JoVE Encyclopedia of Experiments
Immunologia
0 wyświetleń • 2:57 min • July 8th, 2025
Rozpocząć od kompatybilnej z fluorescencją płytki wielodołkowej zawierającej zawiesinę transgenicznych limfocytów T pochodzących od myszy.
Limfocyty te zawierają zielone białko fluorescencyjne lub kasetę ekspresyjną GFP, kontrolowane przez receptor limfocytów T lub zaangażowanie TCR ze związkami immunomodulującymi.
Każdą studzienkę należy potraktować roztworem zawierającym związki immunomodulujące o różnym potencjale.
Podczas inkubacji związki immunomodulujące oddziałują z TCR na limfocytach T.
Interakcja TCR ze związkiem stymulującym wyzwala aktywację kasety genu, zwiększając ekspresję GFP.
W przeciwieństwie do tego, interakcja TCR ze związkiem hamującym hamuje kasetę genu i zmniejsza ekspresję GFP.
Następnie nałóż komórki na barwnik fluorescencyjny kwasu nukleinowego, aby zabarwić jądra.
Odwirować płytkę, aby osadzić komórki w celu dokładnego pomiaru fluorescencji.
Pod mikroskopem fluorescencyjnym żywotne limfocyty T wykazują dwa sygnały fluorescencyjne odpowiadające jądrom komórkowym i zielonym białkom fluorescencyjnym.
Zintensyfikowana zielona fluorescencja oznacza udaną stymulację limfocytów T, natomiast słaby wewnątrzkomórkowy sygnał zielonej fluorescencji potwierdza hamujące działanie związków immunomodulujących na limfocyty T.
W przypadku wysokoprzepustowych badań przesiewowych małych cząsteczek należy umieścić 40 mikrolitrów komórek na studzience na płytce 384-dołkowej i potraktować odpowiednie studzienki wybranym lekiem lub nośnikiem przez żądany okres leczenia w inkubatorze hodowli komórkowych.
Na 30 minut przed analizą GFP należy wybarwić komórki roztworem Hoechsta o odpowiednim stężeniu, dokładnie rozprowadzając barwnik za pomocą delikatnego pipetowania. Gdy wszystkie studzienki zostaną zabarwione, odwirować płytki, aby zebrać komórki na dnie studzienek i pozostawić komórki na 15 minut w temperaturze pokojowej.
Załaduj płytę zgodnie z instrukcjami producenta. Następnie ustaw obiektyw na 40X lub więcej. Ustaw kamerę numer 4 dla lampy UV, a następnie ustaw kamerę numer 1 dla lasera 488. Załaduj płytkę do systemu przesiewania o wysokiej zawartości. Następnie ustaw zautomatyzowany konfokalny system przesiewowy o wysokiej zawartości tak, aby odczytywał od 6 do 10 pól na studzienkę, z dwoma sekwencyjnymi odczytami na pole przy 488 nanometrach i świetle UV.
Niniejsze badanie demonstruje metodę oceny aktywacji limfocytów T z wykorzystaniem wieloodworowej płytki kompatybilnej z fluorescencją. Poprzez poddawanie limfocytów T pochodzących od myszy transgenicznych działaniu różnych związków immunomodulujących, badacze mogą obserwować zmiany w ekspresji zielonego białka fluorescencyjnego (GFP), co wskazuje na aktywację lub inhibicję limfocytów T.
Ten oparty na fluorescencji test limfocytów umożliwia szybką identyfikację związków immunomodulacyjnych poprzez powiązanie zaangażowania TCR ze zmianami ekspresji GFP, co wspiera wczesnym etapie walidację celów w procesie poszukiwania leków immunologicznych. Metoda ta zapewnia ilościowe, powtarzalne wyniki dla efektów stymulujących i hamujących, co ułatwia mechanistyczną ocenę ryzyka w odniesieniu do wiodących kandydatów przed kosztownymi inwestycjami przedklinicznymi. Jej kompatybilność z formatami wysokoprzepustowymi pozwala na integrację z kaskadami przesiewowymi w celu priorytetyzacji związków o pożądanych profilach immunomodulacyjnych.
Analiza ta wpisuje się w ciąg procesów badawczych, od walidacji celu po identyfikację związku wiodącego, oferując funkcjonalny odczyt oparty na komórkach układu odpornościowego, który uzupełnia kaskady przesiewowe biochemiczne i fenotypowe.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026