Dwufotonowe obrazowanie in vivo dynamiki mikrogleju w hipokampie myszy

0 wyświetleń2:42 min • June 17th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Weźmy znieczuloną transgeniczną mysz wykazującą ekspresję białek fluorescencyjnych w mikrogleju. Zamocuj go na stereotaktycznej ramie z zmotoryzowanym stolikiem pod mikroskopem dwufotonowym.

Czaszka jest wyposażona w metalową rurkę ze szklanym dnem, która delikatnie spłaszcza zębodoł powyżej obszaru hipokampa cornu amonisa 1 lub CA1, zapewniając wyraźny interfejs optyczny bez

nadmiernego nacisku na leżącą pod spodem tkankę.

Napełnij metalową rurkę wodą, aby zoptymalizować transmisję optyczną.

Aktywuj laser impulsowy na długości fali wzbudzenia.

Wykorzystując fluorescencję z miąższu mózgu i światło odbite od metalowej rurki, dostosuj ostrość do obszaru CA1.

Zmień położenie głowicy myszy, aby wyrównać szklane dno równolegle do płaszczyzny obrazowania, zapewniając jednolitą ostrość w całym polu widzenia.

Dostosuj obiektyw, aby uzyskać optymalną rozdzielczość i obserwuj dynamikę mikrogleju in vivo w regionie CA1.

Następnie zobrazuj zakręt zębaty, w którym fluorescencyjny mikroglej potwierdza integralność CA1.

Umieść mysz w urządzeniu przytrzymującym głowę pod soczewką obiektywu mikroskopu dwufotonowego i na zmotoryzowanym stoliku skanującym XY. Następnie wypełnij przestrzeń między szklanym dnem a soczewką obiektywu wodą, nie tworząc pęcherzyków powietrza. Ustaw ostrość na CA1 pod kierunkiem fluorescencji emitowanej przez miąższ mózgu i światła odbitego od krawędzi metalowej rurki, przy ciągłym oświetleniu laserem impulsowym.

Dostosuj kąt nachylenia głowicy myszy, przechylając urządzenie przytrzymujące głowicę tak, aby szklane dno było równoległe do płaszczyzny obrazowania. Następnie należy wyregulować kołnierz korekcyjny obiektywu, aby osiągnąć najwyższą rozdzielczość na głębokości struktury docelowej w CA1. Następnie upewnij się, że komórki fluorescencyjne w warstwie molekularnej zakrętu zębatego lub DG na głębokości 500 mikrometrów od szklanego dna są obrazowane w całym polu widzenia. Tylko w przypadku udanej operacji sygnały DG mogą być natychmiast wykryte.

Upewnij się, że mikroglej odzyskał swoją rozgałęzioną morfologię. Następnie wykonaj obrazowanie in vivo na warstwie zainteresowania w CA1.

09:34

Podłużne obrazowanie dwufotonowe grzbietowego hipokampa CA1 u żywych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:17

Precyzyjne mapowanie mózgu w celu wykonywania powtarzalnych obrazowań in vivo dynamiki neuroimmunologicznej u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:26

Jednoczesne obrazowanie dynamiki mikrogleju i aktywności neuronalnej u obudzonych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:07

Technika cienkiej okienkowej czaszki do przewlekłego obrazowania dwufotonowego in vivo mikrogleju mysiego w modelach neurozapalenia

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:13

Jednoczesne obrazowanie dynamiki mikrogleju i aktywności neuronalnej u wybudzonej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:36

Podłużne obrazowanie dwufotonowe znakowanych fluorescencyjnie neuronów w żywym hipokampie myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:58

Mikroskopia dwufotonowa do obrazowania in vivo mikrokrążenia mózgu myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:07

In vivo (in vivo) Dwufotonowe obrazowanie zależnych od doświadczenia zmian molekularnych w neuronach korowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:53

Dwufotonowe obrazowanie in vivo kolców dendrytycznych w korze myszy przy użyciu preparatu z rozrzedzoną czaszką

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

16:45

Jednoczesne dwufotonowe obrazowanie in vivo wejść synaptycznych i celów postsynaptycznych w korze zaśledzinowej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026