-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Badania kliniczne i usunięcie rdzenia kręgowego w mysim modelu stwardnienia zanikowego bocznego (...
Badania kliniczne i usunięcie rdzenia kręgowego w mysim modelu stwardnienia zanikowego bocznego (...
JoVE Journal
Medicine
Author Produced
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Medicine
Clinical Testing and Spinal Cord Removal in a Mouse Model for Amyotrophic Lateral Sclerosis (ALS)

Badania kliniczne i usunięcie rdzenia kręgowego w mysim modelu stwardnienia zanikowego bocznego (ALS)

Full Text
28,354 Views
12:35 min
March 17, 2012

DOI: 10.3791/3936-v

René Günther1, Martin Suhr1, Jan C. Koch1, Mathias Bähr1,2, Paul Lingor1,2, Lars Tönges1

1Dept. of Neurology,University Medicine Göttingen, 2DFG Research Center for the Molecular Physiology of the Brain (CMPB),Göttingen, Germany

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Mysi model stwardnienia zanikowego bocznego (ALS) jest badany klinicznie i behawioralnie. Jako warunek wstępny towarzyszącej analizy immunohistologicznej szczegółowo przedstawiono przygotowanie rdzenia kręgowego.

Transcript

Cześć, nazywam się Lar Turner. Odbywam staż podoktorski na Wydziale Neurologii Uniwersytetu w Ingham w Niemczech. Cześć, nazywam się Lin Gunda.

Jestem studentem medycyny i piszę pracę dyplomową w tym laboratorium. Dzisiaj pokażemy Państwu testy kliniczne SODG 93, modelu mchu zanikowego stwardnienia bocznego. Ponadto zademonstrujemy test funkcji silnika za pomocą tak zwanego testu wirnika i dodatkowo innego testu funkcji silnika z wiszącym uchwytem drucianym w celu przeprowadzenia analizy immunologicznej.

Po testach funkcjonalnych myszy as, niezbędna procedura polega na usunięciu rdzenia kręgowego, nerwu STIC i mięśnia żołądkowego. Chcemy szczegółowo pokazać te zabiegi chirurgiczne, a na koniec przedstawić kilka przykładowych wyników immunologii. No dobrze, ale zacznijmy najpierw od testów klinicznych.

Jest to swobodnie poruszający się dziki typ MOE, który nie wykazuje żadnych objawów klinicznych, takich jak drżenie mięśni lub parsa w naszym systemie klasyfikacji klinicznej. To byłby wynik czwarty. Jest to transgeniczny A LS moe.

We wczesnym stadium choroby wykazuje silne drżenie prawej kończyny brzusznej, które klasyfikuje go jako WYNIK trzy E. Poważne nieprawidłowości chodu Klasyfikują to zwierzę jako wynik drugi. Przeciąganie co najmniej jednej kończyny tylnej jest klasyfikowane jako wynik kliniczny pierwszy w teście wiszącego drutu, oceniana jest surowa siła mięśni żeber. Każda mysz jest umieszczona na drucie CustomMade i ostrożnie odwrócona do góry nogami nad przyciskiem pokrytym słomą.

Po treningu przez trzy kolejne razy trwające co najmniej 180 sekund mierzone jest opóźnienie do upadków. Każda mysz ma do trzech prób przytrzymania odwróconej pokrywy przez maksymalnie 180 sekund, przy czym najdłuższy okres jest rejestrowany w porównaniu do myszy z białym przewodem po prawej stronie. Płytka transgeniczna myszy po lewej stronie jest bardzo słaba i spada z pokrywy przed osiągnięciem maksimum.

Aparat prętowy wirnika służy do pomiaru koordynacji ruchowej, równowagi i zdolności uczenia się motorycznego. Dobry występ wymaga wysokiego poziomu koordynacji sensoryczno-ruchowej. Składa się ze sterowanego komputerowo, napędzanego silnikiem wrzeciona obrotowego i pięciu pasów ruchu na pięć m.

Usterki myszy są wykrywane automatycznie przez nacisk na dolną plastikową płytkę. Po treningu przez trzy kolejne razy trwające co najmniej 180 sekund ze stałą prędkością 15 rund na minutę, mierzy się czas, przez jaki zwierzę może pozostać na obracającej się zgniliźnie. Każde zwierzę przechodzi trzy próby i odnotowuje się najdłuższe opóźnienie bez upadku.

Zdrowy mos typu dzikiego po lewej stronie biega bez trudu na pręcie wirnika. Natomiast transgeniczny a s mo po prawej stronie ma poważne problemy z utrzymaniem się nawet na pręcie wirnika i zsuwa się po chwili obserwowany od tyłu. Widzisz poważne trudności z uruchomieniem lewej myszy retre.

W porównaniu ze zdrową myszą z gwintownikiem drucianym nie jest w stanie nadążyć za prędkością pręta wirnika i nie może pchać się w górę za pomocą kończyn HIN. W celu przeprowadzenia analizy immunochemicznej rdzenia kręgowego zwierzęta muszą zostać złożone w ofierze. Bardzo ważne jest, aby zawsze ściśle przestrzegać lokalnych wytycznych dotyczących prawidłowego przeprowadzania eksperymentów na zwierzętach.

W tym kontekście, W tym Bardzo uproszczony przegląd kręgosłupa i otaczających go tkanek przedstawiono główne struktury anatomiczne. Umieścimy zwierzę na jego brzusznej stronie i zaczniemy przygotowywać mięśnie z worka grzbietowego. Po usunięciu tkanki mięśniowej uzyskamy dostęp do kręgosłupa, który otacza rdzeń kręgowy.

Po uśmierceniu zwierzęcia i perfuzji roztworem zawierającym paraformę, rdzeń kręgowy może zostać usunięty. Zwierzę umieszcza się na stole operacyjnym, a pełne kończyny mocuje się po bokach i porządkuje odsłonięcie tylnej części myszy. Zwierzę jest zwilżane w celu spłaszczenia sierści i ułatwienia następnego nacięcia skóry.

W tym celu używa się ostrego skalpela. Uważaj, aby rozciągnąć skórę na obie strony. Aby ułatwić przecięcie mięśnia nogi, należy go przygotować.

Ich skóra również musi zostać nacięta. Po zakończeniu nacięcia skóry jest ona delikatnie odciągana na bok. Za pomocą pęsety usuwamy mięśnie nóg i nerw kulszowy, nadal zbliżamy się do rdzenia kręgowego i umieszczamy zwierzę na nowym stole operacyjnym

.

Teraz łatwo jest zidentyfikować czaszkę, szyję, mięśnie i kręgosłup. Po zidentyfikowaniu wszystkich tych struktur łatwo jest przejść do następnego kroku. Mięśnie szyi i więzadło nu muszą zostać usunięte.

Uważaj, aby nie naciąć zbyt głęboko i nie poprowadzić kręgosłupa. W następnym kroku mięśnie przykręgosłupowe są całkowicie usuwane, aby odsłonić kręgosłup. Aby uzyskać dostęp do kręgosłupa, należy wykonać kilka ektomii.

Zaczynamy od części szyjnej kręgosłupa, w tym stawu potylicznego atlantyckiego. Aby wykonać laminektomię, musimy przeciąć łuk kręgowy, aby móc usunąć wszystkie wyrostki kręgowe z trzonu kręgu. Jak wyjaśniono wcześniej, laminektomia rozpoczyna się od przecięcia łuków kręgowych.

Następnie lainę można odciągnąć. Ponownie należy uważać, aby nie uszkodzić rdzenia kręgowego, ponieważ wiele innych ral musi zostać usuniętych. Pomocne jest używanie nożyczek kątowych i nacinanie kilku łuków kręgowych po obu stronach jednocześnie.

Następnie pociągnij za wyrostki grzbietowe, aby całkowicie usunąć laminę kręgową i zbliżenie. Widzisz, że nożyczki muszą być ostrożnie włożone najbardziej bocznie z boku kanału kręgowego. Pozostałe boczne części kręgosłupa muszą zostać usunięte, aby ułatwić późniejsze całkowite usunięcie rdzenia kręgowego.

Anatomicznym punktem orientacyjnym rdzenia kręgowego są tak zwana esencia szyjna i lędźwiowa. Po zakończeniu ektomii całego rdzenia kręgowego upewnij się, że przetransektowałeś również wszystkie brzuszne korzenie rdzenia kręgowego i uwolnij go z materii opon mózgowych. Następnie przecina się rdzeń kręgowy w odcinku szyjnym.

Czaszkowo i jego usuwanie rozpoczyna się ponownie. Dotykaj rdzenia kręgowego bardzo ostrożnie, aby nie uszkodzić tej tkanki, ponieważ może to spowodować poważne ograniczenia dla późniejszej analizy immunoimmunochemicznej. Usunięcie rdzenia kręgowego jest dalej kontynuowane na poziomie klatki piersiowej i przechodzi do części lędźwiowej.

Na koniec jest ponownie przecięty, tym razem z boku sznura konia. Teraz jesteśmy w stanie całkowicie go uwolnić. Tutaj widzisz rdzeń kręgowy umieszczony tuż obok jego pierwotnego położenia w kolumnie RAL.

Ostatecznie umieszcza się go w roztworze utrwalającym po utrwalaniu Paraform Hyde. Jako klasyczny przykład analizy immunohistochemicznej rdzenia kręgowego można zastosować przeciwciało, które rozpoznaje cholinę, acetylotransferazę, w celu identyfikacji neuronów ruchowych w rogu przednim rdzenia kręgowego. Tutaj widzisz dużą liczbę neuronów ruchowych u zdrowego zwierzęcia typu dzikiego.

W przeciwieństwie do tego, transgeniczne zwierzę LS w końcowym stadium wykazuje znacznie mniejszą liczbę neuronów ruchowych w rogu przednim. Oglądając ten artykuł wideo, powinieneś poznać podstawowe badanie kliniczne SODG 93. Mysi model zanikowego stwardnienia bocznego.

Zademonstrowano dwa testy zachowania motorycznego: test wirnika i test wiszącego drutu. Dają one dobrą możliwość oceny podstawowych funkcji motorycznych. Są łatwe do wykonania, czułe w wykrywaniu deficytu motorycznego i efektywne czasowo.

Główna część tego filmu polega na pokazie techniki przygotowania rdzenia kręgowego. Można to oczywiście zastosować do każdego innego modelu choroby myszy i jest to niezbędny krok do późniejszej analizy immunochemicznej patologii choroby w rdzeniu kręgowym. Dziękuję za oglądanie.

Mamy nadzieję, że ten artykuł wideo okaże się pomocny w przyszłych eksperymentach.

Explore More Videos

Badania kliniczne usunięcie rdzenia kręgowego model mysi stwardnienie zanikowe boczne ALS zaburzenie neurodegeneracyjne motoneurony mutacje rodzinne gen SOD mutacja SOD1 (G93A) przeżycie całkowite przebieg kliniczny funkcje motoryczne behawioralne testy motoryczne ilościowe systemy punktacji badanie immunohistochemiczne przygotowanie rdzenia kręgowego metoda laminektomii grzbietowej wyniki histologiczne opcje terapeutyczne badania kliniczne na ludziach

Related Videos

Przeszczep komórek śródrdzeniowych w celu ukierunkowania na róg brzuszny szyjki macicy w stwardnieniu zanikowym bocznym i urazowym uszkodzeniu rdzenia kręgowego

10:49

Przeszczep komórek śródrdzeniowych w celu ukierunkowania na róg brzuszny szyjki macicy w stwardnieniu zanikowym bocznym i urazowym uszkodzeniu rdzenia kręgowego

Related Videos

21K Views

Wstrzykiwanie rekombinowanych wektorów związanych z adenowirusem w mysim modelu rdzeniowego i opuszkowego zaniku mięśni

02:44

Wstrzykiwanie rekombinowanych wektorów związanych z adenowirusem w mysim modelu rdzeniowego i opuszkowego zaniku mięśni

Related Videos

238 Views

Eksperymentalna demienizacja i remielinizacja mysiego rdzenia kręgowego przez ogniskowe wstrzyknięcie lizolecytyny

08:57

Eksperymentalna demienizacja i remielinizacja mysiego rdzenia kręgowego przez ogniskowe wstrzyknięcie lizolecytyny

Related Videos

27.4K Views

Szybki fenotypowy system punktacji neurologicznej do oceny postępu choroby w mysim modelu SOD1-G93A ALS

06:49

Szybki fenotypowy system punktacji neurologicznej do oceny postępu choroby w mysim modelu SOD1-G93A ALS

Related Videos

20.3K Views

Model urazu kompresyjnego rdzenia kręgowego u noworodków myszy

13:31

Model urazu kompresyjnego rdzenia kręgowego u noworodków myszy

Related Videos

12.9K Views

Ocena spontanicznej przemiany, rozpoznawania nowych obiektów i zaciskania kończyn w transgenicznych mysich modelach β amyloidu i neuropatologii tau

10:02

Ocena spontanicznej przemiany, rozpoznawania nowych obiektów i zaciskania kończyn w transgenicznych mysich modelach β amyloidu i neuropatologii tau

Related Videos

27.6K Views

In vivo (in vivo) Elektrofizjologiczny pomiar złożonego potencjału czynnościowego mięśni z kończyn przednich w mysich modelach zwyrodnienia neuronów ruchowych

06:35

In vivo (in vivo) Elektrofizjologiczny pomiar złożonego potencjału czynnościowego mięśni z kończyn przednich w mysich modelach zwyrodnienia neuronów ruchowych

Related Videos

20.1K Views

Indukcja całkowitego uszkodzenia rdzenia kręgowego typu transsection u myszy

06:51

Indukcja całkowitego uszkodzenia rdzenia kręgowego typu transsection u myszy

Related Videos

8.9K Views

Fluorescencyjny pomiar funkcji synaptycznych w czasie rzeczywistym w modelach stwardnienia zanikowego bocznego

08:59

Fluorescencyjny pomiar funkcji synaptycznych w czasie rzeczywistym w modelach stwardnienia zanikowego bocznego

Related Videos

2.9K Views

Zautomatyzowany impaktor do modelu kontuzyjnego uszkodzenia rdzenia kręgowego u myszy

06:31

Zautomatyzowany impaktor do modelu kontuzyjnego uszkodzenia rdzenia kręgowego u myszy

Related Videos

2.3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code