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전단력에 의한 앙상블 힘 분광법
전단력에 의한 앙상블 힘 분광법
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JoVE Journal Bioengineering
Ensemble Force Spectroscopy by Shear Forces

전단력에 의한 앙상블 힘 분광법

Full Text
1,817 Views
07:30 min
July 26, 2022

DOI: 10.3791/63741-v

Pravin Pokhrel1, Changpeng Hu1, Hanbin Mao1

1Department of Chemistry & Biochemistry,Kent State University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

앙상블 힘 분광법(EFS)은 생물물리학 및 생물감지 분야에서 생체 분자 구조의 앙상블 세트의 기계적 풀림 및 실시간 감지를 위한 강력한 기술입니다.

이 프로토콜은 DNA와 리간드 사이의 분자간 결합을 연구하기 위한 고처리량 기술을 제공합니다. 이 기술은 방대한 생체 분자 구조 세트의 조사에서 높은 처리량을 입증했습니다. 개별 분자의 기계적 화학적 특성을 분자 앙상블의 기계적 특성으로 변환함으로써 그렇게 합니다.

나는 그것이 매우 진보 된 실험이라고 생각하지만 비판적인 단계는 거의 없습니다. 예를 들어, 현미경, 균질화기 및 반응 튜브의 정렬. 형광의 변화를 정확하게 추적하기 위해서는 이 세 가지가 완벽하게 정렬되어야 합니다.

먼저 균질화기와 현미경을 장착 테이블에 조립합니다. 고글을 착용한 후 형광 현미경을 켠 다음 균질화기를 조정하여 여기 광선이 균질화기의 분산 팁 중심을 통과하는지 확인합니다. 그런 다음 높이가 5cm, 단면적이 1.5 x 1.5 평방 센티미터인 평평한 바닥 반응 챔버를 준비하여 선택한 챔버 재료가 형광을 발하지 않도록 하여 배경을 줄입니다.

그 후, 형광 현미경의 샘플 스테이지에 반응 챔버를 고정한 다음 균질화기의 분산 팁을 유지하도록 챔버를 조정하여 팁이 반응 챔버의 바닥 표면보다 약간 위에 있는지 확인합니다. 다음으로, 균질화기와 챔버의 수직 위치를 함께 조정하여 현미경의 초점이 분산 팁의 표면에 오도록 합니다. 그런 다음 분산 팁의 수평 위치를 조정하여 로터와 스테이터 사이에 감지 영역이 설정되었는지 확인합니다.

실험에 사용된 형광 염료에 따라 형광 채널을 켭니다. 고속 전단 실험 전에 탈 이온수를 사용하여 낮은 전단 속도로 전단을 테스트했습니다. 먼저, 원고에 기재된 바와 같이 탈이온수에서 각각 염료 및 소광제로 표지된 인간 텔로미어 i-모티프 DNA를 탈이온수에서 준비한다.

다음으로, DNA를 pH 5.5 또는 pH 7.4에서 30 밀리몰 MES 완충액에서 5 마이크로몰로 희석한다. DNA 용액에 0에서 60 마이크로 몰 범위의 리간드 L2H24OTD "를 첨가하고 용액을 10 분 동안 부드럽게 혼합하여 빛없이 i- 모티프 구조를 접습니다. 탈이온수로 채워진 반응 챔버의 배경 형광 강도를 전단 없이 형광 현미경을 사용하여 확인하고 최소화합니다.

그런 다음 노출 시간이 0.5 초, CCD 감도가 1, 600, 녹화 시간이 20 분인 소프트웨어를 사용하여 CCD 카메라의 매개 변수를 설정하십시오. 긴 피펫을 사용하여 DNA 용액을 비어 있고 깨끗한 반응 챔버에 넣고 반응 챔버를 블랙 박스로 덮습니다. 그런 다음 균질기를 시작하여 CCD 카메라를 켜서 데이터를 기록하기 위해 20 분 동안 초당 9, 724에서 초당 97, 245 범위의 선택된 전단 속도로 전단을 수행합니다.

실험 후, 챔버를 제거하고 탈 이온수로 세척한다. i-모티프 DNA와 탈이온수를 준비합니다. 이어서, 10 마이크로몰 i-모티프 DNA 및 150 마이크로몰 염화구리 및 300 마이크로몰 아스코르브산이 보충된 300 마이크로몰 트리스 완충액을 10분 동안 인큐베이션하여 i-모티프 구조를 접는다.

다음으로 울트라 여과 장치로 용액을 14, 300 배의 원심력으로 G. 각 여과 후 300 마이크로 몰 아스코르브 산이 보충 된 30 밀리몰 트리스 완충액으로 용액을 약 500 마이크로 리터로 보충합니다. 잔류 용액을 수집 한 후 300 마이크로 몰 아스코르브 산이 보충 된 30 밀리몰 트리스와 20 마이크로 몰 CalFluor 488 Azide, 20 마이크로 몰 HPG 및 10 마이크로 몰 TBTA를 추가하여 300 마이크로 리터의 최종 부피를 만듭니다. 시약이 추가되면 용액을 암실로 옮깁니다.

그런 다음 전단 실험 전에 현미경을 사용하여 탈이온수로 채워진 반응 챔버의 배경 형광 강도를 확인하고 최소화합니다. 다음으로, DNA 용액을 긴 피펫으로 빈 반응 챔버에 넣은 다음 CCD 카메라를 켠 상태에서 20 분 동안 초당 63, 209의 전단 속도로 균질 기 전단을 시작합니다. 실험 후, 챔버를 제거하고 탈 이온수로 세척한다.

i-motif DNA의 형광 강도는 pH 5.5 MES 완충액에서 초당 9, 724에서 초당 97, 245 범위의 순전한 속도로 증가하는 것으로 관찰되었다. 그러나, 동일한 i-motif DNA가 MES 완충액에서 pH 7.4에서 접히지 않기 때문에 초당 63, 209의 속도로 전단되었을 때 형광 강도는 증가하지 않았다. 순전히 흐름을 거친 DNA i-모티프 분자에 대한 리간드 결합을 평가한 결과, 리간드 농도가 증가함에 따라 형광 강도의 증가가 덜 분명해진다는 것을 보여주었습니다.

해리 상수는 리간드와 i-모티프 사이의 상호작용에 대해 결정되었고, 34 마이크로몰로 밝혀졌다. 구리 1 킬레이트 i- 모티프는 초당 63, 209 전단 속도로 펼쳐졌으며, 방출 된 구리 하나는 형광 클릭 반응을 유발하여 시간이 지남에 따라 형광 강도가 증가했습니다. 먼저 로터와 스테이터 사이에 감지 영역이 설정되어 있는지 확인하십시오.

둘째, 형광 배경을 확인하고 최소화합니다. 마지막으로 클릭 반응을 수행하기 전에 반응을 필터링해야 합니다. 이 방법은 모든 종류의 폴리머를 접고 펼치는 기계적 강도를 탐색하는 관문을 엽니다.

다른 DNA 구조, 단백질 또는 기타 폴리머 및 다른 종류의 분자와의 상호 작용 일 수 있습니다. 말했듯이 이 접근법을 사용하여 몇 가지 다른 거대분자를 연구할 수 있습니다.

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