RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
- Skóra jest złożonym narządem składającym się z różnych populacji komórek ułożonych w wielu warstwach. CUBIC, trójwymiarowa technika obrazowania oparta na oczyszczaniu tkanek, pomaga wizualizować wzorce ekspresji białek wewnątrz tych komórek skóry za pomocą biopsji całej skóry. Zacznij od wzięcia uśpionej myszy i usunięcia włosów z jej grzbietowej części szyi. Wytnij kawałek skóry i pokrój go na małe kawałki.
Zanurz kawałki w roztworze oczyszczającym CUBIC1 i inkubuj. Komórki skóry są nieprzezroczyste, ze względu na obecność chromoforów i lipidów, które powodują rozpraszanie światła. Substancje chemiczne zawarte w roztworze CUBIC usuwają te cząsteczki, zmniejszając w ten sposób rozpraszanie światła i sprawiając, że tkanka staje się przezroczysta.
Następnie potraktuj tkankę pożądanymi przeciwciałami pierwotnymi, które wiążą się specyficznie z docelowymi białkami wewnątrzkomórkowymi ulegającymi ekspresji w komórkach skóry. Ponadto należy leczyć fluorescencyjnie znakowanymi przeciwciałami drugorzędowymi, które wiążą się z kompleksami białkowo-pierwszorzędowymi przeciwciałami. Przeciwbarwić tkankę barwnikiem wiążącym DNA, który barwi jądro.
Na koniec zanurz próbkę w roztworze CUBIC2. Rozwiązanie dodatkowo zmniejsza rozpraszanie światła w tkance, czyniąc ją bardziej przezroczystą do obrazowania. Obserwuj pod mikroskopem konfokalnym, aby uwidocznić fluorescencyjnie znakowane obszary zainteresowania w trójwymiarowej próbce. Poniższy protokół umożliwia wizualizację ekspresji markerów proliferacji keratynocytów w biopsjach skóry całego wierzchowca przy użyciu protokołu CABIC.
- Zacznij od użycia trymerów do zgolenia włosów z szyi myszy poddanej eutanazji, uważając, aby nie zranić skóry. Następnie odkaż skórę 70% etanolem w PBS. Następnie podnieś skórę grzbietu szyi za pomocą kleszczy i za pomocą nożyczek usuń około 1,5 na 4 centymetry powierzchni grzbietowej skóry myszy. Następnie spłaszcz skórę, stroną właściwą do dołu, na kawałku bibuły filtracyjnej, zwracając uwagę na orientację przednią i tylną próbkę i przytnij bibułę wokół wypreparowanej skóry.
- Aby uzyskać optymalne obrazowanie, próbki skóry muszą pozostać płaskie ze stałą orientacją mieszków włosowych. Aby utrzymać próbki we właściwej pozycji przednio-tylnej, mocujemy kawałki skóry na bibule filtracyjnej w biopsjach prostokątnych.
- Przenieś próbki do 15-mililitrowej probówki wypełnionej świeżo przygotowanym 4% PFA w PBS. Następnie, gdy zostaną mocno przymocowane do bibuły filtracyjnej, przenieś próbki do nowej 15-mililitrowej probówki PBS na dwa 5-minutowe płukania.
Aby usunąć biopsje skóry po drugim myciu, użyj ostrej żyletki, aby pociąć tkanki na kawałki o wymiarach około 0,2 na 0,5 centymetra, uważając, aby dłuższe boki próbek były przecięte wzdłuż kierunku przednio-tylnego próbek.
- Przecięcie dłuższego boku biopsji równolegle do orientacji mieszków włosowych pomaga również uniknąć rozległych uszkodzeń mieszków włosowych.
- Następnie zanurz biopsje w 5 mililitrach świeżo przygotowanego roztworu oczyszczającego CUBIC1 w nowej 15-mililitrowej probówce i umieść probówkę na obrotowej platformie w piecu hybrydyzacyjnym w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Gdy kawałki tkanki staną się przezroczyste, umyj biopsje w 4 mililitrach PBS przez cztery 6-godzinne płukania w temperaturze 37 stopni Celsjusza, a następnie 4-godzinne płukanie w temperaturze 37 stopni Celsjusza w 20% wagowo sacharozy w PBS.
Pod koniec inkubacji każdą próbkę należy zamrozić w związku o optymalnej temperaturze cięcia w pojedynczych 15-mililitrowych probówkach przez noc w temperaturze minus 80 stopni Celsjusza, aby zwiększyć przepuszczalność tkanek dla penetracji przeciwciał.
Następnego ranka zabarwić próbki skóry odpowiednimi przeciwciałami i ważnymi barwnikami, które Cię interesują. Następnie inkubuj próbki w 1 mililitrze świeżo przygotowanego roztworu klarującego CUBIC2 w 2-mililitrowych probówkach na wytrząsarce przez 24 godziny w piekarniku o temperaturze 37 stopni Celsjusza, aby wyrównać współczynnik załamania światła tkanek.
Gdy tkanki są czyste, należy umieścić biopsje wzdłuż dłuższego boku poszczególnych szkiełek szklanych w taki sposób, aby kierunek wzrostu mieszków włosowych był równoległy do powierzchni szkiełka nakrywkowego. Umieść jedną kroplę roztworu CUBIC2 na tkankę. Umieść dwa paski niebieskiego kleju o wymiarach 1 milimetr na 2 centymetry na szkiełku nakrywkowym. Następnie przykryj biopsję drugim szkiełkiem nakrywkowym.
Następnie umieść komorę obrazowania na stoliku mikroskopu konfokalnego i przenieś tkankę na ścieżkę światła. Używając odpowiedniego źródła światła i standardowych filtrów epifluorescencyjnych, zeskanuj próbkę, aby zidentyfikować obszary zainteresowania wybarwione fluorescencyjnie. Następnie uzyskaj fluorescencyjne obrazy konfokalne obszarów zainteresowania.