JoVE Encyclopedia of Experiments
Immunologia
0 wyświetleń • 3:44 min • July 8th, 2025
Zacznij od naczynia ze szklanym dnem zawierającego transgeniczne poczwarki Drosophila z oznakowanym uszkodzonym nabłonkiem z białkami na powierzchni komórek wykazującymi zieloną fluorescencję.
Komórki odpornościowe poczwarek - lub hemocyty - wyrażają fotokonwertowalne zielone fluorofory w cytoplazmie i czerwone białka fluorescencyjne w jądrze, ułatwiając śledzenie komórek.
Zranione komórki uwalniają chemoatraktanty – lub cząsteczki zapalne, przyciągając hemocyty do zranionego miejsca.
Mikroskopia konfokalna ujawnia zraniony obszar otoczony zielonymi komórkami nabłonka.
Podczas gojenia zielone hemocyty z czerwonymi jądrami w pobliżu rany rozciągają wypukłości błony — filopodia i blaszki i migrują w kierunku zranionego obszaru.
Z biegiem czasu, gdy chemoatraktant dyfunduje, odległe hemocyty migrują w kierunku rany, tworząc falę komórek odpornościowych.
Oświetl subpopulację migrujących hemocytów za pomocą długości fali 405 nanometrów. To nieodwracalnie przekształca fotokonwertowalny fluorofor hemocytów z zielonego na czerwony.
Te fotoprzekształcone hemocyty naprawiają zraniony nabłonek i oddalają się od miejsca rany, różnicując fotoprzekształcone hemocyty od hemocytów niefotokonwertowanych i wyjaśniając dynamikę komórek zapalnych.
Po nawinięciu brzegów skrzydełek źrenicy należy szybko przenieść naczynie ze szklanym dnem do odpowiedniego mikroskopu w celu wykonania zdjęcia poklatkowego. Następnie otwórz odpowiednie oprogramowanie do przechwytywania obrazu.
W oprogramowaniu włącz odpowiednie lasery i dostosuj ich moc oraz przesunięcie wzmocnienia, aby uzyskać wystarczającą ilość sygnału fluorescencyjnego bez nasycenia pikseli. Ogólnie rzecz biorąc, najniższa możliwa moc lasera w zakresie od 5% do 20% najlepiej sprawdza się w celu zminimalizowania fotowybielania.
Skoncentruj się na całym skrzydle źrenicy w małym powiększeniu lub skup się na ranie w dużym powiększeniu, aby zbadać gojenie się rany. Aby uchwycić zarówno naprawczy nabłonek, jak i rekrutację komórek zapalnych, najpierw ustaw mikroskop tak, aby rejestrował stos z za pomocą precyzyjnej regulacji ostrości na panelu sterowania. Skanuj od zranionego nabłonka do przestrzeni zewnątrzkomórkowej poniżej, zawierającej migrujące hemocyty.
Następnie ustaw oprogramowanie tak, aby rejestrowało przekroje z przez skrzydło źrenicy co 3 mikrony lub w jeszcze ciaśniejszych odstępach czasu. W przypadku obrazowania poklatkowego nagrywaj stosy z co najmniej co 30 sekund przez co najmniej godzinę.
W przypadku korzystania z fotokonwertowalnych sond do selektywnej fotokonwersji i etykietowania podzbioru komórek podczas obrazowania, należy otworzyć odpowiednie moduły w oprogramowaniu do obrazowania, aby przeprowadzić fotokonwersję i aktywować laser 405-nanometrowy. Następnie wybierz komórki, które mają zostać przekonwertowane na zdjęcia w oprogramowaniu FRAP za pomocą narzędzia do zaznaczania.
Następnie ustaw przebieg czasowy konwersji zdjęć na pojedynczą klatkę iteracji i ustaw laser 405-nanometrowy na 20% mocy lasera, a następnie kliknij Rozpocznij eksperyment, aby przeprowadzić konwersję zdjęć. Po zakończeniu wyjdź z modułu FRAP i wróć do oryginalnego ekranu obrazowania. Tam dostosuj lasery do używanych fluoroforów i zobrazuj komórki przekonwertowane i nieprzekonwertowane na zdjęcie za pomocą nagrań poklatkowych.
Niniejsze badanie analizuje dynamikę migracji komórek odpornościowych podczas gojenia ran nabłonkowych u transgenicznych Drosophila. Z wykorzystaniem mikroskopii konfokalnej przeanalizowano zachowanie hemocytów w odpowiedzi na chemoatraktanty uwalniane z uszkodzonych komórek.
Ta technika fotokonwersji umożliwia precyzyjne śledzenie dynamiki komórek odpornościowych in vivo, co wspiera redukcję ryzyka mechanistycznego podczas walidacji celów dla terapii immunomodulujących. Dzięki rozróżnieniu migrujących od stacjonarnych populacji komórek zwiększa ona pewność predykcyjną w przedklinicznych modelach stanu zapalnego i regeneracji tkanek. Podejście to stanowi skalowalną i powtarzalną metodę oceny wpływu związków na migrację komórkową w systemach istotnych dla przebiegu choroby.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum odkrywania leków, od walidacji celu po identyfikację związku wiodącego, dostarczając dynamicznych odczytów fenotypowych, które wspierają wczesny screening związków oraz późniejsze badania mechanistyczne.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026