Name: 전단력에 의한 앙상블 힘 분광법 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-07-26T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 30 s
Description: 학습하세요 전단력에 의한 앙상블 힘 분광법을 통해 DNA와 리간드 간 상호작용을 고효율로 연구하는 방법을. 형광 추적과 실시간 감지로 생물분자 구조의 기계적 특성을 분석할 수 있습니다.

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이 연구 작업은 국립 과학 재단 [CBET-1904921] 및 국립 보건원 [NIH R01CA236350]의 지원을 받았습니다.

참고: 이 프로토콜에 사용된 모든 완충액과 화학 시약은 표 재료에 나열되어 있습니다.
1. 전단력 현미경의 제조
참고: 전단력 현미경은 반응 장치(균질화기)와 검출 장치(형광 현미경)의 두 부분으로 구성됩니다. 접안 렌즈의 배율은 10 배이고 대물 렌즈 (공기)의 배율은 4 배입니다.
<ol><li>균질화기와 현미경을 장착 테이블에 조립합니다. 고글을 착용하고 형광 현미경을 켠 다음 균질화를 조정하여 적절한 파장(여기서는 488nm가 사용됨)의 여기 광선이 균질화기의 분산 팁 중심을 통과하는지 확인합니다.</li>
	<li>높이가 5cm이고 단면적이 1.5cm2 x 1.5cm2인 평평한 바닥 반응 챔버를 준비합니다. 배경을 줄이려면 선택한 챔버 재료가 유리와 같이 형광을 발하지 않는지 확인하십시오 (일부 플라스틱에는 형광이 있음).</li>
	<li>원하는 전단력을 제공할 수 있는 적절한 균질화기 분산 팁을 선택하십시오. 참고: 전단 속도는 다음 방정식에 따라 고정 회전 속도11 에서 회전자와 고정자 사이의 거리에 따라 달라집니다. <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/63741/63741eq01.jpg" style="margin: auto;"> 여기서 μ 는 20 °C에서 물의 동적 점도입니다. D 는 고정자의 내경입니다. d 는 로터의 외경이고 V 는 전단 속도(rpm/s)입니다.</li>
	<li>형광 현미경의 샘플 스테이지에 반응 챔버를 고정한 다음 균질화기의 분산 팁을 고정하도록 챔버를 조정합니다(그림 1). 분산 팁이 반응 챔버의 바닥 표면보다 약간 위(~1mm)에 있는지 확인하십시오.</li>
	<li>균질화기와 챔버의 수직 위치를 함께 조정하여 현미경의 초점이 분산 팁의 표면에 있는지 확인하십시오. 그런 다음 분산 팁의 수평 위치를 조정하여 회전자와 고정자 사이에 감지 영역(시야)이 설정되었는지 확인합니다(그림 1).</li>
	<li>실험에 사용된 형광 염료에 따라 형광 채널을 켭니다.</li>
	<li>고속 전단 실험 전에 탈이온수(DI)를 사용하여 낮은 전단 속도(예: 2,000rpm)로 전단을 테스트하여 분산 팁이 반응 챔버를 건드리지 않고 적절하게 작동할 수 있는지 확인합니다.</li>
</ol>2. 리간드가 있거나 없는 i-모티프 전개
<ol><li>Hu et al.11에 기재된 바와 같이, DI 물에서 각각 그의 두 말단에 염료 및 소광제로 표지된 인간 텔로미어 i-모티프 DNA(물질 표)를 준비한다. 참고: 서열을 포함하는 i-모티프: 5'-TAA CCC TAA CCC TAA CCC TAA CCC TAA.</li>
	<li>DNA를 pH 5.5 또는 pH 7.4에서 30 mM MES 완충액에서 5 μM으로 희석한다. DNA 용액에, 0-60 μM의 농도 범위에서 Abraham Punnoose et al.13에 따라 합성된 리간드 L2H2-4OTD를 첨가한다. 용액을 10분 동안 부드럽게 혼합하여 빛이 없는 i-motif 구조를 접습니다.</li>
	<li>탈이온수로 채워진 반응 챔버의 배경 형광 강도를 전단 없이 형광 현미경을 사용하여 확인하고 최소화합니다. 배경 형광을 최소화하는 쉬운 방법은 반응 챔버를 DI 물로 세척하는 것입니다. 배경 형광 값은 나중에 데이터 분석에서 빼야 합니다. 알림: 이 단계부터 미광은 피해야 합니다.</li>
	<li>소프트웨어를 사용하여 CCD 카메라의 매개 변수를 설정합니다. 권장 파라미터는 노출 시간 = 0.5초, CCD 감도 = 1600, 녹화 시간 = 20분입니다.</li>
	<li>긴 피펫을 사용하여 DNA 용액을 비어 있고 깨끗한 반응 챔버에 추가합니다. 반응 챔버를 블랙 박스로 덮으십시오. 그런 다음 균질기를 시작하여 데이터를 기록하기 위해 CCD 카메라를 켠 상태에서 20분 동안 9,724s-1에서 97,245s-1(균질화기와 관련된 소프트웨어를 사용하여 선택됨) 범위의 선택된 전단 속도로 전단을 수행합니다.</li>
	<li>실험 후, 챔버를 제거하고 DI 물로 세척한다.</li>
</ol>3. 전단력 작동 클릭 반응
<ol><li>DI 물에서 i-모티프 DNA를 준비합니다. 150μM CuCl 및 300μM 아스코르브산이 보충된 300μL 트리스 완충액(pH 7.4)에 10μM i-모티프 DNA를 10분 동안 배양하여 i-모티프 구조를 접습니다(모든 농도는 용액 중 최종 농도임). 참고: CuCl은 클릭 반응의 촉매입니다. 아스 코르 빈산은 구리 (I) 산화를 방지합니다.</li>
	<li>한외여과 장치로 용액을 14,300 x g의 원심력으로 초여과한다. 각 여과 후 300μM 아스코르브산이 보충된 30mM 트리스 완충액(pH 7.4)으로 용액을 ~500μL까지 보충합니다.</li>
	<li>여과를 3 회 반복하십시오.</li>
	<li>잔류 용액을 수집하고 20μM 칼플루오르 488 아지드, 20μM HPG 및 10μM TBTA와 함께 300μM 아스코르브산이 보충된 30mM 트리스(pH 7.4)를 추가하여 300μL의 최종 부피를 만듭니다. 시약이 추가되면 용액을 암실로 옮깁니다. 알림: 이 단계 후에는 표시등을 피해야 합니다.</li>
	<li>전단 실험 전에 현미경을 사용하여 DI 물로 채워진 반응 챔버의 배경 형광 강도를 확인하고 최소화합니다. 배경 형광을 최소화하는 쉬운 방법은 반응 챔버를 DI 물로 세척하는 것입니다.</li>
	<li>DNA 용액을 긴 피펫으로 빈 반응 챔버에 넣은 다음 CCD 카메라를 켠 상태에서 20분 동안 63,209s-1의 전단 속도로 균질화기 전단을 시작합니다.</li>
	<li>실험 후, 챔버를 제거하고 DI 물로 세척한다.</li>
</ol>

<ol><li>Neuman, K. C., Nagy, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-molecule+force+spectroscopy%3A+Optical+tweezers%2C+magnetic+tweezers+and+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Single-molecule force spectroscopy: Optical tweezers, magnetic tweezers and atomic force microscopy.</a> Nature Methods. 5 (6), 491-505 (2008).</li>
<li>Woodside, M. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanomechanical+measurements+of+the+sequence-dependent+folding+landscapes+of+single+nucleic+acid+hairpins%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Nanomechanical measurements of the sequence-dependent folding landscapes of single nucleic acid hairpins.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (16), 6190-6195 (2006).</li>
<li>Grandbois, M., Beyer, M., Rief, M., Clausen-Schaumann, H., Gaub, H. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+strong+is+a+covalent+bond%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">How strong is a covalent bond.</a> Science. 283 (5408), 1727-1730 (1999).</li>
<li>Strick, T. R., Allemand, J. F., Bensimon, D., Croquette, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavior+of+supercoiled+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Behavior of supercoiled DNA.</a> Biophysical Journal. 74 (4), 2016-2028 (1998).</li>
<li>Yang, D., Ward, A., Halvorsen, K., Wong, W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiplexed+single-molecule+force+spectroscopy+using+a+centrifuge%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Multiplexed single-molecule force spectroscopy using a centrifuge.</a> Nature Communications. 7, 11026(2016).</li>
<li>Su, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Light-responsive+polymer+particles+as+force+clamps+for+the+mechanical+unfolding+of+target+molecules%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Letters%22%5BJournal%5D)">Light-responsive polymer particles as force clamps for the mechanical unfolding of target molecules.</a> Nano Letters. 18 (4), 2630-2636 (2018).</li>
<li>Kirkness, M. W. H., Forde, N. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-molecule+assay+for+proteolytic+susceptibility%3A+Force-induced+collagen+destabilization%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Single-molecule assay for proteolytic susceptibility: Force-induced collagen destabilization.</a> Biophysical Journal. 114 (3), 570-576 (2018).</li>
<li>Astumian, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thermodynamics+and+kinetics+of+molecular+motors%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Thermodynamics and kinetics of molecular motors.</a> Biophysical Journal. 98 (11), 2401-2409 (2010).</li>
<li>Bekard, I. B., Asimakis, P., Bertolini, J., Dunstan, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+shear+flow+on+protein+structure+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Biopolymers%22%5BJournal%5D)">The effects of shear flow on protein structure and function.</a> Biopolymers. 95 (11), 733-745 (2011).</li>
<li>Chistiakov, D. A., Orekhov, A. N., Bobryshev, Y. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+shear+stress+on+endothelial+cells%3A+go+with+the+flow%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Physiologica%22%5BJournal%5D)">Effects of shear stress on endothelial cells: go with the flow.</a> Acta Physiologica. 219 (2), 382-408 (2017).</li>
<li>Hu, C., Jonchhe, S., Pokhrel, P., Karna, D., Mao, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+unfolding+of+ensemble+biomolecular+structures+by+shear+force%5BTitle%5D)+AND+%22Chemical+Science%22%5BJournal%5D)">Mechanical unfolding of ensemble biomolecular structures by shear force.</a> Chemical Science. 12 (30), 10159-10164 (2021).</li>
<li>Sedghi Masoud, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+interactions+between+telomeric+i-motif+DNA+and+a+cyclic+tetraoxazole+compound%5BTitle%5D)+AND+%22ChemBioChem%22%5BJournal%5D)">Analysis of interactions between telomeric i-motif DNA and a cyclic tetraoxazole compound.</a> ChemBioChem. 19 (21), 2268-2272 (2018).</li>
<li>Abraham Punnoose, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adaptive+and+specific+recognition+of+telomeric+G-quadruplexes+via+polyvalency+induced+unstacking+of+binding+units%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Chemical+Society%22%5BJournal%5D)">Adaptive and specific recognition of telomeric G-quadruplexes via polyvalency induced unstacking of binding units.</a> Journal of the American Chemical Society. 139 (22), 7476-7484 (2017).</li>
<li>Dhakal, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coexistence+of+an+ILPR+i-motif+and+a+partially+folded+structure+with+comparable+mechanical+stability+revealed+at+the+single-molecule+level%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Chemical+Society%22%5BJournal%5D)">Coexistence of an ILPR i-motif and a partially folded structure with comparable mechanical stability revealed at the single-molecule level.</a> Journal of the American Chemical Society. 132 (26), 8991-8997 (2010).</li>
<li>Hu, C., Tahir, R., Mao, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-molecule+mechanochemical+sensing%5BTitle%5D)+AND+%22Accounts+of+Chemical+Research%22%5BJournal%5D)">Single-molecule mechanochemical sensing.</a> Accounts of Chemical Research. 55 (9), 1214-1225 (2022).</li>
</ol>

저자는 이해 상충이 없습니다.

이 원고에 설명 된 프로토콜을 사용하면 전단력에 의한 생체 분자 구조의 앙상블 세트의 전개를 실시간으로 조사 할 수 있습니다. 여기에 제시된 결과는 DNA i- 모티프 구조가 전단력에 의해 펼쳐질 수 있음을 강조합니다. 리간드 결합 i-모티프의 풀림과 전단력 작동 클릭 반응은 이 앙상블 힘 분광법의 개념 증명 응용 분야였습니다.
그림 1 은 기기 설정을 보여줍니다. 균질화기 발생기 팁과 반응 챔버는 서로 접촉해서는 안 되며, 이는 기포 형성 없이 회전자와 고정자 사이의 안정적인 전단 흐름을 허용하는 데 중요합니다. 상업용 균질화기 팁의 경우 기포 형성을 줄이기 위해 공기 구멍이 있는 팁을 선택하는 것이 좋습니다. 또한, 큰 챔버는 더 많은 샘플 용액을 필요로하기 때문에 반응 챔버의 크기가 너무 커서는 안됩니다. 반대로, 균질화기 팁의 본체를 덮기 위해 전단 챔버의 특정 높이가 필요합니다. 체계적인 오류를 줄이려면 모든 관련 실...

단일 분자 힘 분광법1(SMFS)에서 개별 분자 구조의 기계적 특성은 원자력 현미경, 광학 핀셋 및 자기 핀셋 2,3,4와 같은 정교한 도구에 의해 연구되었습니다. 힘 생성/검출 설정에서 분자의 동일한 방향성 요구 사항 또는 자기 핀셋 및 소형 원심분리기 힘 현미경(MCF)5,6,7,8의 작은 시야로 인해 제한되므로 SMFS를 사용하여 제한된 수의 분자만 동시에 조사할 수 있습니다. SMFS의 낮은 처리량은 많은 분자 세트의 개입을 필요로하는 분자 인식 분야에서의 광범위한 적용을 방해합니다.
전단 흐름은 거대한 분자 세트에 힘을 가하는 잠재적 솔루션을 제공합니다9. 채널 내부의 액체 흐름에서, 채널 표면에 가까울수록, 유량(10)은 느려진다. 이러한 유속 구배는 경계 표면에 평행한 전단 응력을 유발합니다. 분자가 이 전단 흐름에 배치될 때, 전단력이 장축(11)에 가해짐에 따라, 분자는 그 장축이 유동 방향과 정렬되도록 스스로 방향을 바꾼다. 이러한 방향 변경의 결과로 동일한 유형(핸들의 크기 및 길이)의 모든 분자가 동일한 전단력을 경험하면서 동일한 방향으로 정렬될 것으로 예상됩니다.
이 작업은 DNA i- 모티프에 의해 예시 된 바와 같이 거대한 분자 구조 세트에 전단력을 가하기 위해 이러한 전단 흐름을 사용하는 프로토콜을 설명합니다. 이 프로토콜에서는 균질화기 팁에서 회전자와 고정자 사이에 전단 흐름이 생성됩니다. 본 연구는 접힌 DNA i- 모티프 구조가 9724-97245 s-1의 전단 속도에 의해 펼쳐질 수 있음을 발견했다. 게다가, L2H2-4OTD 리간드와 i-모티프 사이에 36μM의 해리 상수가 발견되었다. 이 값은 겔 시프트 분석12에 의해 측정된 31 μM의 값과 일치한다. 또한, 현재 기술은 클릭 반응을 촉매하기 위해 킬레이트화된 구리(I)를 노출시킬 수 있는 i-모티프를 전개하는데 사용된다. 따라서 이 프로토콜을 사용하면 합리적인 시간(30분 미만)에 저비용 악기를 사용하여 대규모 i-motif 구조 세트를 펼칠 수 있습니다. 전단력 기술이 힘 분광법의 처리량을 크게 증가시킨다는 점을 감안할 때 이 기술을 앙상블 힘 분광법(EFS)이라고 합니다. 이 프로토콜은 이 전단력 기반 EFS의 적용을 용이하게 하기 위한 실험 지침을 제공하는 것을 목표로 합니다.

<table><tbody><tr><td>3K MWCO Amicon</td><td>Millipore Sigma</td><td>ufc900324</td><td></td></tr><tr><td>Ascorbic acid</td><td>VWR</td><td>VWRC0143-100G</td><td></td></tr><tr><td>Calfluor 488</td><td>azide Click Chemistry Tools</td><td>1369-1</td><td></td></tr><tr><td>CuCl</td><td>Thermo&nbsp;</td><td></td><td></td>ACRO270525000</tr><tr><td>분산 팁</td><td>스위스</td><td>PT-DA07/2EC-B101</td><td></td></tr><tr><td>DNA 올리고</td><td>IDT</td><td></td><td></td></tr><tr><td>염료</td><td>IDT</td><td>/5Cy5/</td><td></td></tr><tr><td>형광 현미경</td><td>Janpan</td><td>Nikon TE2000-U</td><td></td></tr><tr><td>균질화기</td><td>스위스</td><td>PT 3100D</td><td></td></tr><tr><td>HPG</td><td>산타크루즈 생명공학</td><td>cs-295271</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>VWR</td><td>VWRC26760.295</td><td></td></tr><tr><td>MES</td><td>VWR</td><td>VWRCE169-500G</td><td></td></tr><tr><td>담금질</td><td>IDT</td><td>/3IAbRQSp/</td><td></td></tr><tr><td>TBTA</td><td>도쿄 화학 공업</td><td>T2993</td><td></td></tr><tr><td>트리스</td><td>VWR</td><td>VWRCE133-100G</td><td></td></tr></tbody></table>

전단력에 의한 앙상블 힘 분광법

Ensemble Force Spectroscopy by Shear Forces

형광 및 기계화학적 원리에 기반한 단일 분자 기술은 생물학적 감지에서 우수한 감도를 제공합니다. 그러나 높은 처리량 기능이 없기 때문에 이러한 기술의 적용은 생물 물리학에서 제한적입니다. 앙상블 힘 분광법(EFS)은 개별 분자의 기계화학적 연구를 분자 앙상블의 연구로 변환하여 방대한 분자 구조 세트의 조사에서 높은 처리량을 입증했습니다. 이 프로토콜에서 DNA 2차 구조(i-모티프)는 최대 77796/s의 전단 속도로 균질화기 팁의 회전자와 고정자 사이의 전단 흐름에서 펼쳐졌습니다. 유속과 분자 크기가 i-모티프가 경험하는 전단력에 미치는 영향이 입증되었습니다. EFS 기술은 또한 DNA i- 모티프와 리간드 사이의 결합 친화도를 밝혀 냈습니다. 또한, 우리는 전단력(즉, 기계-클릭 화학)에 의해 작동될 수 있는 클릭 화학 반응을 시연했습니다. 이러한 결과는 분자 구조의 형태를 제어하기 위해 전단력을 사용하는 효과를 입증합니다.

그림 1은 EFS에서 앙상블 분자의 기계적 풀림 및 실시간 감지를 간략하게 설명합니다. 도 1B에서, i-모티프 DNA의 형광 강도는 pH 5.5 MES 완충액에서 9,724 s-1 내지 97,245 s-1 범위의 전단 속도에 따라 증가하는 것으로 관찰되었다. 대조군으로서, 동일한 i-모티프 DNA를 pH 7.4 MES 완충액에서 63,209 s-1의 속도로 전단했을 때 형광 강도는 증가하지 않았다. 이는 i-모티프가 pH 7.414에서 접히지 않기 때문이다. 이전 연구에서 우리는 전단 속도가 높을수록 i- 모티프11의 전개가 더 많다는 것을 발견했습니다. 광학 핀셋(11)에서 i-모티프의 전개에 기초하여, 우리...

앙상블 힘 분광법(EFS)은 생물물리학 및 생물감지 분야에서 생체 분자 구조의 앙상블 세트의 기계적 풀림 및 실시간 감지를 위한 강력한 기술입니다.

Single-molecule techniques based on fluorescence and mechanochemical principles provide superior sensitivity in biological sensing. However, due to the ...

이 프로토콜은 DNA와 리간드 사이의 분자간 결합을 연구하기 위한 고처리량 기술을 제공합니다. 이 기술은 방대한 생체 분자 구조 세트의 조사에서 높은 처리량을 입증했습니다. 개별 분자의 기계적 화학적 특성을 분자 앙상블의 기계적 특성으로 변환함으로써 그렇게 합니다.나는 그것이 매우 진보 된 실험이라고 생각하지만 비판적인 단계는 거의 없습니다. 예를 들어, 현미경, 균질화기 및 반응 튜브의 정렬. 형광의 변화를 정확하게 추적하기 위해서는 이 세 가지가 완벽하게 정렬되어야 합니다.먼저 균질화기와 현미경을 장착 테이블에 조립합니다. 고글을 착용한 후 형광 현미경을 켠 다음 균질화기를 조정하여 여기 광선이 균질화기의 분산 팁 중심을 통과하는지 확인합니다. 그런 다음 높이가 5cm, 단면적이 1.5 x 1.5 평방 센티미터인 평평한 바닥 반응 챔버를 준비하여 선택한 챔버 재료가 형광을 발하지 않도록 하여 배경을 줄입니다.그 후, 형광 현미경의 샘플 스테이지에 반응 챔버를 고정한 다음 균질화기의 분산 팁을 유지하도록 챔버를 조정하여 팁이 반응 챔버의 바닥 표면보다 약간 위에 있는지 확인합니다. 다음으로, 균질화기와 챔버의 수직 위치를 함께 조정하여 현미경의 초점이 분산 팁의 표면에 오도록 합니다. 그런 다음 분산 팁의 수평 위치를 조정하여 로터와 스테이터 사이에 감지 영역이 설정되었는지 확인합니다.실험에 사용된 형광 염료에 따라 형광 채널을 켭니다. 고속 전단 실험 전에 탈 이온수를 사용하여 낮은 전단 속도로 전단을 테스트했습니다. 먼저, 원고에 기재된 바와 같이 탈이온수에서 각각 염료 및 소광제로 표지된 인간 텔로미어 i-모티프 DNA를 탈이온수에서 준비한다.다음으로, DNA를 pH 5.5 또는 pH 7.4에서 30 밀리몰 MES 완충액에서 5 마이크로몰로 희석한다. DNA 용액에 0에서 60 마이크로 몰 범위의 리간드 L2H24OTD "를 첨가하고 용액을 10 분 동안 부드럽게 혼합하여 빛없이 i- 모티프 구조를 접습니다. 탈이온수로 채워진 반응 챔버의 배경 형광 강도를 전단 없이 형광 현미경을 사용하여 확인하고 최소화합니다.그런 다음 노출 시간이 0.5 초, CCD 감도가 1, 600, 녹화 시간이 20 분인 소프트웨어를 사용하여 CCD 카메라의 매개 변수를 설정하십시오. 긴 피펫을 사용하여 DNA 용액을 비어 있고 깨끗한 반응 챔버에 넣고 반응 챔버를 블랙 박스로 덮습니다. 그런 다음 균질기를 시작하여 CCD 카메라를 켜서 데이터를 기록하기 위해 20 분 동안 초당 9, 724에서 초당 97, 245 범위의 선택된 전단 속도로 전단을 수행합니다.실험 후, 챔버를 제거하고 탈 이온수로 세척한다. i-모티프 DNA와 탈이온수를 준비합니다. 이어서, 10 마이크로몰 i-모티프 DNA 및 150 마이크로몰 염화구리 및 300 마이크로몰 아스코르브산이 보충된 300 마이크로몰 트리스 완충액을 10분 동안 인큐베이션하여 i-모티프 구조를 접는다.다음으로 울트라 여과 장치로 용액을 14, 300 배의 원심력으로 G. 각 여과 후 300 마이크로 몰 아스코르브 산이 보충 된 30 밀리몰 트리스 완충액으로 용액을 약 500 마이크로 리터로 보충합니다. 잔류 용액을 수집 한 후 300 마이크로 몰 아스코르브 산이 보충 된 30 밀리몰 트리스와 20 마이크로 몰 CalFluor 488 Azide, 20 마이크로 몰 HPG 및 10 마이크로 몰 TBTA를 추가하여 300 마이크로 리터의 최종 부피를 만듭니다. 시약이 추가되면 용액을 암실로 옮깁니다.그런 다음 전단 실험 전에 현미경을 사용하여 탈이온수로 채워진 반응 챔버의 배경 형광 강도를 확인하고 최소화합니다. 다음으로, DNA 용액을 긴 피펫으로 빈 반응 챔버에 넣은 다음 CCD 카메라를 켠 상태에서 20 분 동안 초당 63, 209의 전단 속도로 균질 기 전단을 시작합니다. 실험 후, 챔버를 제거하고 탈 이온수로 세척한다.i-motif DNA의 형광 강도는 pH 5.5 MES 완충액에서 초당 9, 724에서 초당 97, 245 범위의 순전한 속도로 증가하는 것으로 관찰되었다. 그러나, 동일한 i-motif DNA가 MES 완충액에서 pH 7.4에서 접히지 않기 때문에 초당 63, 209의 속도로 전단되었을 때 형광 강도는 증가하지 않았다. 순전히 흐름을 거친 DNA i-모티프 분자에 대한 리간드 결합을 평가한 결과, 리간드 농도가 증가함에 따라 형광 강도의 증가가 덜 분명해진다는 것을 보여주었습니다.해리 상수는 리간드와 i-모티프 사이의 상호작용에 대해 결정되었고, 34 마이크로몰로 밝혀졌다. 구리 1 킬레이트 i- 모티프는 초당 63, 209 전단 속도로 펼쳐졌으며, 방출 된 구리 하나는 형광 클릭 반응을 유발하여 시간이 지남에 따라 형광 강도가 증가했습니다. 먼저 로터와 스테이터 사이에 감지 영역이 설정되어 있는지 확인하십시오.둘째, 형광 배경을 확인하고 최소화합니다. 마지막으로 클릭 반응을 수행하기 전에 반응을 필터링해야 합니다. 이 방법은 모든 종류의 폴리머를 접고 펼치는 기계적 강도를 탐색하는 관문을 엽니다.다른 DNA 구조, 단백질 또는 기타 폴리머 및 다른 종류의 분자와의 상호 작용 일 수 있습니다. 말했듯이 이 접근법을 사용하여 몇 가지 다른 거대분자를 연구할 수 있습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Bioengineering

생명공학

이것은 목적, 운영, 그리​​고 소설 중력이 분석기의 결과를 보여주는 대표을 단계별로 안내합니다.

섬유 단백질을 늘이기 및 측정 소설 중력 포스 분석기의 사용을 보여주는

셀룰로솜은 셀룰로오스를 소화하도록 설계된 다효소 복합체입니다. AFM 기반 SMFS는 셀룰로솜 관련 단백질 어셈블리의 기계적 특성과 접힘 구성을 연구하는 데 사용되었습니다. 우리는 셀룰로솜 조립에 관여하는 개별 수용체-리간드 복합체의 상호 작용을 연구하기 위해 단백질 고정화, 데이터 수집 및 데이터 분석을 위한 완전한 워크플로우를 제시합니다.

AFM 기반 Single-molecule Force Spectroscopy를 사용한 셀룰로솜의 수용체-리간드 시스템 조사

다양한 단일 분자를 AFM 팁에 공유 결합하는 프로토콜이 제시됩니다. 고체 지지체 및 생체 계면에서 이러한 분자의 접착력과 자유 에너지를 결정하기 위한 절차와 예가 제공됩니다.

원자 힘 분광학에 의해 단일 ​​분자 접착 조사

원자력 현미경 및 힘 분광법을 사용하여 지원되는 지질 이중층의 준비 및 특성화를 위한 프로토콜을 설명합니다.

원자 힘 현미경 이미징 및 지원 지질 이중층의 힘 분광학

여기서 우리는 원 자간 력 현미경 (AFM)을 사용하여 단일 분자 힘 분광법 측정에 의해 잘 정의 된 무기 표면 중 펩티드 또는 아미노산의 상호 작용의 힘을 측정하기위한 프로토콜을 제시한다. 측정으로부터 얻어진 정보는 더 펩타이드 무기물 계면을 이해하는 것이 중요하다.

단일 분자 힘 분광학을 사용하여 무기 재료와 아미노산 및 펩타이드의 상호 작용에 대한 통찰력

우리는 상세한 절차 및 전략 기계적 특성 및 기계적 전개 경로 원자 힘 현미경을 사용 하 여 단일 단백질 분자의 측정을 설명 합니다. 우리는 또한 선택과 좋은 단일 단백질 분자 기록의 정당성에 대 한 참조로 대표적인 결과 보여줍니다.

원자 힘 현미경을 사용 하 여 단일 단백질 분자 힘 분광학

이 프로토콜에 설명 합니다 heterobifunctional 실 란 커플링 에이전트와 원자 힘 현미경 검사 법 기반 단일 분자 힘 분광학을 위한 실리콘 산화물 표면에 의해 궁 행 되는 단백질의 화학식 동원 정지는 RrgA의 상호 작용 (pilus-1 팁 adhesin의 S. 균) fibronectin 함께.

단일 분자 힘 분광학에 대 한 단백질의 화학식 동원 정지

원자력 현미경 검사법 (AFM) 캔틸레버 팁에 프로브 분자의 공유 부착은 물리적 특성의 조사를위한 필수적인 기술입니다. 이를 통해 높은 재현성을 가진 AFM 기반 단일 분자 힘 분광학을 통해 연신력, 탈착력 및 폴리머 길이를 결정할 수 있습니다.

AFM 기반 힘 분광학을 위한 단일 분자의 공유 부착

여기에 제시된 것은 공정 myosin-5 모터에 대한 초고속 포스 클램프 실험을 수행하는 포괄적인 프로토콜이며, 이는 다른 등급의 공정 모터 연구로 쉽게 확장될 수 있습니다. 프로토콜은 실험 장치의 설정에서 샘플 준비, 데이터 수집 및 분석에 이르기까지 필요한 모든 단계를 자세히 설명합니다.

초고속 포스 클램프 분광법을 사용한 공정 미오신의 기계적 효소 특성 해부

여기에서는 최대 1.2kHz의 속도로 힘에 민감한 생체 분자에 대한 나노기계적 측정을 수행하는 고속 자기 핀셋 설정에 대해 설명합니다. 우리는 모델 시스템으로 DNA 헤어핀과 SNARE 복합체에 대한 적용을 소개하지만 기계 생물학적 사건에 관여하는 다른 분자에도 적용 할 수 있습니다.

힘에 민감한 요소에 대한 나노 역학 측정을 위한 고속 자기 핀셋

학습하세요 전단력에 의한 앙상블 힘 분광법을 통해 DNA와 리간드 간 상호작용을 고효율로 연구하는 방법을. 형광 추적과 실시간 감지로 생물분자 구조의 기계적 특성을 분석할 수 있습니다.

전단력에 의한 앙상블 힘 분광법

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