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바이러스 핵산 및 단백질을 시각화하고 HIV, HTLV, HBV, HCV, 지카 바이러스 및 인플루엔자 감염을 모니...
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JoVE Journal Biology
Single-Cell Multiplexed Fluorescence Imaging to Visualize Viral Nucleic Acids and Proteins and Monitor HIV, HTLV, HBV, HCV, Zika Virus, and Influenza Infection

바이러스 핵산 및 단백질을 시각화하고 HIV, HTLV, HBV, HCV, 지카 바이러스 및 인플루엔자 감염을 모니터링하기 위한 단일 세포 다중화 형광 이미징

Full Text
3,187 Views
07:24 min
October 29, 2020

DOI: 10.3791/61843-v

Raven Shah*1, Shuiyun Lan*1, Maritza N. Puray-Chavez2, Dandan Liu2, Philip R. Tedbury1, Stefan G. Sarafianos1

1Laboratory of Biochemical Pharmacology, Department of Pediatrics,Emory University School of Medicine, 2Department of Molecular Microbiology & Immunology,University of Missouri School of Medicine

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a multiplex immunofluorescent cell-based detection method for simultaneous visualization of DNA, RNA, and proteins within single cells. The approach demonstrates its efficacy in observing viral proteins and nucleic acids from different types and strandedness, showcasing its broad applicability across various biological systems.

Key Study Components

Research Area

  • Cell biology
  • Immunofluorescence techniques
  • Viral detection

Background

  • Simultaneous detection of multiple biomolecules is critical in understanding cellular processes.
  • Traditional methods may struggle with specificity and cross-reactivity in multiplex systems.
  • Advancements in imaging techniques enhance visualization and quantification at the single-cell level.

Methods Used

  • Multiplex immunofluorescent imaging
  • Single-cell analysis in various viral contexts
  • Fluorescent amplification and hybridization techniques

Main Results

  • Simultaneous labeling and visualization of HIV-1 DNA, RNA, and protein
  • High specificity with minimal cross-reactivity in probe sets
  • Quantitative analysis of viral RNA during HBV infection

Conclusions

  • This study establishes a robust technique for tracking viral processes at high spatial and temporal resolution.
  • The findings contribute valuable insights into pathogenic mechanisms and potential therapeutic targets in virology.

Frequently Asked Questions

What is the purpose of the MICDDRP method?
The MICDDRP method allows for simultaneous visualization of viral proteins and nucleic acids in single cells, enhancing understanding of viral dynamics.
Can this technique be used for other pathogens besides HIV?
Yes, the method is versatile and can be applied to study multiple viruses and pathogens.
What imaging technology was used in this study?
The study utilized multiplex immunofluorescent imaging and confocal microscopy to visualize targets.
What is the significance of using single-cell analysis?
Single-cell analysis provides detailed insights into cellular responses and variability that bulk analyses may overlook.
How does this method ensure specificity in targeting biomolecules?
The method employs carefully selected probes and amplification techniques to minimize cross-reactivity among different biomolecules.
What biological applications can benefit from this approach?
Applications include tracking viral replication, studying infection mechanisms, and monitoring cellular responses to treatments.
How does this study advance our understanding of viral infections?
By allowing the visualization of multiple elements of viral life cycles concurrently, it enhances insights into viral pathogenesis and host interactions.

여기에 제시된 것은 형광 이미징 접근법, D NA, RNA및 protein (MICDDRP)의 궁극적 인 형광 C ell 기반dtection을위한 프로토콜이며, 이는 바이러스 단백질 및 다양한 유형 및 가닥의 핵산의 동시 형광 단일 세포 시각화가 가능한 방법입니다. 이 접근법은 다양한 범위의 시스템에 적용될 수 있습니다.

DNA, RNA 및 단백질에 대한 다중 면역형광 세포 기반 검출 접근 방식을 통해 단일 세포 내에서 다양한 유형과 가닥성의 단백질과 핵산을 동시에 시각화할 수 있습니다. 파종하기 전에 에탄올에서 커버 슬립을 5분 동안 배양한 다음 PBS에서 2분 동안 두 번 세척합니다. 두 번째 세척 후 실온에서 30분 동안 폴리-D-라이신 밀리리터당 20마이크로그램에 커버 슬립을 완전히 담그십시오.

배양이 끝나면 PBS에서 2회 세척하여 초과 매트릭스 용액을 제거하고 관심 세포를 1 x 10에서 커버 슬립 농도당 PBS 50마이크로리터당 6번째 세포로 희석합니다. 그런 다음 관심 세포 50마이크로리터를 각 poly-D-lysine 코팅 커버 슬립에 시딩하여 실온에서 30분 배양합니다. 배양이 끝나면 PBS에서 세포를 세 번 세척한 후 4% 파라포름알데히드에 30분 동안 고정합니다.

배양이 끝나면 PBS에서 세포를 두 번 세척한 후 실온에서 10분 동안 PBS에서 0.1%Tween 20의 500마이크로리터로 세포를 투과시킵니다. 배양이 끝나면 세척 당 500 마이크로 리터의 신선한 PBS로 각 커버 슬립을 두 번 세척하십시오. 커버 슬립을 유리 슬라이드에 고정하려면 멸균된 유리 슬라이드에 투명 매니큐어 한 방울을 떨어뜨리고 커버 슬립의 셀이 없는 면의 한쪽 가장자리를 매니큐어 한 방울 위에 놓고 커버 슬립을 슬라이드 셀 면이 위를 향하도록 내립니다.

세포가 탈수되는 것을 방지하기 위해 고정된 커버 슬립에 PBS 몇 방울을 추가하고 소수성 차단 펜을 사용하여 커버 슬립 바깥쪽에 원을 그립니다. 장벽이 그려지면 PBS를 100마이크로리터의 프로테아제 III로 교체하고 슬라이드를 섭씨 40도의 인큐베이터에 15분 동안 넣습니다. 배양이 끝나면 신선한 PBS로 슬라이드를 두 번 씻고 흔들면서 씻을 때마다 2 분 동안 씻습니다.

두 번째 세척 후 관심 프로브를 섭씨 67도에서 200마이크로리터의 혼성화 완충액에 10분 동안 희석합니다. 배양이 끝나면 각 커버 슬립에 50마이크로리터의 프로브 용액을 추가하고 슬라이드를 가습된 섭씨 40도 오븐에 2시간 동안 넣습니다. 배양이 끝나면 새 세척 버퍼로 슬라이드를 두 번 세척하고 세척당 2분 동안 흔듭니다.

두 번째 세척 후 슬라이드를 두드려 초과 버퍼를 제거하고 형광 채널 1, 2 및 3용 증폭기 한 방울로 커버 슬립을 순차적으로 처리하여 30분, 증폭기당 섭씨 40도 배양 및 처리 사이에 세척당 흔들림이 있는 새 세척 버퍼에서 2분 동안 두 번 세척합니다. 마지막 세척 후 섭씨 4도 오븐에서 15분 동안 배양하기 위해 커버 슬립에 형광 채널 4 증폭기 한 방울을 추가하고 그림과 같이 세척 버퍼로 슬라이드를 두 번, PBS로 한 번 세척합니다. 관심 단백질의 면역 염색을 위해 마지막 세척 후 각 커버 슬립을 200마이크로리터의 차단 버퍼로 처리하여 실온에서 1시간 동안 배양합니다.

배양 종료 시 블로킹 완충액을 디캔팅하고 PBS에 희석된 1차 관심 항체 200마이크로리터와 1% 소 혈청 알부민이 보충된 Tween 20을 추가합니다. 실온에서 1시간 배양 후 새 PBS로 10분 2회 세척하고 세척당 Tween 20을 흔들어 슬라이드를 세척한 후 실온에서 1시간 동안 적절한 2차 항체로 샘플을 라벨링합니다. 배양이 끝나면 새 PBS와 Tween 20으로 슬라이드를 두 번 세척하고 세척할 때마다 흔들면서 10분 동안

세척합니다.

두 번째 세척 후 실온에서 1분 동안 적절한 핵 염료로 핵을 카운터 염색한 다음 실온에서 10분 동안 PBS를 2회 세척하여 진탕합니다. 이미징을 위해 샘플을 장착하려면 샘플당 하나의 새로운 멸균 유리 슬라이드에 페이드 방지 용액 한 방울을 떨어뜨리고 커버 슬립 크기와 비슷한 영역을 덮도록 용액을 펴 놓습니다. 슬라이드에서 커버 슬립을 분리하고 커버 슬립을 PBS에 담그십시오.

집게를 사용하여 남아 있는 매니큐어를 제거하고 실험실 물티슈로 커버 슬립 뒷면을 말리십시오. 그런 다음 각 커버 슬립 샘플 면을 페이드 방지 용액에 부드럽게 놓고 샘플을 밤새 건조시킵니다. 이 절차의 개념 증명으로 HIV-1 DNA, RNA 및 단백질을 동시에 라벨링하고 단일 세포 수준에서 현미경으로 시각화했습니다.

이 예에서는 두 개의 HIV-1, DNA 게놈이 바이러스 RNA를 활발하게 전사하기 때문에 단일 세포 내에서 시각화할 수 있습니다. 바이러스 RNA는 핵공 복합체를 통해 내보내졌고 바이러스 단백질은 세포질에서 합성되었습니다. 관찰된 바와 같이, 프로브 교차 반응 가능성이 있는 두 개의 레트로바이러스로 표지되었음에도 불구하고 두 바이러스에 걸친 프로브 세트 간에 교차 반응이 거의 또는 전혀 관찰되지 않습니다.

또한 시료 전처리 중에 세포를 RNase로 처리하면 바이러스 RNA 염색을 제거할 수 있습니다. 그런 다음 각 이미지에서 세포당 항체 신호의 평균 통합 형광 강도를 정량화할 수 있습니다. 관찰된 바와 같이, HBV 전유전체 RNA와 총 HBV RNA의 양은 HBV 감염이 진행됨에 따라 증가합니다.

HCV 감염 이미징은 관심 형광단을 검출하기 위해 60X 오일 이멀젼 대물렌즈를 사용하는 컨포칼 현미경을 통해 수행할 수도 있습니다. 이 매우 특이적인 접근 방식을 통해 높은 공간적 시간 해상도로 바이러스 또는 세포 과정을 추적할 수도 있습니다. 또한 이 기술은 여러 바이러스 및 기타 병원체를 연구하는 데 사용할 수 있습니다.

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