Obrazowanie poklatkowe podziału nerwowych komórek macierzystych myszy za pomocą mikroskopii konfokalnej

0 wyświetleń2:43 min • June 18th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Weźmy wielodołkową płytkę zawierającą przylegające nerwowe komórki macierzyste lub NSC wyizolowane z mózgu transgenicznej myszy. Te NSC zawierają fluorescencyjnie znakowane białko, które jest specyficzne dla pierwszej fazy wzrostu lub G1.

Gdy NSC się dzieli, fluoryzuje w fazie G1 cyklu komórkowego, nie emitując fluorescencji w innych fazach.

Umieść płytkę w komorze obrazowania konfokalnego laserowego mikroskopu skaningowego, utrzymywanej w kontrolowanej temperaturze.

Wybierz żądaną soczewkę obiektywu i dostosuj intensywność fluorescencji.

Skonfiguruj parametry obrazowania poklatkowego.

Wybierz opcję dużego obrazu i zaplanuj rejestrowanie obrazu w regularnych odstępach czasu na żądany czas.

Użyj szybkiego skanera rezonansowego, aby uniknąć fotowybielania i utrzymać wysoką rozdzielczość.

Użyj ustawienia jasnego pola, aby zobrazować kształt komórki i użyj odpowiedniego filtra fluorescencyjnego, aby uchwycić fluorescencję.

Rozpocznij obrazowanie poklatkowe NSC, aby uwidocznić różne fazy cyklu komórkowego.

Przygotuj konfokalny laserowy mikroskop skaningowy do obrazowania, podgrzewając dołączoną komorę kontroli temperatury do 37 stopni Celsjusza w atmosferze 5% dwutlenku węgla. Umieść 96-dołkową płytkę we wstępnie ogrzanej komorze mikroskopu i ustaw ostrość na pierwszym dołku. Następnie otwórz oprogramowanie do obrazowania i kliknij prawym przyciskiem myszy w oknie głównym, aby wybrać Przejmij kontrolę nad przejęciem i Wycofanie nabycia, aby otworzyć TI Pad i wybrać plan Apo VC 20x DIC.

Następnie kliknij Przejmij kontrolę nad przejęciem, a następnie otwórz opcje poklatkowe. Ustaw środek każdego dołka jako pozycję stołu montażowego i wybierz opcję Duży obraz na 7 na 7 milimetrów do kwadratu. Obserwuj mozaikowy obraz wokół środka każdej studni. Ustaw nakładanie się dużego obrazu mozaiki na 5% i ustaw częstotliwość tak, aby zdjęcia były robione co 20 minut przez 24 godziny.

W ustawieniach A1 plus wybierz poziom napięcia lampy fotopowielacza dla każdej fluorescencji wymienionej na pasku menu. Wybierz tę opcję, aby uzyskać obrazy za pomocą szybkiego skanera rezonansowego w formacie 512 na 512 pikseli, a następnie użyć DIC do wizualizacji komórek. Następnie wybierz folder, w którym chcesz zapisać pliki danych. Wybierz przycisk Uruchom teraz w oknie Pobieranie ND, aby rozpocząć pobieranie.

08:33

Połączenie mitotycznej synchronizacji komórek i mikroskopii konfokalnej o wysokiej rozdzielczości w celu zbadania roli wielofunkcyjnych białek cyklu komórkowego podczas mitozy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:14

Obrazowanie żywych komórek w celu oceny dynamiki czasu metafazy i losu komórki po perturbacjach wrzeciona mitotycznego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:20

Niemal równoczesna skaning laserowy Mikroskopia konfokalna i mikroskopia sił atomowych (Conpokal) na żywych komórkach

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:59

Obrazowanie na żywo w wysokiej rozdzielczości zachowania komórek w rozwijającym się nabłonku nerwowym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:25

Obrazowanie poklatkowe migracji neuroblastów w ostrych wycinkach przodomózgowia dorosłej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:41

Ex vivo Obrazowanie na żywo podziałów pojedynczych komórek w nabłonku nerwowym myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:54

Obrazowanie na żywo i śledzenie pojedynczych komórek w celu monitorowania linii neuronalnej w dorosłych nerwowych komórkach macierzystych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:59

Obrazowanie poklatkowe migracji radialnej neuronów korowych w transdukowanych wycinkach mózgu embrionalnego myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:15

Poklatkowe obrazowanie konfokalne dynamiki dendrytycznej neuronów w eksplantatach siatkówki myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:25

Obrazowanie na żywo mitozy w rozwijającej się korze embrionalnej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026