Test oparty na fluorescencji z wykorzystaniem zmodyfikowanych limfocytów do badań przesiewowych związków immunomodulujących

0 views • 2:57 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Rozpocząć od kompatybilnej z fluorescencją płytki wielodołkowej zawierającej zawiesinę transgenicznych limfocytów T pochodzących od myszy.

Limfocyty te zawierają zielone białko fluorescencyjne lub kasetę ekspresyjną GFP, kontrolowane przez receptor limfocytów T lub zaangażowanie TCR ze związkami immunomodulującymi.

Każdą studzienkę należy potraktować roztworem zawierającym związki immunomodulujące o różnym potencjale.

Podczas inkubacji związki immunomodulujące oddziałują z TCR na limfocytach T.

Interakcja TCR ze związkiem stymulującym wyzwala aktywację kasety genu, zwiększając ekspresję GFP.

W przeciwieństwie do tego, interakcja TCR ze związkiem hamującym hamuje kasetę genu i zmniejsza ekspresję GFP.

Następnie nałóż komórki na barwnik fluorescencyjny kwasu nukleinowego, aby zabarwić jądra.

Odwirować płytkę, aby osadzić komórki w celu dokładnego pomiaru fluorescencji.

Pod mikroskopem fluorescencyjnym żywotne limfocyty T wykazują dwa sygnały fluorescencyjne odpowiadające jądrom komórkowym i zielonym białkom fluorescencyjnym.

Zintensyfikowana zielona fluorescencja oznacza udaną stymulację limfocytów T, natomiast słaby wewnątrzkomórkowy sygnał zielonej fluorescencji potwierdza hamujące działanie związków immunomodulujących na limfocyty T.

W przypadku wysokoprzepustowych badań przesiewowych małych cząsteczek należy umieścić 40 mikrolitrów komórek na studzience na płytce 384-dołkowej i potraktować odpowiednie studzienki wybranym lekiem lub nośnikiem przez żądany okres leczenia w inkubatorze hodowli komórkowych.

Na 30 minut przed analizą GFP należy wybarwić komórki roztworem Hoechsta o odpowiednim stężeniu, dokładnie rozprowadzając barwnik za pomocą delikatnego pipetowania. Gdy wszystkie studzienki zostaną zabarwione, odwirować płytki, aby zebrać komórki na dnie studzienek i pozostawić komórki na 15 minut w temperaturze pokojowej.

Załaduj płytę zgodnie z instrukcjami producenta. Następnie ustaw obiektyw na 40X lub więcej. Ustaw kamerę numer 4 dla lampy UV, a następnie ustaw kamerę numer 1 dla lasera 488. Załaduj płytkę do systemu przesiewania o wysokiej zawartości. Następnie ustaw zautomatyzowany konfokalny system przesiewowy o wysokiej zawartości tak, aby odczytywał od 6 do 10 pól na studzienkę, z dwoma sekwencyjnymi odczytami na pole przy 488 nanometrach i świetle UV.

09:44

Wysokoprzepustowe badania przesiewowe pod kątem chemicznych modulatorów genów regulowanych potranskrypcyjnie

Related Videos

0 Views

11:31

Opracowanie wysokowydajnego zestawu do badań przesiewowych małych cząsteczek, które modulują sygnalizację c-di-GMP u Pseudomonas aeruginosa

Related Videos

0 Views

10:28

System badań przesiewowych leków oparty na cytometrii przepływowej do identyfikacji małych cząsteczek, które promują różnicowanie komórkowe komórek macierzystych glejaka

Related Videos

0 Views

14:01

Supresja in vitro u ludzi jako narzędzie przesiewowe do rozpoznawania wczesnego stanu nierównowagi immunologicznej

Related Videos

0 Views

03:00

Test do oceny immunodominacji w odpowiedziach cytotoksycznych limfocytów T

Related Videos

0 Views

02:46

Test in vitro do oceny immunomodulacyjnego wpływu monocytów na proliferację leukocytów

Related Videos

0 Views

12:09

Zastosowanie fluorescencyjnych macierzy docelowych do oceny odpowiedzi limfocytów T in vivo

Related Videos

0 Views

08:04

Opracowanie testu ELISpot IFN-γ do oceny odporności komórkowej specyficznej dla wirusa ospy wietrznej i półpaśca po przeszczepieniu krwi pępowinowej

Related Videos

0 Views

08:08

Izolacja i aktywacja mysich limfocytów

Related Videos

0 Views

08:43

Test limfocytów oparty na fluorescencji, odpowiedni do wysokoprzepustowych badań przesiewowych małych cząsteczek

Related Videos

0 Views

Last updated: 4 July 2026