JoVE Encyclopedia of Experiments
Immunologia
0 wyświetleń • 3:05 min • July 8th, 2025
Weźmy probówki cytometru przepływowego zawierające dzikie i zmutowane szczepy Haemophilus influenzae, typu f.
Odpipetować bufor zawierający białka blokujące i witronektynę. Inkubować.
Białka blokujące redukują niespecyficzne interakcje na powierzchni bakterii, podczas gdy cząsteczki witronektyny wiążą się z białkiem H, białkiem wiążącym witronektynę, na powierzchniach bakterii typu dzikiego. W zmutowanym szczepie witronektyna nie wiąże się z powodu braku białka H.
wirówka. Usuń niezwiązaną witronektynę i białka blokujące.
Dodać bufor zawierający pierwszorzędowe przeciwciała anty-witronektyny, które specyficznie wiążą się z witronektyną przyczepioną do powierzchni bakterii typu dzikiego.
Następnie wprowadź przeciwciała drugorzędowe sprzężone z fluoroforem, które wiążą się z pierwszorzędowymi przeciwciałami na witronektynie i ułatwiają wykrywanie witronektyny.
wirówka. Usuń niezwiązane przeciwciała drugorzędowe. Ponownie zawieś bakterie w buforze.
Wykonaj cytometrię przepływową, aby określić wiązanie witronektyny z powierzchnią bakterii.
Porównaj sygnały fluorescencji szczepów typu dzikiego i zmutowanego. Przesunięcie sygnału fluorescencyjnego u bakterii typu dzikiego potwierdza wiązanie witronektyny z powierzchnią bakterii.
Aby przygotować się do cytometrii przepływowej, należy ponownie zawiesić osady bakteryjne za pomocą 50 mikrolitrów buforu blokującego zawierającego 250 nanomolowych witronektyny. Następnie inkubować próbki przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej bez wstrząsania. Po inkubacji osadzać bakterie przez odwirowanie przy 3,500 x g przez 5 minut. Następnie umyj granulki trzy razy za pomocą PBS i podobnych etapów wirowania.
Po umyciu dodać 50 mikrolitrów pierwotnych przeciwciał poliklonalnych przeciwko ludzkiej witronektynie owcom do osadu bakteryjnego, w rozcieńczeniu od 1 do 100 w PBS/BSA. Inkubować zawiesinę przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej. Następnie przemyj bakterie trzykrotnie PBS, aby usunąć niezwiązane przeciwciała.
Następnie dodaj 50 mikrolitrów PBS / BSA zawierających poliklonalne przeciwciała poliklonalne przeciwko owcom skoniugowane izotiocyjanianem fluoresceiny do osadu. Inkubować w temperaturze pokojowej przez 1 godzinę w ciemności. Na koniec, po trzech etapach mycia, ponownie zawieś osad bakteryjny za pomocą 300 mikrolitrów PBS i przeanalizuj za pomocą cytometrii przepływowej.
W niniejszym badaniu za pomocą cytometrii przepływowej zbadano wiązanie witronektyny do szczepów typu dzikiego oraz szczepów zmutowanych Haemophilus influenzae typu f. Obecność białka H w szczepach typu dzikiego umożliwia wiązanie witronektyny, podczas gdy w szczepach zmutowanych oddziaływanie to nie występuje.
Ilościowe wykrywanie wiązania witronektyny z powierzchniami bakteryjnymi za pomocą cytometrii przepływowej umożliwia precyzyjną analizę oddziaływań między gospodarzem a patogenem na poziomie molekularnym. Podejście to wspiera wczesną walidację celów orazB zmniejszenie ryzyka mechanistycznego w portfelach badawczych nad nowymi środkami przeciwdrobnoustrojowymi. Niezawodny pomiar oddziaływań białko-ligand zwiększa pewność prognostyczną w wyborze kandydatów i badaniach translacyjnych.
Ta metoda detekcji oparta na cytometrii przepłyewowej integruje się z kontinuum od odkrywania do etapu przedklinicznego w badaniach i rozwoju leków przeciwzakaźnych.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026