$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Weźmy kulturę genetycznie modyfikowanych bakterii.
Bakterie są indukowane do ekspresji zmutowanego wariantu polimerazy DNA z wadliwą aktywnością korektorską, co zwiększa szanse na błąd replikacji.
Błędy te mogą prowadzić do spontanicznych mutacji w regionie regulatorowym, które depreparują gen beta-glukozydazy i wyzwalają ekspresję enzymu beta-glukozydazy.
Pobieraj próbki w regularnych odstępach czasu i oceniaj liczbę pokoleń bakterii w każdej kulturze. Odwirować próbki i odrzucić supernatant.
Ponownie zawiesić osad w buforze.
Dodaj roztwór przepuszczalny i wymieszaj, aby przepuszczalność błony bakteryjnej.
Przenieść przepuszczalne próbki bakterii na płytkę wielodołkową.
Dodaj substrat, który wnika do bakterii i reaguje z enzymem beta-glukozydazy, tworząc kolorowy produkt.
Zmierz intensywność koloru, aby określić aktywność beta-glukozydazy.
Przeanalizuj aktywność beta-glukozydazy w kulturach bakteryjnych, aby określić częstotliwość mutacji w różnych pokoleniach.
Przenieś pojedynczą kolonię E. coli TOP10 zawierającą wektory pBAD-ε i pGOOD1-εD12A11 do jednego mililitra pożywki LB poddanej działaniu antybiotyków.
Inkubuj kulturę przez noc w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Następnego ranka rozcieńczyć kulturę wstępną od 1 do 250 w trzech kolbach zawierających 10 mililitrów świeżej pożywki. Dodać po jednym milimolowym induktorze arabinozy, IPTG lub arabinozy i IPTG i inkubować indukowaną kulturę w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez osiem godzin.
Przygotuj równolegle kultury nieindukowane. Zebrać jedną mililitrową porcję i rozcieńczyć ją od 1 do 500 w nowych kolbach zawierających 10 mililitrów świeżej pożywki, uzupełnionej lub nieuzupełnionej induktorami. Następnie inkubuj mieszaninę przez noc w temperaturze 37 stopni Celsjusza.
Następnego dnia powtórz kroki, zaczynając od rozcieńczenia kultury wstępnej i zbierz jedną mililitrową porcję. Podwielokrotności umieszcza się następnie w zamrażarce.
Następnie określ liczbę pokoleń, które wystąpiły w każdej kulturze. Przenieść 100 mikrolitrów odpowiednich seryjnych rozcieńczeń inokulum i kultury na płytki LB.
Inkubuj płytki przez noc w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Następnego ranka policz kolonie na płytkach LB.
Obliczyć logarytm liczby komórek obecnych w inokulum lub logarytmie I oraz w kulturze pod koniec wzrostu lub logarytmu C i określić liczbę pokoleń.
Następnie odwirować kulturę w temperaturze 5,000 g przez 20 minut i ponownie zawiesić komórki w jednym mililitrze 50 milimolowych tris HCL, pH 7,6, 50 milimolowych NaCl.
Aby przeniknąć komórki, dodaj dwie do trzech kropli chloroformu i wiruj przez 20 sekund.
Na koniec określ aktywność glukozydazy każdej podwielokrotności w 96-dołkowej mikropłytce.
Do każdej studzienki dodać 100 mikrolitrów przepuszczalnych komórek i 100 mikrolitrów substratu p-nitrofenylo-D-glukopiranozydowego, unikając tworzenia się pęcherzyków powietrza w studzienkach.
Odczytać absorbancję przy 420 nanometrach za pomocą czytnika mikropłytek i filtra.