RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Zacznij od wstępnie utrwalonych wycinków tkanki mózgowej pobranych z wczesnych i późnych stadiów postnatalnych myszy.
Wycinek zawiera neurony ziarniste móżdżku lub CGN, wyrażające białko fluorescencyjne.
Za pomocą mikroskopu konfokalnego skup się na pojedynczym fluorescencyjnym CGN.
Przechwytuj obrazy z-stack na różnych głębokościach, aby stworzyć trójwymiarowy widok neuronu.
Korzystając z oprogramowania do obrazowania, śledź neuryty neuronów lub długie projekcje, w tym dendryty i aksony.
Zmierz długość dendrytu od korpusu komórki do jej końca.
Analizuj tworzenie się szponów dendrytycznych, wyspecjalizowanych struktur na końcach dendrytów, gdzie odbierane są sygnały z innych neuronów.
Oceń również powierzchnię i objętość neuronu.
We wczesnej fazie postnatalnej neurony wykazują zwiększoną liczbę dendrytów, bez tworzenia się pazurów.
Tymczasem w późnym etapie postnatalnym dendrytów jest mniej, ale zwiększa się ich długość i liczba pazurów.
Tak więc wraz z wiekiem CGN ulegają synaptogenezie i tworzą połączenia z innymi komórkami w celu przekazywania sygnału.
Aby zbadać morfologię pojedynczych elektroporowanych CGN ze strzałkowych odcinków mózgu eksperymentalnego szczeniaka, wykonaj obrazy stosu z prędkością 0,5 mikrometra na stos pod mikroskopem konfokalnym. Obraz po jednej komórce na okno obrazu, aby umożliwić łatwą analizę obrazu i rekonstrukcję 3D. Analizuj długość neurytów i tworzenie się pazurów dendrytycznych w sposób zaślepiony za pomocą prostego znacznika neurytów.
Prześlij jednokanałowe obrazy stosu elektroporowanych CGN-ów na Fidżi i kliknij Wtyczki, Segmentacja i Prosty Neurite Tracer. Wybierz opcję Utwórz nową przeglądarkę 3D z menu rozwijanego. Przewiń do podstawy dendrytu łączącego się z somą komórkową i rozpocznij kąpiel, klikając skrzyżowanie. Ręcznie prześledź ścieżkę, klikając sekcje, w których sygnał wypełnienia komórek jest najjaśniejszy, i naciskając Y, aby zachować ślad.
Śledź do końca dendrytu i potwierdź ścieżkę, naciskając F. Alternatywnie, śledź aż do podstawy pazura. Następnie prześledź pazur od podstawy struktury aż do końca najdłuższego neurytu. Śledź gałęzie drugorzędne i trzeciorzędne, przytrzymując Control w systemie Windows lub Alt w systemie Mac OS i klikając ścieżkę. Potwierdź ścieżkę, naciskając F. Zwróć uwagę, że pomiary ścieżek są widoczne w osobnym oknie. Zsumuj wszystkie rozmiary gałęzi pazurów, aby uzyskać całkowitą długość każdego pazura.
Related Videos
09:10
Related Videos
9.8K Views
10:36
Related Videos
8.5K Views
10:09
Related Videos
7.9K Views
16:04
Related Videos
29.4K Views
03:59
Related Videos
329 Views
10:04
Related Videos
11.4K Views
09:07
Related Videos
14.3K Views
10:02
Related Videos
9.8K Views
08:09
Related Videos
21.5K Views
04:20
Related Videos
3.1K Views