-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
In Situ Hybrydyzacja w celu precyzyjnej lokalizacji transkryptów w roślinach
In Situ Hybrydyzacja w celu precyzyjnej lokalizacji transkryptów w roślinach
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
In Situ Hybridization for the Precise Localization of Transcripts in Plants

In Situ Hybrydyzacja w celu precyzyjnej lokalizacji transkryptów w roślinach

Full Text
52,253 Views
12:15 min
November 23, 2011

DOI: 10.3791/3328-v

Marie Javelle1, Cristina F. Marco1, Marja Timmermans1

1Cold Spring Harbor Laboratory

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Opisany tutaj protokół hybrydyzacji in situ pozwala na bezpośrednią lokalizację mRNA i ekspresję małego RNA na poziomie komórkowym z wysoką czułością i specyficznością. Procedura jest zoptymalizowana pod kątem skrawków tkanek roślinnych zatopionych w parafinie, ma zastosowanie do szerokiej gamy roślin i tkanek i może zostać zakończona w ciągu dziesięciu dni.

Ogólnym celem poniższego eksperymentu jest wizualizacja wzorców ekspresji mRNA na poziomie komórkowym z wysoką czułością i swoistością. Osiąga się to poprzez najpierw przeprowadzenie formalnych i utrwalonych oraz zatopionych w parafinie skrawków tkanek przez szereg roztworów w celu usunięcia wosku, przeniknięcia tkanek i zablokowania dodatnio naładowanych mniejszych grup w tkankach, które mogą dawać sygnał tła. Następnie sondy RNA znakowane DIG specyficzne dla genu będącego przedmiotem zainteresowania są infiltrowane do skrawków tkanki, a szkiełka są hybrydyzowane w ciągu nocy.

Następnie szkiełka są traktowane RNA. A w celu usunięcia niespecyficznie związanej sondy z sekcji, a następnie inkubowanej z przeciwciałem anty DIG. Pozwala to na wizualizację zhybrydyzowanej sondy za pomocą reakcji chemicznej o wskaźniku koloru.

Wyniki pokazują ciemnoniebieski sygnał wykrywalny przez mikroskopię świetlną, szczególnie w tych komórkach w tkance, w których wyrażany jest interesujący gen. Główną zaletą tej techniki naszej innej analizy ekspresji, takiej jak R-T-P-C-R, mikroray lub sekwencjonowanie nowej generacji, jest to, że pokazany tutaj protokół hybrydyzacji I ujawnia wzorzec ekspresji interesującego genu w jego kontekście tkankowym. Metody te obejmują wiele kroków, których najlepiej nauczyć się poprzez demonstracje wizualne.

Pokażemy, jak ciąć i osadzać tkankę, a także kluczowe kroki w protokole Al Hybridization pro, które są trudne do opanowania na własną rękę. Metoda osadzania tkanek utrwalonych paraldehydem będzie się różnić w zależności od rodzaju tkanki, która ma być analizowana. Najważniejszą kwestią jest tutaj upewnienie się, że próbki są prawidłowo zorientowane do późniejszego cięcia.

Jedną z metod zatapiania jest użycie plastikowych form i pierścieni. Aby rozpocząć tę procedurę, rozgrzej foremki na płycie grzewczej o temperaturze 60 stopni Celsjusza, a następnie wlej do nich stopioną parafinę. Następnie za pomocą rozgrzanych kleszczyków przenieś próbkę tkanki do każdej formy i ustaw ją w żądanej pozycji.

Ostrożnie przenieś formę z talerza na ławkę i umieść biały pierścień na formie. Dodaj więcej mola i wosku. Pozwól woskowi ostygnąć i stopniowo stwardnieć przed podziałem.

Podgrzej bloki do temperatury pokojowej, a następnie przytnij każdy blok do kształtu trapezu, pozostawiając około jednego milimetra wosku wokół próbki. Umieść przycięty blok na mikrotomie tak, aby dłuższa z dwóch równoległych ścian znajdowała się na dole. Ostrożnie przesuń klocek do przodu do ostrza i upewnij się, że powierzchnia bloku jest równoległa do sekcji ostrza.

O grubości od ośmiu do 10 mikronów. Dopasuj wstążki woskowe do nieprzywierającej powierzchni, takiej jak folia aluminiowa, i wybierz interesujące Cię sekcje pod zakresem sekcji. Następnie zaznacz ołówkiem slajdy prob bon plus.

Nie używaj pisaków na markerach, ponieważ zostaną one usunięte podczas protokołu hybrydyzacji INI two. Rozprowadź jeden mililitr czystej wody milli Q na każdym szkiełku. Ostrożnie unosić interesujące Cię sekcje na powierzchni wody w temperaturze pokojowej.

Upewnij się, że błyszcząca strona jest skierowana w stronę wody. Powoli przenieś szkiełko na podgrzewacz do slajdów. Ustaw na 35 do 37 stopni Celsjusza.

Ten zakres temperatur, w przeciwieństwie do powszechnie stosowanych 42 stopni Celsjusza, zapobiega tworzeniu się pęcherzyków pod sekcjami. Po pięciu minutach ostrożnie wylej wodę, ale jednym płynnym ruchem, tak aby wstążka została opuszczona na zjeżdżalnię. Pozostaw szkiełka do wyschnięcia na co najmniej kilka godzin lub na noc w temperaturze 37 stopni Celsjusza, aby tkanka przylegała do przygotowanych skrawków tkanki.

W przypadku hybrydyzacji in situ są one najpierw depa i ponownie uwodnione w celu finalizacji depa. Inkubować szkiełka w dwóch zmianach w postaci klarownego roztworu przez 10 minut każda. Aby nawodnić skrawki tkanki, przepuszczaj szkiełka przez serię zmniejszających się stężeń etanolu przez 30 sekund każda.

Podczas leczenia proteazą, które nie jest pokazane na tym filmie, przygotuj szklane naczynie z 0,1 molowym roztworem aminy triathlonowej i ustaw je na talerzu mieszającym w dygestorium. Bezpośrednio przed umieszczeniem metalowego stojaka na szkiełka w roztworze dodaj 1,25 mililitra bezwodnika octowego do aminy triathlonowej, bufora i klatki schodowej. Ponadto należy ustawić system mocowania i stojak do trzymania stojaka na prowadnice.

Zmniejsz prędkość Starr clamp stojak przesuwny na stojaku i opuść stojak do roztworu, trzymając go uniesiony nad prętem mieszającym. Kontynuuj powolne mieszanie przez 10 minut po wypłukaniu w PBS i ponownym odwodnieniu za pomocą serii etanolu. Wycinki tkanek są gotowe do hybrydyzacji.

Umieść szkiełka na czystej powierzchni i pozostaw do całkowitego wyschnięcia na powietrzu przez pięć do 10 minut. Przygotować mieszaninę buforu hybrydyzacyjnego sondy, dodając zdenaturowaną sondę do 80 mikrolitrów buforu hybrydyzacyjnego. Dla każdego szkiełka dobrze wymieszaj, pipetując plus, unikając tworzenia pęcherzyków.

Odpipetować bufor hybrydyzacyjny sondy. Wymieszaj na prawej krawędzi szkiełka. Stopniowo opuszczaj szkiełko nakrywkowe na szkiełko, upewniając się, że roztwór hybrydyzacyjny pokrywa wszystkie sekcje bez pęcherzyków.

Delikatnie postukaj palcem w nożyce do okładki w miejscu, w którym tworzą się bąbelki, aby przemieścić je ze wszystkich odcinków tkanki. Nie odrywaj noża do pokrywy, ponieważ spowoduje to uszkodzenie sekcji. Umieść szkiełka w komorze wilgotnościowej zawierającej papier watman zwilżony wodą UE i w dużej mierze pokryty paramem.

Zamknij pudełko, szczelnie inkubuj szkiełka w żądanej temperaturze hybrydyzacji, zwykle od 50 do 55 stopni Celsjusza przez 16 do 20 godzin. Po zakończeniu protokołu hybrydyzacji ostrożnie usuń szkiełka nakrywkowe ze szkiełek. Szkiełko nakrywkowe może po prostu spaść, gdy prowadnica jest ustawiona pionowo, ale jeśli nie, nie zdejmuj szkiełka nakrywkowego, ponieważ spowoduje to uszkodzenie sekcji.

Zamiast tego zanurz szkiełko w ciepłym 0,2 razy SSC na jedną lub dwie minuty, aby zmyć szkiełko nakrywkowe po zdjęciu szkiełek nakrywkowych, umieść szkiełka w stojaku i umyj kilka razy w 0,2 razy SSC w temperaturze 55 stopni Celsjusza. Po zabiegu RNA przenieś szkiełka ze stojaka na dno płaskiego plastikowego pudełka i przykryj minimalną objętością roztworu blokującego. Zablokuj szkiełka na 45 minut w temperaturze pokojowej na powoli trzęsącej się platformie.

Następnie nanieść minimalną objętość roztworu przeciwciał bezpośrednio na każde szkiełko. Inkubuj szkiełka w ciemności przez dwie do trzech godzin w temperaturze pokojowej. Po zakończeniu inkubacji przenieść szkiełka do czystego, płaskiego pudełka i umyć je czterokrotnie minimalną objętością buforu myjącego na platformie do wytrząsania w temperaturze pokojowej.

Opłucz szkiełka raz w TBS i dwa razy w ofercie buforowej TN, aby nałożyć świeżo przygotowany roztwór barwiący na szkiełka. Najpierw wlej roztwór barwiący do małego plastikowego naczynia do ważenia. Następnie ułóż dwie prowadnice razem z sekcjami skierowanymi do siebie.

Zanurz kanapkę w roztworze, pozwalając, aby działanie kapilarne podciągnęło roztwór. Odcedź szkiełka na chusteczce kim. Napełnij szkiełka roztworem barwiącym.

Ponownie, może być konieczne stukanie w szkiełka, gdy roztwór napływa, aby uniknąć pęcherzyków, umieść szkiełka w plastikowym pudełku i przechowuj w temperaturze pokojowej w ciemności. Reprezentatywne wyniki uzyskane za pomocą różnych sond i tkanek Arabidopsy przedstawiono tutaj. Fioletowy sygnał zapewnia bezpośrednią wizualizację w rozdzielczości komórkowej wzorca ekspresji genu będącego przedmiotem zainteresowania.

Panel A pokazuje lokalizację transkryptów pędu one w wierzchołku pędu wegetatywnego. Zwróć uwagę na obecność fioletowo-niebieskiego sygnału w nieokreślonym merystemie i brak sygnału w otaczających liściach. Panele B 2D to skrawki zarodków w stadium torpedy Arabidopsi, gdzie B wykazuje ekspresję covata three w kilku embrionalnych komórkach macierzystych.

C wykazuje ekspresję T ML jednej w warstwie naskórka, a D wykazuje brak sygnału w odcinkach badanych losowym RNA kontroli negatywnej. Kolejne obrazy pokazały wyniki uzyskane za pomocą różnych sond na tkankach labiryntu. Panel E pokazuje lokalizację węzła węzełkowego STM Humalog w rozwijającym się zarodku labiryntu.

Należy zwrócić uwagę na silny sygnał specyficzny dla embrionalnych odcinków podłużnych łodygi i korzenia mes przez wierzchołek zsypu wegetatywnego, który pokazuje, że ARF trzy A jest wyrażony na osiowej dolnej powierzchni liścia w panelu F, a A T ML jeden homolog OCL cztery jest wyrażony specyficznie w naskórku. W oczekiwanym panelu G.As nie zaobserwowano sygnału hybrydyzacji dla sondy kontroli ujemnej w panelu H. Oczekiwane wyniki różnych punktów kontrolnych podczas transkrypcji sond in vitro przedstawiono tutaj. Sondy do hybrydyzacji in situ są sprawdzane na standardowym żelu ARAZ po transkrypcji in vitro po obróbce DNA i późniejszym oczyszczeniu reakcji transkrypcji in vitro Po hydrolizie węglanów i gdy są gotowe do użycia dla sond o długości ponad 250 par zasad, takich jak sonda pierwsza, hydroliza węglanowa da szereg mniejszych fragmentów sondy.

Rysunek ten przedstawia wyniki kwalifikacji kolorystycznej i metrycznej sond za pomocą analizy punktowej rozcieńczeń w zakresie od 10 do minus jeden do 10 do minus pięciu 100 nanogramów na mikrolitr sondy kontrolnej i trzech, nowo znakowanych sond znakowanych DIG jest wykrywanych na membranie transferowej inkubowanej z przeciwciałem anty DIG i testem. Analiza sugeruje szacunkowe stężenie 100 nanogramów na mikrolitr dla sondy, dwa 10 nanogramów na mikrolitr dla sondy trzeciej i jeden nanogram na mikrolitr dla sondy czwartej, co wskazuje, że jest mało prawdopodobne, aby sonda czwarta dała dobry sygnał inea do hybrydyzacji. Wreszcie, te podłużne przekroje przez wierzchołek zsypu wegetatywnego z Mace zapewniają porównanie między niespecyficznym sygnałem tła a dobrze działającym panelem sondy.

A pokazuje niespecyficzny sygnał tła, podczas gdy panel B pokazuje specyficzny sygnał hybrydyzacji in situ dla sondy OC five w zewnętrznej warstwie komórek. Po obejrzeniu tego powinieneś mieć dobre wyczucie, jak wykonać wiele trudnych kroków w protokołach hybrydyzacji init, tak aby móc określić dokładne wzorce ekspresji czasowej ciśnienia swoich ulubionych nastolatków.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Hybrydyzacja in situ precyzyjna lokalizacja transkrypty rośliny badania genomiczne biologia roślin ekspresja genów mikromacierz sekwencjonowanie nowej generacji procesy rozwojowe procesy fizjologiczne procesy odpowiedzi na stres szlaki epigenetyczne małe szlaki RNA sieci regulacyjne genów rozdzielczość czasoprzestrzenna metoda profilowania mikrodysekcja laserowa sortowanie komórek aktywowane fluorescencją biologiczna rola genu czasoprzestrzenny wzór ekspresji rozdzielczość komórkowa Rozwój bodźce środowiskowe analiza mutantów transgeniczne linie reporterowe

Related Videos

Protokół nieradioaktywnej hybrydyzacji in situ mający zastosowanie do świerka pospolitego i szeregu gatunków roślin

11:56

Protokół nieradioaktywnej hybrydyzacji in situ mający zastosowanie do świerka pospolitego i szeregu gatunków roślin

Related Videos

21.5K Views

Fluorescencyjna hybrydyzacja in situ zarodków Drosophila z całą górą RNA

09:57

Fluorescencyjna hybrydyzacja in situ zarodków Drosophila z całą górą RNA

Related Videos

18.9K Views

Hybrydyzacja in situ w pełnej rozdzielczości w zarodkach danio pręgowanego w celu zbadania ekspresji i funkcji genów

10:06

Hybrydyzacja in situ w pełnej rozdzielczości w zarodkach danio pręgowanego w celu zbadania ekspresji i funkcji genów

Related Videos

23.2K Views

Fluorescencyjne hybrydyzacje in situ (FISH) do lokalizacji wirusów i bakterii endosymbiotycznych w tkankach roślinnych i owadzich

10:38

Fluorescencyjne hybrydyzacje in situ (FISH) do lokalizacji wirusów i bakterii endosymbiotycznych w tkankach roślinnych i owadzich

Related Videos

24.4K Views

Wykrywanie aksonalnie zlokalizowanych mRNA w skrawkach mózgu za pomocą hybrydyzacji in situ o wysokiej rozdzielczości

11:24

Wykrywanie aksonalnie zlokalizowanych mRNA w skrawkach mózgu za pomocą hybrydyzacji in situ o wysokiej rozdzielczości

Related Videos

12.2K Views

Hybrid-Cut: An Improved Sectioning Method for Recalcitrant Plant Tissue Samples

09:38

Hybrid-Cut: An Improved Sectioning Method for Recalcitrant Plant Tissue Samples

Related Videos

19.9K Views

Lokalizacja genów receptora zapachowego w czułkach szarańczy przez hybrydyzację RNA in situ

09:30

Lokalizacja genów receptora zapachowego w czułkach szarańczy przez hybrydyzację RNA in situ

Related Videos

8.6K Views

Fluorescencyjna hybrydyzacja in situ o wysokiej rozdzielczości w zarodkach i tkankach Drosophila przy użyciu wzmocnienia sygnału tyramidowego

14:21

Fluorescencyjna hybrydyzacja in situ o wysokiej rozdzielczości w zarodkach i tkankach Drosophila przy użyciu wzmocnienia sygnału tyramidowego

Related Videos

13.7K Views

Podwójna hybrydyzacja in situ wczesnych zarodków piskląt

15:42

Podwójna hybrydyzacja in situ wczesnych zarodków piskląt

Related Videos

13K Views

Protokół fluorescencji hybrydyzacji in situ (FISH) w nasieniu ludzkim

16:19

Protokół fluorescencji hybrydyzacji in situ (FISH) w nasieniu ludzkim

Related Videos

30.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code