중간 라인 섹션을 통해 뇌를 노출 그리고 마이크로 해 부 핀 반사 플랩 아래 핀 27 G를 사용 하 여 해 부 챔버의 실리콘 커버 하단에 꼬리 끝에 척추를 고정 바늘입니다. 참고: 해 부의 나머지는 해 부 현미경을 조직 및 brainstem의 두개골 rootlets 및 척추 rootlets 리듬 움직이다 출력을 얻기의 최대 가능성을 보장 하는 데 사용 하는 건축물의 깨끗 한 보기를 제공 하기 위해 필요 합니다. 매체 봄이 위 또는 아이리스가 위 및 미세 집게를 사용 하 여 해 부의 다음이 단계를 수행 합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>동물의 고립 된 트렁크 화난된 해 부 챔버를 신속 하 게 전송. 상공 회의소의 전면에 직면 하 고 rostral 끝 (뇌)와 조직 등 사이드를 놓습니다. 핀 어깨와 척수의 대부분 꼬리 끝에 조직.
	<ol>
<li>외피와 brainstem 밑에 두개골의 손상을 방지 하려면 정수 리 봉합 다음 두개골을 통해 절 개를 중간에 화살을 확인 합니다. 참고: 신생아 뼈 조직 이다 하지 완전히 석 회화 이며 매우 취 성. 뼈/조직 정도, 유연 하지만 주변 결합 조직과 근육 보다 강하다는 것입니다.</li>
		<li>매체 봄 또는 홍 채가 위를 사용 하 여 화살 봉합에서 시작 하 고 노력 하 고 옆으로 두개골의 후 두 봉합을 싹 둑. 이 두개골을 반영 하 고 두개골의 rostral 부분을 고정 하 고 조직에 몇 가지 안정성을 제공 하는 고정 된 수의 "날개"를 만들 것입니다 ( 그림 2A참조).</li>
		<li>대뇌 피 질의 나머지를 잘라 두개골 플랩 반영 후 소 뇌 (vermis) 상대적으로 그대로의 꼬리 부분 (그림 2B) 떠난다.</li>
	</ol></li>
	<li>등 쪽 laminectomy를 수행 합니다.
	<ol>
<li>두개골 및 척추 열 마이크로 봄이 위와 집게를 사용 하 여 근육을 제거 합니다. 그대로 흉 곽, 복 부 laminectomy, 척수 손상의 기회를 최소화 하는 동안 조직 앵커 나중 고정 됩니다이 흉 곽의 등 쪽 측에 따라서 조직을 제거 합니다.</li>
		<li>신중 하 게 중간 봄이 위 또는 정밀한 아이리스가 위를 사용 하 여 척추 하기의 측면 프로세스를 떨어져 싹 둑. 멀리 어떤 조직 overlying 폰 스 및 모 수 컷. Vermis, 소 뇌, 폰 스, 및 척수의 시작은 지금 명확 하 게 보이는 (그림 2C) 됩니다 합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>복 부 laminectomy를 수행 합니다.
	<ol>
<li>조직 등 쪽을 거절 하 고 흉 곽과 척추의 가장 꼬리 끝에 핀. 두개골 플랩 (그림 3A)를 사용 하 여 조직의 rostral 측을 고정 합니다.</li>
		<li>흉 곽, 흉 골 및 동일한가 위와 집게를 사용 하 여 모든 복 부 장기 등의 복 부 절반을 제거 합니다. 흉 곽 갈비와 척수 (그림 3B) 노출에 연결 된 멀리 부드러운 조직 해 부.</li>
		<li>혀, 식도, 기관지, 후 두, 그리고 모든 다른 부드러운 조직 및 근육 (로 그림 3C에서 본) 두개골 및 척추의 기지를 overlying 제거 합니다.</li>
		<li>하드 팔레트 overlying 조직 해 부. (그림 3C)에 V 모양의 들여쓰기와 두개골의 기지에 뼈의 사각형 접시를 찾아서 하드 미각을 확인 합니다. 미각의 중간 선 따라, 조심 스럽게 위쪽으로 리프트 잘라내어 제거 합니다(그림 4)를잘라 가로 수행.</li>
		<li>그림 4B에서 보듯이 약 흉부 척추 7 (T7)을 첫 번째 자 궁 경부 척추에서 brainstem 그리고 척수의 복 부 표면 노출 하기를 제거 하 여 복 부 laminectomy를 시작 합니다.</li>
		<li>이 단계에서 복 부 rootlets 표시 됩니다. 만들고 상처를 하기에 가까운 뿌리의 근원에서 멀리 가능한; 척수에 주의 using 작은 마이크로 해 부 또는 봄이 위, 뿌리를 스트레칭 하지 마십시오.</li>
		<li>캡처를 하기에서 척추의 양쪽을 따라 5-10 mm. 자르지 않는다 너무 가까이 척수 또는 척추. 이 단계에는 척수를 폭로 자 궁 경부 척추의 제거 수 있습니다. rootlets 절단 하지 마십시오.</li>
		<li>(양측) 척추 (약 T7) 따라 rootlets 약 20-25 m m를 캡처. 이 절차를 통해 척수에 절단을 방지 하 고 그림 4C에서 보듯이 척추의 가장자리를 조작 합니다.</li>
		<li>신중 하 게 운동 각 척추의 rostral 가장자리와 밀접 하 게 뼈 아래 캡처 C1, C2, c 3를 제거 합니다. 뼈를 잘라 만든 것입니다, 더 이상는 rootlet에 가까운. 사용 하 여 연결 또는 겸 인하 (그림 4C)를 만드는 동안 각 자 궁 경부 척추에 확고 한 그립을 달성을 돕기 위해 구 부 러.</li>
		<li>척수의 원하는 길이로 절연 척추 칼럼에서 해 부 일단 가로 상처 (그림 5A 및 그림 5B) 척수를 제거를 확인 합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>Dura mater를 제거 합니다. 참고: 앞에서 설명한3,7되었습니다 일괄적 생체 외 녹음에 격리 brainstem 척수를 사용할 수 있습니다. Brainstem-척수 척추 칼럼에서 제거와 함께 경질 흡입 전극 두개골과 척추 컷에서 녹음을 수행을 위한 최적의 액세스 rootles 제공 하기 위해 제거 되어야 합니다. 또한, 경질의 제거 깔끔하게 brainstem를 슬라이스 하 고 생체 외 녹음 컬 활성 얇은 슬라이스를 얻을 수 있습니다.<ol>
<li>신중 하 게 격리 brainstem 척추는 두개골을 둘러싼 경질에 대 한 액세스를 허용 하도록 최대 조직 등 쪽 코드 핀 (그림 5B) rootles. 핀의 brainstem, XII rootlets rostral 측면 여백 통해 적용 되어야 한다.</li>
		<li>경질의 등 쪽 여백에 좋은 집게 (#5)와 두 라를 들어올려 brainstem의 등 쪽 표면에서 경질을 제거 하 고 잘 봄이 위 brainstem의 길이 걸쳐 측면 중간에서 잘라. 자체 brainstem에 절단을 피하기 위해 주의 해야 합니다. 부드럽게 brainstem 표면에서 혈관 들어올린 때 brainstem 단면 vibratome 블레이드의 장애를 피하기 위해 잘라.</li>
		<li>신중 하 게 두개골 신경 rootlets 경질을 통과 하 고는 쉽게 찢 어 떨어져 경질 들어올리면 brainstem의 중간과 측면 측면에서 경질 해 부. 부드럽게 그들 주위 작은 봄이 위 절단에 의해 뽑아 되 고 rootlets의 가능성을 최소화 합니다.</li>
		<li>복 부 표면 위를 향하도록 하 고 두개골 rootlets는 명확 하 게 볼 수 있도록 brainstem 척수를 플립. Rostral에서 꼬리를 절단 지역 postrema 바로 위에 두 라를 부드럽게 들어올려 brainstem의 등 쪽 측에서 경질 해 부. 지역 postrema microcapillaries이이 지역 perfusing의 큰 숫자 때문에 약간 분홍색 표시 됩니다.</li>
		<li>좋은 곤충 핀을 사용 하 여 모든 나머지 dura 멀리 애타게 하 고 두개골 및 자 궁 경부 rootlets에 가까운 근접에서 남아 있는 혈관을 제거.</li>
	</ol></li>
</ol>4. 슬라이스 프로토콜
<ol><li>제거한 후에 경질, brainstem 플라스틱 블록 ("절단 블록" 라 함)에 파라핀 플랫폼의 중앙에 놓습니다. 그림 5C와 같이 길이 1 cm 이상의 손질 되었습니다가 좋은 곤충 핀을 사용 하 여 원심 척수를 통해 brainstem의 꼬리 끝을 고정 합니다.</li>
	<li>블레이드 brainstem의 rostral 얼굴에 수직을 상처에 vibratome 블록 홀더 고정된 brainstem와 파라핀 덮여 절단 블록을 맞춥니다.</li>
	<li>초기 슬라이스 rostral 대부분 끝에 고르지 못한, 외부 조직을 제거를 확인 합니다. 이 초기 컷 200-300 µ m 일반적으로 그러나 신중 하 게 피하기 위해 IX, X와 XII 두개골 rootlets의 제거 될 수 있습니다. 이 단계는 얼굴 핵 (7 세)와 glossopharyngeal rootlets의 꼬리 정도 밝힐 것입니다 일반적으로 하 고 그것의 얼굴은 파 vibratome 블레이드 평면 brainstem 정렬 가능 하 게. 작은 조정을 필요한 파 하면 보장 하는 조직을 제거 하는 작은 상처 합니다. 참고: 한 인하 각 연속 조각 그리고 brainstem 신경 회로 리듬 생성에 필요한 rostro 꼬리 거리에 대 한 랜드마크를 제공 하는이 Glossopharyngeal (IX) rootlets brainstem의 측면 가장자리에 표시 됩니다. Brainstem의 복 부 측에 hypoglossal rootlets (XII)도 볼 수 있어야 IX rootlets 보여주는 컷된 얼굴에 약간 꼬리. 최종 랜드마크 brainstem의 지 얼굴에 obex를 4 심 되는 척수의 중앙 채널 좁은 인간의 두뇌에 (포인트)를 될 것입니다. 참조의 이러한 세 가지 포인트 표시, 올바른 가공 면은 설립 (참조 그림 6A)와 컬 활성 슬라이스를 안정적으로 얻어질 것입니다.</li>
	<li>IX rootlets brainstem의 컷된 얼굴의 표면 근처까지 절단 rostral-꼬리를 계속 합니다.</li>
	<li>랜드마크와 올바른 방향 그림 6 을 참조 하십시오. Vibratome 클램프에 파라핀-슬 래 브 transection의 다음 각도 컷 슬라이스 매우 약간의 "쐐기" 모양을 만들 하 고 랜드마크 설명 될 때까지 약 100-200 µ m의 조각을 삭감 조정 (그림 6A)를 명확 하 게 본. 참고: 이 약간의 쐐기 절단 조각에서 XII 모터 신경의 수를 증가 하 고 녹음 중 리듬 활동을 얻기의 가능성을 극대화. 랜드마크를 사용 하 여 설명 (rostral rootlets glossopharyngeal 신경 번들, hypoglossal 신경 번들는 obex에서에서 rootlets에서에서) 슬라이스 reproducibly pBC (그림 6B)의 적어도 큰 부분을 포함 하는 것을 보장 한다.</li>
	<li>PBC를 잡으려고이 rostral 신경 해부학 표식에서 brainstem의 300-500 µ m 슬라이스를 자르고 전송 회로 관련. 참고: "이상적인" 슬라이스를 안정적으로 표면 녹음 내 리듬 생성/전송 loci 흡입 전극 사용에 지 하지 않고 inspiratory 활동 hypoglossal rootlet 번들의 가장 rostral rootlet 포함는 brainstem입니다.</li>
</ol>5. 기록 절차
<ol><li>분할 녹음 실에서 실제 (0.5-1.0 mL/min)와 지속적으로 perfuse 놓고 XII rootlets 또는 pBC, XII PMNs 또는 XII motoneurons에서 흡입 또는 세포 외 전극 기록 인구 활동을 사용 합니다. 자세한 기록 절차에 대 한 brainstem 척수 전기 생리학에 이전 간행물을 참조 하 고 클램핑10,11패치.</li>
</ol>

<ol><li>Hilaire, G., Duron, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maturation+of+the+Mammalian+Respiratory+System%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+Reviews%22%5BJournal%5D)">Maturation of the Mammalian Respiratory System.</a> Physiological Reviews. 79, 325-360 (1999).</li>
<li>Pinkerton, K. E., Joad, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Mammalian+Respiratory+System+and+Critical+Windows+of+Exposure+for+Children%27s+Health%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+Health+Perspectives%22%5BJournal%5D)">The Mammalian Respiratory System and Critical Windows of Exposure for Children's Health.</a> Environmental Health Perspectives. 108, 6(2000).</li>
<li>Smith, J. C., Ellenberger, H. H., Ballanyi, K., Richter, D. W., Feldman, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pre-B%C3%B6tzinger+complex%3A+a+brainstem+region+that+may+generate+respiratory+rhythm+in+mammals%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Pre-Bötzinger complex: a brainstem region that may generate respiratory rhythm in mammals.</a> Science. 254, 726-729 (1991).</li>
<li>Smith, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Respiratory+rhythm+generation+in+neonatal+and+adult+mammals%3A+the+hybrid+pacemaker-network+model%5BTitle%5D)+AND+%22Respiration+Physiology%22%5BJournal%5D)">Respiratory rhythm generation in neonatal and adult mammals: the hybrid pacemaker-network model.</a> Respiration Physiology. 122, 131-147 (2000).</li>
<li>Ramirez, J. M., Schwarzacher, S. W., Pierrefiche, O., Olivera, B. M., Richter, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+lesioning+of+the+cat+pre-B%C3%B6tzinger+complex+in+vivo+eliminates+breathing+but+not+gasping%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">Selective lesioning of the cat pre-Bötzinger complex in vivo eliminates breathing but not gasping.</a> The Journal of Physiology. 507, 895-907 (2004).</li>
<li>Butera, R. J., Rinzel, J., Smith, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Models+of+Respiratory+Rhythm+Generation+in+the+pre-B%C3%B6tzinger+Complex%3A+II.+Populations+of+Coupled+Pacemaker+Neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neurophysiology%22%5BJournal%5D)">Models of Respiratory Rhythm Generation in the pre-Bötzinger Complex: II. Populations of Coupled Pacemaker Neurons.</a> Journal of Neurophysiology. 82, 398-415 (1999).</li>
<li>Suzue, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Respiratory+rhythm+generation+in+the+in+vitro+brain+stem-spinal+cord+preparation+of+the+neonatal+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Physiology+%28London%29%22%5BJournal%5D)">Respiratory rhythm generation in the in vitro brain stem-spinal cord preparation of the neonatal rat.</a> Journal of Physiology (London). 354, 173-183 (1984).</li>
<li>Feldman, J. L., Del Negro, C. A., Gray, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Understanding+the+rhythm+of+breathing%3A+so+near%2C+yet+so+far%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">Understanding the rhythm of breathing: so near, yet so far.</a> Annual Review of Physiology. 75, 423-452 (2013).</li>
<li>Rekling, J. C., Shao, X. M., Feldman, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrical+Coupling+and+Excitatory+Synaptic+Transmission+between+Rhythmogenic+Respiratory+Neurons+in+the+PreB%C3%B6tzinger+Complex%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Electrical Coupling and Excitatory Synaptic Transmission between Rhythmogenic Respiratory Neurons in the PreBötzinger Complex.</a> Journal of Neuroscience. 20, 113(2000).</li>
<li>Rousseau, J. -P., Caravagna, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrophysiology+on+Isolated+Brainstem-spinal+Cord+Preparations+from+Newborn+Rodents+Allows+Neural+Respiratory+Network+Output+Recording%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Electrophysiology on Isolated Brainstem-spinal Cord Preparations from Newborn Rodents Allows Neural Respiratory Network Output Recording.</a> Journal of Visualized Experiments. , e53071(2015).</li>
<li>Segev, A., Garcia-Oscos, F., Kourrich, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole-cell+Patch-clamp+Recordings+in+Brain+Slices%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Whole-cell Patch-clamp Recordings in Brain Slices.</a> Journal of Visualized Experiments. (112), e54024(2016).</li>
<li>Koizumi, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+Imaging%2C+Spatial+Reconstruction%2C+and+Biophysical+Analysis+of+a+Respiratory+Motor+Circuit+Isolated+In+Vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Functional Imaging, Spatial Reconstruction, and Biophysical Analysis of a Respiratory Motor Circuit Isolated In Vitro.</a> Journal of Neuroscience. 28, 2353-2365 (2008).</li>
<li>Danneman, P., Mandrell, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+five+agents%2Fmethods+for+anesthesia+of+neonatal+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Evaluation of five agents/methods for anesthesia of neonatal rats.</a> Laboratory Animal Science. 47, 386-395 (1997).</li>
<li>Umezawa, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orexin-B+antagonized+respiratory+depression+induced+by+sevoflurane%2C+propofol%2C+and+remifentanil+in+isolated+brainstem-spinal+cords+of+neonatal+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Respiratory+Physiology+%26+Neurobiology%22%5BJournal%5D)">Orexin-B antagonized respiratory depression induced by sevoflurane, propofol, and remifentanil in isolated brainstem-spinal cords of neonatal rats.</a> Respiratory Physiology & Neurobiology. 205, 61-65 (2015).</li>
<li>Bierman, A. M., Tankersley, C. G., Wilson, C. G., Chavez-Valdez, R., Gauda, E. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perinatal+hyperoxic+exposure+reconfigures+the+central+respiratory+network+contributing+to+intolerance+to+anoxia+in+newborn+rat+pups%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Physiology%22%5BJournal%5D)">Perinatal hyperoxic exposure reconfigures the central respiratory network contributing to intolerance to anoxia in newborn rat pups.</a> Journal of Applied Physiology. 116, 47-53 (2014).</li>
<li>Formenti, A., Zocchi, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Error+signals+as+powerful+stimuli+for+the+operant+conditioning-like+process+of+the+fictive+respiratory+output+in+a+brainstem-spinal+cord+preparation+from+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Behavioural+Brain+Research%22%5BJournal%5D)">Error signals as powerful stimuli for the operant conditioning-like process of the fictive respiratory output in a brainstem-spinal cord preparation from rats.</a> Behavioural Brain Research. 272, 8-15 (2014).</li>
<li>Negro, C. A. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sodium+and+Calcium+Current-Mediated+Pacemaker+Neurons+and+Respiratory+Rhythm+Generation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Sodium and Calcium Current-Mediated Pacemaker Neurons and Respiratory Rhythm Generation.</a> Journal of Neuroscience. 25, 446-453 (2005).</li>
<li>Johnson, S. M., Koshiya, N., Smith, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+the+Kernel+for+Respiratory+Rhythm+Generation+in+a+Novel+Preparation%3A+The+Pre-B%C3%B6tzinger+Complex+%22Island%22%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neurophysiology%22%5BJournal%5D)">Isolation of the Kernel for Respiratory Rhythm Generation in a Novel Preparation: The Pre-Bötzinger Complex "Island".</a> Journal of Neurophysiology. 85, 1772-1776 (2001).</li>
<li>Funk, G. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+respiratory+rhythm+generating+networks+in+neonatal+mice+lacking+NMDAR1+gene%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neurophysiology%22%5BJournal%5D)">Functional respiratory rhythm generating networks in neonatal mice lacking NMDAR1 gene.</a> Journal of Neurophysiology. 78, 1414-1420 (1997).</li>
<li>Campos, M., Bravo, E., Eugenín, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Respiratory+dysfunctions+induced+by+prenatal+nicotine+exposure%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+and+Experimental+Pharmacology+and+Physiology%22%5BJournal%5D)">Respiratory dysfunctions induced by prenatal nicotine exposure.</a> Clinical and Experimental Pharmacology and Physiology. 36, 1205-1217 (2009).</li>
<li>Ballanyi, K., Volker, A., Richter, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anoxia+induced+functional+inactivation+of+neonatal+respiratory+neurones+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22NeuroReport%22%5BJournal%5D)">Anoxia induced functional inactivation of neonatal respiratory neurones in vitro.</a> NeuroReport. 6, 165-168 (1994).</li>
<li>Ruangkittisakul, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+Sensitivity+to+Neuromodulator-Activated+Signaling+Pathways+at+Physiological+%5BK%2B%5D+of+Confocally+Imaged+Respiratory+Center+Neurons+in+On-Line-Calibrated+Newborn+Rat+Brainstem+Slices%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">High Sensitivity to Neuromodulator-Activated Signaling Pathways at Physiological [K+] of Confocally Imaged Respiratory Center Neurons in On-Line-Calibrated Newborn Rat Brainstem Slices.</a> Journal of Neuroscience. 26, 11870-11880 (2006).</li>
<li>Rybak, I. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+the+ponto-medullary+respiratory+network%5BTitle%5D)+AND+%22Respiratory+Physiology+%26+Neurobiology%22%5BJournal%5D)">Modeling the ponto-medullary respiratory network.</a> Respiratory Physiology & Neurobiology. 143, 307-319 (2004).</li>
<li>Ruangkittisakul, A., Kottick, A., Picardo, M. C. D., Ballanyi, K., Del Negro, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+the+pre-B%C3%B6tzinger+complex+inspiratory+center+in+calibrated+%27sandwich%27+slices+from+newborn+mice+with+fluorescent+Dbx1+interneurons%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+Reports%22%5BJournal%5D)">Identification of the pre-Bötzinger complex inspiratory center in calibrated 'sandwich' slices from newborn mice with fluorescent Dbx1 interneurons.</a> Physiological Reports. 2, (2014).</li>
<li>Paxinos, G., Watson, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPaxinos%2C+G+%22The+Rat+Brain+in+Stereotaxic+Coordinates%22">The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates</a>. , Academic Press, Inc. (1997).</li>
<li>Franklin, K. B. J., Paxinos, G. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFranklin%2C+KBJ+%22The+Mouse+Brain+in+Stereotaxic+Coordinates%22">The Mouse Brain in Stereotaxic Coordinates</a>. , Academic Press, Inc. (2008).</li>
</ol>

저자는 공개 없다.

En 블록으로 여기에 제시 된 프로토콜 적응 또는 슬라이스 워크플로 실험실 용 유리 이며 얇은 중 일괄적 brainstem-척수를 활용 하 고 싶은 연구 슬라이스 전기 생리학 기록에 대 한 준비. 해 부와 슬라이스 방법 제시, 방법과 다른 사람에 의해 이전에 보고 된17,,1819결합, 널리의 범위에 적응할 수 있는 강력 하 고 가능한 조직의 재현할 준비 하면 실험 설치류 hindbrain 또는 척수를 사용 하 여입니다. 제시 해 부 매우 상세 하 고 분할 영역을 준비할 때 brainstem 척수의 방향에 관한 광범위 한 정보 뿐 아니라 등 쪽과 복 부 laminectomy를 포함 합니다. 상세한 해 부와 슬라이스 프로토콜 제시 생성 및 inspiratory 리듬의 전송에 필요한 모든 회로 포함 하는 연구원을 수 있습니다. 주요 신경 인구/구조를이 방법을 사용 하...

Brainstem의 호흡 신경망 리듬 신경 네트워크의 일반적인 특성을 이해 하기 위한 비옥한 도메인을 제공 합니다. 특히, 관심 신생아 설치류 호흡 및 호흡 리듬을 개발 하는 방법을 이해의 개발 이다. 이 비보 전체 동물 plethysmography, 체 외에서 일괄적 신경 녹음, 포함 한 다단계 접근 방식을 사용 하 고 생체 외에서 수 있습니다 호흡 리듬 생성기를 포함 하는 녹음을 슬라이스. 시험관 en 블록 및 슬라이스 녹음에서 reductionist 호흡기 rhythmogenesis 및 설치류 개발의 brainstem 척수 영역에서 신경 회로 뒤에 메커니즘을 심문 할 때 사용 하는 유리한 방법입니다. 개발 호흡기 약 40 세포 유형을, 패턴, 중앙 호흡기1,2의 포함을 발사 하 여 특징을 포함 한다. 중앙 호흡기 네트워크 rostral ventrolateral 모1,3에 위치한 컬 활성 뉴런의 그룹을 포함 합니다. 포유류의 호흡기 rhythmogenesis 생성 되는 autorhythmic에서 interneuron 네트워크 불리는 복잡 한 preBötzinger (pBC), 되었습니다 통해 실험적으로 지역화 신생아 포유류의 조각 및 en 블록 준비 brainstem 척추 코드3,,45,6,,78. 이 지역에에서 동방 마디 (SA)에 비슷한 기능을 제공 하 고 드라이브 호흡을 inspiratory 타이밍 시스템을 생성 합니다. PBC에서 inspiratory 리듬 brainstem (hypoglossal 모터 핵 포함) 및 척추 모터 풀 (예: 격 막 드라이브 인할지 모터 뉴런)9의 다른 지역에 수행 됩니다.
리듬 활동 brainstem 척수 en 블록 준비 또는 다양 한 c 3-c 5 신경 rootlets, XII 신경 rootlets를 포함 하는 세포 인구에서에서 분할 영역을 사용 하 여 얻을 수 있습니다 hypoglossal 모터 핵 (만 12 세), hypoglossal premotor 신경 (XII pMN), 그리고 pBC3,10,,1112. 데이터 수집의 이러한 방법은 실험실의 소수에 걸쳐 성공 했습니다, 여러 프로토콜 하지 새로운 연구 분야를 입력에 대 한 완벽 하 게 재현할 수 있는 방식으로 표시 됩니다. 취득 가능한 컬 활성 en 블록 슬라이스 준비는 해 부와 슬라이스 절단 프로토콜의 모든 단계를 통해 세부 사항에 급성 주의가 필요 합니다. 이전 프로토콜 광범위 하 게 설명 하는 다양 한 기록 절차와 전기 생리학, 아직 실행 가능한 조직 준비의 가장 중요 한 부분에 세부 부족: brainstem 척수 해 부 및 조각 절차를 수행.
제대로, 신중 하 게, 그리고 신속 하 게 모든 단계를 수행 수 해야 효율적으로 얻기 컬 활성 및 가능한 en 블록 또는 슬라이스 준비 brainstem 척수 전기 생리학 기록 (일반적으로, 전체 절차 관련 여기 있을 수 있습니다 약 30 분에서 수행). 있다 하지 이전 잘 설명 하는 brainstem 척수 전기 생리학 프로토콜의 중요 한 포인트 포함 신경 rootlets 및 조각화 절차는 vibratome에의 해 부. 이 프로토콜 stepwise 첫 번째는 새로운 연구와 분야에서 전문가 위한 brainstem 척수 해 부에 시각적으로 의사 소통입니다. 이 프로토콜도 철저 하 게 외과 기술, 랜드마크, 및 조각 및 각 실험에서 원하는 정확한 회로 포함 하는 준비 일괄적 표준화에 미래 연구자를 지원 하기 위해 다른 절차를 설명 합니다. 쥐와 쥐 신생아 강아지에 여기에 제시 된 절차를 사용할 수 있습니다.

<table><tbody><tr><td>NaCl</td><td>Fisher Scientific</td><td>S271-500</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>시그마 Aldrich</td><td>P5405-1KG</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP328-1</td><td></td></tr><tr><td>NaH2PO4 &bull; H2O</td><td>시그마 Aldrch</td><td>S9638-25G</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2&bull; 2H2O</td><td>시그마 Aldrich</td><td>C7902-500G</td><td></td></tr><tr><td>MgSO4&bull; 7H2O</td><td>시그마 Aldrich</td><td>M7774-500G</td><td></td></tr><tr><td>D-Glucose</td><td>Sigma Aldrich</td><td>G8270-1KG</td><td></td></tr><tr><td>냉광원 할로겐 램프 150 W</td><td>AmScope</td><td>H2L50-AY</td><td></td></tr><tr><td>해부 현미경</td><td>Leica</td><td>M-60</td><td></td></tr><tr><td>Vibratome 1000 Plus</td><td>Vibratome</td><td>W3 69-0353</td><td></td></tr><tr><td>마그네틱베이스</td><td>Kanetic</td><td>MB-B-DG6C</td><td></td></tr><tr><td>이소플루란, USP</td><td>Patterson 수의학</td><td>NDC 14043-704-06</td><td></td></tr><tr><td>소드 클래식 양날</td><td>블레이드 Wilkinson</td><td>97573</td><td></td></tr><tr><td>Histoclear</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H2779</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #5 Fine</td><td>Forceps Fine Science Tools</td><td>11254-20</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #5/45 Forcep</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-35</td><td></td></tr><tr><td>메스 블레이드 #10</td><td>Fine Science Tools</td><td>10010-00</td><td></td></tr><tr><td>Scalpel Handel #3</td><td>Fine Science Tools</td><td>10003-12</td><td></td></tr><tr><td>스프링 가위 스트레이트&nbsp;</td><td>Fine Science Tools</td><td>15024-10</td><td></td></tr><tr><td>좁은 패턴 펜셉 톱니/직선</td><td>Fine Science Tools</td><td>11002-12</td><td></td></tr><tr><td>Castroviejo Micro Dissecting Spring Scissors; 직선</td><td>Roboz</td><td>RS-5650</td><td></td></tr><tr><td>Vannas 가위 3" 곡선</td><td>Roboz</td><td>RS-5621</td><td></td></tr><tr><td>곤충 핀, 0</td><td>Fine Science Tools/8840604</td><td>26000-35&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>곤충 핀, 0, SS</td><td>Fine Science Tools</td><td>26001-35</td><td></td></tr><tr><td>곤충 핀, 00</td><td>Fine Science Tools</td><td>26000-30</td><td></td></tr><tr><td>곤충 핀, 00, SS</td><td>Fine Science Tools</td><td>26001-30</td><td></td></tr><tr><td>곤충 핀, 000</td><td>Fine Science Tools</td><td>26000-25</td><td></td></tr><tr><td>곤충 핀, 000, SS</td><td>Fine Science Tools</td><td>26001-25</td><td></td></tr><tr><td>Minutien 핀, 0.10 mm</td><td>Fine Science Tools</td><td>26002-10</td><td></td></tr><tr><td>Minutien 핀, 0.15 mm</td><td>Fine Science Tools</td><td>26002-15</td><td></td></tr><tr><td>Minutien 핀, 0.2 mm</td><td>Fine Science Tools</td><td>26002-20</td><td></td></tr><tr><td>Fisher Tissue prep Parafin&nbsp;</td><td>피셔</td><td>T56-5</td><td></td></tr><tr><td>그래핀&nbsp;</td><td>낚시꾼&nbsp;</td><td>G67-500</td><td></td></tr><tr><td>Delrin 플라스틱&nbsp;</td><td>Grainger</td><td>3HMT2</td><td></td></tr><tr><td>18 게이지 피하 주사 바늘</td><td>BD</td><td>305195</td><td></td></tr></tbody></table>

리듬-액티브의 준비 체 외 신생아 설치류 brainstem-척수와 얇은 슬라이스

Preparation of Rhythmically-active In Vitro Neonatal Rodent Brainstem-spinal Cord and Thin Slice

포유류 inspiratory 리듬의 모 수는 preBötzinger를 복잡 한 전화 (pBC), 운전 inspiratory 근육의 리듬 수축 신호를 생성 하는 영역에 신경 네트워크에서 생성 됩니다. 리듬 신경 활동 pBC에서 생성 하 고 호흡의 근육 신경 녹음 및 가로 분할 녹음 일괄적 포함 하 여 다양 한 방법을 사용 하 여 공부 될 수 드라이브에 다른 신경 풀에. 그러나, 이전에 게시 방법을 설명 되지 않은 광범위 하 게 brainstem 척수 해 부 과정 미래 연구에 대 한 투명 하 고 재현 가능한 방식. 여기, 우리 사용 reproducibly 리듬-액티브 brainstem 조각을 생성 하 고 전송 inspiratory 드라이브에 대 한 필요 하 고 충분 한 신경 회로 포함 하는 방법의 포괄적인 개요를 제시. 이 작품은 pBC, hypoglossal premotor 신경 (XII pMN), 신경의 출력을 기록에 대 한 실용적이 고 컬 활성 분할 영역을 안정적으로 얻기의 가능성을 향상 시키기 위해 이전 brainstem 척수 전기 생리학 프로토콜 구축 및 hypoglossal 모터 신경 (XII 미네소타)입니다. 제시 하는 작품 XII rootlets를 포함 하는 생체 외에서 슬라이스를 전체 쥐 강아지에서 해 부의 상세한, 단계별로 그림을 제공 하 여 이전 게시 된 방법에 따라 확장 합니다.

여기에 제시 된 방법 연구원을 reproducibly 하 고 확실 하 게 많은 시간 움직이다 모터 출력의 녹음을 허용 하는 실행 가능한, 강력한 조각을 잘라 brainstem의 리듬 활성 슬라이스를 취득에 관심이 있습니다. 모든 생성 하 고 전송 inspiratory 리듬에 대 한 최소한 필요한 신경 회로 요소는이 메서드를 사용 하 여 얇은 조각에서 캡처할 수 있습니다. 이러한 요소를 포함: 복잡 한 preBötzinger, hypoglossal 모터 신경 (pXII MNs)에 투영 premotor 신경 hypoglossal 모터 신경 (XII MNs), 및 hypoglossal 신경 rootlets. PBC, XIIn, 및 C4 신경 rootlets 일반적으로 사용 됩니다 inspiratory 리듬 녹음, 그림 7에서 볼 수 있듯이.
<p class="jove_content" fo:keep-together.w...

이 프로토콜 모두 시각적으로 통신 brainstem 척수 준비 하 고 포괄적인 단계별 방식 brainstem 가로 조각의 준비를 명확히. 그것은 재현성을 증가 하 고 brainstem의 호흡 영역에서 신경 출력 기록 가능한, 오래 지속, 컬 활성 분할 영역 취득의 가능성을 강화 하도록 설계 되었습니다.

리듬-액티브의 준비 체 외 신생아 설치류 Brainstem-척수와 얇은 슬라이스

Mammalian inspiratory rhythm is generated from a neuronal network in a region of the medulla called the preB&#246;tzinger complex (pBC), which produces a ...

이 방법은 Mirian 수질 호흡기 네트워크의 캡처 된 분석을 위해 설치류 뇌간의 재현 가능한 해부 및 슬라이스를 용이하게합니다. 이 기술은 뛰어난 실험적 유연성을 제공하므로 체외 차단 해제 또는 녹화를 위한 슬라이스 준비를 준비할 수 있습니다. 이 방법은 호흡 리듬을 생성하는 신경 통제 회로를 탐구하고 유전자 변형 설치류에서 호흡의 병리학 및 변태를 이해하기 위하여 전기 생리학 실험에 사용될 수 있습니다.neuraxis의 해부 후, 동물의 고립 된 트렁크를 해부 현미경 의 밑에 방면 챔버로 신속하게 옮기고 조직 등쪽을 위로 놓고, 연막 끝이 챔버의 전면을 향하고 있다. 어깨에 조직을 고정하고 척수의 가장 caudal 끝은 피질과 두개골의 밑에 뇌간을 손상시키지 않도록 정수리 봉합사 다음 두개골을 통해 중증 절개를 합니다. 처진 봉합사에서 시작하여 측면으로 작업하여 두개골의 후두 봉합사를 잘라 두개골의 반사 및 고정되어 두개골의 장밋빛을 고정하고 안정화시킬 수 있는 뼈의 플랩을 만듭니다.두 두개골 플랩을 모두 반사 한 후, 대뇌 피질의 나머지 부분을 소비, 등색 라미네절절제술을 수행하기 위해 상대적으로 그대로 소뇌의 소살 부분을 떠나. 마이크로 스프링 가위와 집게를 사용하여 두개골과 척추 컬을 둘러싼 근육을 제거하십시오. 흉곽의 등쪽 측면을 따라 조직을 제거하고 갈비뼈를 그대로 두고 척추 라미나의 측면 과정을 조심스럽게 잘라낸다.폰과 메둘라를 덮어 내는 조직을 잘라낸 후, 척수의 진실, 소뇌, 폰 및 시작이 명확하게 드러날 것입니다. 복부 심근 절제술을 수행하려면 조직 등쪽을 아래로 놓고 흉곽과 척추의 가장 caudal 끝에 고정하십시오. 두개골 플랩을 사용하여 조직의 장밋빛을 고정하고 흉골과 모든 복부 장기를 포함한 흉곽의 복부 절반을 제거하십시오.갈비뼈와 척수를 노출하고 혀, 식도, 기관, 후두 및 두개골과 척추의 기지를 덮어 다른 연조직과 근육의 모든 제거 흉곽에 부착 된 연조직을 해부. 단단한 팔레트를 식별하기 위해 v 자형 들여쓰기를 포함하는 두개골 기저부뼈의 직사각형 플레이트를 과도하게 둘러싼 조직을 해부합니다. 그런 다음 팔레트의 중간선을 따라 잘라 조심스럽게 조직을 위쪽으로 들어 올리고 이를 제거하기 위해 횡방향 컷을 수행합니다.복부 성 근막 절제술을 시작하려면, 라미나, 첫 번째 자궁 경부 척추에서 뇌간과 척수의 복부 표면을 노출하여 흉부 척추 7에 약 7을 노출하고 라미나의 척추 의 양쪽을 따라 5 ~ 10 밀리미터를 잘라. 척수가 노출되면, 약 20~25밀리미터의 뿌리를 양간으로 자르고, 척수를 따라 약 T7로 자르고 C1, C2 및 C3의 로스트랄 가장자리를 후크 또는 구부러진 집게로 조심스럽게 들어 올려 세 척추를 제거하기 위해 뼈 아래를 잘라낼 수 있게 합니다. 척수의 원하는 길이가 척추 기둥에서 분리된 경우 척수 조직을 제거하기 위해 횡방향 절단을 합니다.두라를 제거한 후, 플라스틱 절단 블록에 파라핀 플랫폼의 중앙에 뇌간을 놓고 미세 한 곤충 핀을 사용하여 1센티미터 이하로 트리밍하여 말단 척수를 통해 뇌의 소달 끝을 고정시십시오. 그런 다음 비브라톤 블록 홀더의 고정 된 뇌간과 파라핀 덮인 절단 블록을 정렬하여 블레이드가 뇌의 로스트랄 면에 수직으로 절단되도록합니다. 다음으로, 조직의 가장 끝에 고르지 않은 외투 조직의 200 ~ 300 마이크로미터를 제거하기 위해 초기 슬라이스를 만들고, PARP 선형성과 고르지 않은 조직을 제거하기 위해 작은 컷을 보장하기 위해 필요에 따라 작은 조정을합니다.글로시인두 뿌리는 뇌의 측면 가장자리에서 볼 수 있게 되고, 이러한 로스트랄 신경 해부학 마커로부터 뇌의 300~500 마이크로미터 슬라이스를 잘라 보칭거 이전 복합체 및 관련 전송 회로를 캡처합니다. 모든 슬라이스 절차 단계는 강력한 리듬을 생성하기 위해 올바른 방향으로 필요한 모든 뉴런 회로와 함께 재현 가능한 실행 가능한 슬라이스를 만드는 데 중요합니다. 피망 리듬을 생성하고 전송하는 데 필요한 최소한의 신경 회로 요소는 모두 이 방법을 사용하여 얇은 슬라이스로 캡처할 수 있습니다.전 보칭거 복합체를 포함 하 여, hypoglossal 모터 뉴런 및 hypoglossal 신경 루트에 투영 하는 전 운동 뉴런. 사전 보칭거 복합체, 저혈당 또는 12번째 두개골 신경 뿌리제 및 C4 신경 뿌리제는 호흡 에 사용할 수 있습니다. 이 절차의 주요 측면은 루트릿의 주의 깊은 격리와 최종 슬라이스를 절단하기 전에 뇌간이 손상되지 않았는지 확인하는 것입니다.이 절차에 따라, 전기 생리학 기록은 네트워크에 의해 생성 된 전기 활동을 기록하기 위해 패치 클램프 방법, 여분의 세포 기록 또는 흡입 전극을 사용하여 만들 수 있습니다. 이전에 발표된 프로토콜은 단계별 세부 사항을 거의 제공하지 못해 새로운 연구자가 다른 실험실로 여행하고 조미조사자와 시간을 보내지 않고이 방법을 사용하기가 어려워졌습니다.

preparation-rhythmically-active-vitro-neonatal-rodent-brainstem

Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

E18 랫 두뇌의 Organotypic 슬라이스 문화

이 프로토콜은 주동이의 철새 스트림에서 출생 후의 두뇌와 neuroblast 마이 그 레이션의 고해상도 시간 저속 영상에 최적화된 organotypic 슬라이스 분석을 설명합니다.

출생 후의 두뇌에의 연결을 마이 그 레이션의 고해상도 시간 경과 이미징을위한 Organotypic 슬라이스 분석

이것은 피라미드 뉴런에서 전기 레코딩을 만드는 목적 organotypic 문화 neocortical 슬라이스 준비를 준비하고 유지하는 프로토콜입니다.

네크로 텍스의 Organotypic 슬라이스 준비에서 전체 셀 녹음

E12.5 murine 배아 midbrain에서 organotypic 조각을 생성하는 방법을 설명합니다. organotypic 슬라이스 문화가 dopaminergic 신경이나 다른 복부 midbrain의 뉴런의 행동을 관찰하는 데 사용할 수 있습니다.

배아 복부 Midbrain의 Organotypic 슬라이스 문화 : Dopaminergic의 연결을 개발 연구하는 시스템 체외에서</em

이 비디오는 갓 태어난 설치류의 분리된 뇌간-척수 제제의 전기생리학적 기록을 보여줍니다. 제제는 기록실에 넣고, 뇌간의 흡기 폭발은 척수의 네 번째 복부 신경근을 사용하여 산소가 공급되고 산소가 부족한 상태에서 기록됩니다.

신생아 설치류의 뇌간-척수 제제의 전기생리학적 기록

중추 호흡 드라이브는 뇌간에 있습니다. 고립된 뇌간-척수에서 출력되는 자발적인 호흡 운동은 네 번째 배뿌리에 전극을 배치하여 기록됩니다. 이 실험적 접근 방식은 약리학적 조사 또는 리듬 운동 행동에 대한 호흡 문제 및 유전자 조작 평가에 유용합니다.

신생아 설치류에서 분리 뇌간 - 척수 준비에 전기 생리학은 신경 호흡 네트워크 출력 녹화를 할 수 있습니다

우리는 젊은 쥐에서 척수의 경사 조각을 준비하는 방법을 보여줍니다. 이 준비는 복부 뿌리의 자극 수 있습니다.

복부 루트 자극에 대한 사선 척수 조각의 준비

여기, 우리가 시험관에서 척수 조각에서 신경 세포 substantia gelatinosa (SG)에서 만든 전체 셀 패치 클램프 기록에 대 한 필수 단계 설명 합니다. 이 메서드는 기본 막 속성, 시 냅 스 전송 및 공부 SG 뉴런의 형태학 상 특성을 수 있습니다.

급성 척수 조각 Substantia Gelatinosa 신경에 있는 전체 셀 패치 클램프 기록에 대 한 준비

뉴런에 다양한 시냅스 입력의 통합은 자연 타이밍과 회로 가소성을 위해 모든 사전 시냅스 핵을 보존하는 준비에서 가장 잘 측정되지만, 뇌 슬라이스는 일반적으로 많은 연결을 끊습니다. 우리는 생체 외 실험 능력을 유지하면서 생체 내 회로 활동을 모방하는 수정 된 뇌 조각을 개발했습니다.

생체 내 신경 회로 연결성 모방을 위한 체외 쐐기 슬라이스 준비

여기서 우리는 하나의 뇌간 조각 내에서 긴장성 특성과 발달 궤적을 조사하기 위해 닭 배아의 비관상 청각 뇌간 조각을 얻기 위한 프로토콜을 제시합니다. 이러한 슬라이스는 시상, 수평 및 수평/횡단면을 포함하며, 이는 전통적인 관상 섹션보다 개별 슬라이스 평면 내에서 더 큰 토노토픽 영역을 포함한다.

긴장성 구배와 미세 회로를 평가하기 위해 배아 닭 청각 뇌간 절단

학습하세요 설치류 뇌간 절제 및 슬라이스 제작 방법으로 호흡 신경 회로를 연구하세요. 이 기술은 전기생리학 기록을 위한 생존 가능한 뇌 조직을 재현 가능하게 준비하여 호흡 조절 메커니즘을 이해하는 데 필수적입니다.

리듬-액티브의 준비 체 외 신생아 설치류 Brainstem-척수와 얇은 슬라이스

더 많은 동영상 탐색