-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Bioengineering
Protokół tworzenia strumienia biofilmu w urządzeniu mikroprzepływowym z mikrofilarami
Protokół tworzenia strumienia biofilmu w urządzeniu mikroprzepływowym z mikrofilarami
JoVE Journal
Bioengineering
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Bioengineering
Protocol for Biofilm Streamer Formation in a Microfluidic Device with Micro-pillars

Protokół tworzenia strumienia biofilmu w urządzeniu mikroprzepływowym z mikrofilarami

Full Text
12,438 Views
07:19 min
August 20, 2014

DOI: 10.3791/51732-v

Mahtab Hassanpourfard1, Xiaohui Sun2, Amin Valiei1, Partha Mukherjee3, Thomas Thundat1, Yang Liu2, Aloke Kumar4

1Department of Chemical and Material Engineering,University of Alberta, 2Department of Civil and Environmental Engineering,University of Alberta, 3Department of Mechanical Engineering,Texas A&M University, 4Department of Mechanical Engineering,University of Alberta

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Omawiane są protokoły badania tworzenia się biofilmu w urządzeniu mikroprzepływowym, które naśladuje porowate media. Urządzenie mikroprzepływowe składa się z szeregu mikrofilarów i badane jest tworzenie biofilmu przez Pseudomonas fluorescens w tym urządzeniu.

Transcript

Ogólnym celem tej procedury jest zademonstrowanie powstawania serpentyn bakteryjnych w urządzeniu mikroprzepływowym z mikrofilarami. Osiąga się to poprzez pierwsze wyprodukowanie chipa mikroprzepływowego. Drugim etapem zabiegu jest wyhodowanie badanych bakterii, w tym przypadku fluorescencja pseudomonas.

Ostatnie kroki to złożenie zestawu eksperymentalnego, wstrzyknięcie bakterii do chipa mikroprzepływowego i zebranie danych. Ostatecznie wyniki mogą pokazać ewolucję serpentyny w czasie za pomocą obrazów z mikroskopii fluorescencyjnej grypy. Wizualna demonstracja tego metalu ma kluczowe znaczenie, ponieważ różne kroki są trudne do nauczenia.

Ze względu na interdyscyplinarny charakter eksperymentu, procedura ta wymaga wafli krzemowych z głębokim reaktywnym trawieniem jonowym. Fotorezystor na waflach należy zmyć. Zacznij od wyciszenia formy głównej.

Dodaj dwie lub trzy krople trichloroetylenu do fiolki i umieść ją w osuszaczu wraz z wzorem formy do góry obok niego. W ciągu dwóch lub trzech godzin forma zostanie odizolowana. Podczas siloizacji przygotuj silikonową bazę cygara PDMS mix 1 8 4 ze środkiem utwardzającym w proporcji 10 do jednego.

Następnie odgazowuje PDMS pod próżnią przez około dwie godziny. Teraz przenieś silosową płytkę do uchwytu i zalej ją PDMS, upewniając się, że nie tworzą się pęcherzyki. Pozwól PDMS utwardzić się na płytce w temperaturze 80 stopni Celsjusza przez dwie godziny.

To wytwarza stempel A-P-D-M-S z formy silikonowej o rozmiarze. Po zakończeniu utwardzania odklej stempel PDMS za pomocą noża. Następnie wytnij stempel na chip mikroprzepływowy za pomocą noża.

Teraz za pomocą rdzenia tnącego wywierć otwory na wlocie i wytrzyj pozycje na stemplu. Kolejnym krokiem jest przyklejenie stempla do szkła. Wystaw 24-milimetrowe szkiełko nakrywkowe i stempel PDMS na działanie plazmy tlenowej przez 30 sekund.

Po naświetleniu przymocuj szkiełko nakrywkowe do dolnej strony stempla PDMS, a utworzy się wiązanie. Umieść zestaw w piekarniku o temperaturze 70 stopni Celsjusza na 10 minut. Aby zakończyć proces dla tego protokołu, przygotuj płytki LB wykonane z ultraczystej wody i dozowane 50 mikrogramów na mililitr tetracykliny dodanej w temperaturze od 50 do 55 stopni Celsjusza.

Podczas nalewania talerzy bąbelki można pęknąć, paląc je. Schłodzone i zestalone płytki należy datować i przechowywać w temperaturze czterech stopni Celsjusza w folii aluminiowej. Przygotowałem również bulion LB wykonany z ultra czystej wody i dozowany z 50 mikrogramami na mililitr tetracykliny.

Przechowuj bulion w temperaturze czterech stopni Celsjusza, a także zawiń w folię. Teraz hodowle fluorescencji Pseudomonas przechowywane w temperaturze minus 80 stopni Celsjusza na płytkach LB, ułóż płytki w zygzakowaty wzór i inkubuj je przez noc w temperaturze 30 stopni Celsjusza w ciemności. Następnego dnia wybierz kolonię z talerza i zaszczep kolbę świeżo przygotowanego S one inkubowanego przez noc w temperaturze 30 stopni Celsjusza z 150 obr./min wstrząsania.

Zmierzyć gęstość optyczną kultury po inkubacji. Następnie wykonaj roztwór S dwa. Dodaj pięć mililitrów LB do plastikowej probówki, a następnie dodaj wystarczającą ilość roztworu S one do uzyskania OD przy 600 nanometrach 0,1, co jest typowe dla eksperymentu z biofilmem.

Najpierw przeprowadź eksperyment za pomocą pęsety Podłącz plastikowe rurki o średnicy wewnętrznej 0,20 cala do wlotów i wylotów przygotowanego chipa. Rurki muszą być elastyczne i wystarczająco długie. Tutaj mają około 20 cali.

Następnie napełnić strzykawki roztworem S dwa. Przymocuj igły o rozmiarze 30 i usuń bąbelki. Zapobieganie przedostawaniu się pęcherzyków powietrza do kanału jest krytycznym krokiem, zwłaszcza ze względu na czas trwania eksperymentu na linii.

Bąbelki mogą uszkadzać miękkie struktury utworzone przez bakterie. Następnie podłączyć strzykawki do rurek wlotowych i podłączyć rurki wylotowe do pojemników na odpady. Teraz umieść strzykawki w pompie strzykawkowej i ustaw pompę na żądane natężenie przepływu, takie jak osiem mikrolitrów na godzinę pod mikroskopem wyposażonym w komorę komórkową ustawioną na temperaturę inkubacji.

Użyj obiektywu 40x, aby zobaczyć chip mikroprzepływowy. Teraz uruchom pompę. Po wprowadzeniu bakterii do komory inicjowane jest również tworzenie biofilmu.

Biofilm będzie się tworzył i dojrzewał przez godziny, dni, robił zdjęcia, aby śledzić jego postęp. Za pomocą SEMA wykonano obraz układu mikroprzepływowego. Wejście przypominające widelec jest tworzone w celu wyrównania ciśnienia w poprzek urządzenia.

Widać też, że ściany filarów są prawie pionowe. W celu zbadania tworzenia się biofilmu fluorescencji wstrzyknięto do urządzenia w ilości ośmiu mikrolitrów na godzinę. Tworzenie biofilmu rozpoczęło się po kilku minutach infuzji rozcieńczonej kultury bakteryjnej.

Jednak po kilku godzinach w pobliżu części środkowej zaobserwowano pojawienie się nitkowatych struktur rozciągających się między mikrofilarami. Przerywana elipsa wyznacza tworzące się serpentyny uformowane na uwięzi na jednym końcu do obszaru biegunowego jednego z mikrofilarów. Serpentyny były również widziane wzdłuż przekątnej między dwoma mikrofilarami.

Grubość serpentyn zwiększała się z czasem w wyniku podziału komórek, a także inkorporacji bakterii planktonowych. Rozprzestrzeniały się również wraz ze strumieniami czasu zajmującymi dużą objętość w urządzeniu, co prowadziło do tworzenia się dojrzałego biofilmu, który mógł zatkać urządzenie. Mechaniczna symulacja przepływu przez urządzenie pokazuje, że serpentyny początkowo orientują się wzdłuż płynnych linii strumienia.

Co więcej, w początkowej fazie wstęgi powstają w miejscach o największej prędkości przepływu. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, w jaki sposób powstają i ewoluują strumienie biofilmu w środowisku mikroprzepływowym. Nie zapominaj, że praca z bakteriami może być bardzo niebezpieczna, a podczas wykonywania tej procedury należy zawsze podejmować środki ostrożności, takie jak protokoły bezpieczeństwa biologicznego.

Explore More Videos

Słowa kluczowe: biofilm urządzenie mikroprzepływowe mikrofilary Pseudomonas fluorescens porowate media tworzenie streamerów miękka litografia hodowla bakterii eksperymenty przepływowe

Related Videos

Urządzenie mikroprzepływowe z wzorami rowków do badania zachowania komórek

13:50

Urządzenie mikroprzepływowe z wzorami rowków do badania zachowania komórek

Related Videos

12.7K Views

Okno na mikroświat: proste systemy mikroprzepływowe do badania transportu mikrobiologicznego w ośrodkach porowatych

14:25

Okno na mikroświat: proste systemy mikroprzepływowe do badania transportu mikrobiologicznego w ośrodkach porowatych

Related Videos

11.1K Views

Kokultura mikroprzepływowa komórek nabłonkowych i bakterii w celu badania rozpuszczalnych interakcji za pośrednictwem sygnału

12:25

Kokultura mikroprzepływowa komórek nabłonkowych i bakterii w celu badania rozpuszczalnych interakcji za pośrednictwem sygnału

Related Videos

14.3K Views

Mikroprzepływowy bioreaktor pikoliterowy do analizy mikrobiologicznej pojedynczych komórek: produkcja, konfiguracja systemu i obsługa

12:04

Mikroprzepływowy bioreaktor pikoliterowy do analizy mikrobiologicznej pojedynczych komórek: produkcja, konfiguracja systemu i obsługa

Related Videos

12.7K Views

Wykonanie i wizualizacja mostków kapilarnych w geometrii porów szczelinowych

11:20

Wykonanie i wizualizacja mostków kapilarnych w geometrii porów szczelinowych

Related Videos

7.1K Views

Zastosowanie wysokowydajnego systemu mikroprzepływowego in vitro do tworzenia wielogatunkowych biofilmów w jamie ustnej

07:09

Zastosowanie wysokowydajnego systemu mikroprzepływowego in vitro do tworzenia wielogatunkowych biofilmów w jamie ustnej

Related Videos

13.7K Views

Metody charakteryzowania współrozwoju biofilmu i heterogeniczności siedlisk

09:21

Metody charakteryzowania współrozwoju biofilmu i heterogeniczności siedlisk

Related Videos

10.2K Views

Wizualizacja tworzenia się biofilmu u Candida albicans za pomocą zautomatyzowanego urządzenia mikroprzepływowego

11:14

Wizualizacja tworzenia się biofilmu u Candida albicans za pomocą zautomatyzowanego urządzenia mikroprzepływowego

Related Videos

10.9K Views

Połączenie urządzeń fluidycznych z mikroskopią i cytometrią przepływową w celu badania transportu drobnoustrojów w ośrodkach porowatych w skalach przestrzennych

12:32

Połączenie urządzeń fluidycznych z mikroskopią i cytometrią przepływową w celu badania transportu drobnoustrojów w ośrodkach porowatych w skalach przestrzennych

Related Videos

6.7K Views

Modelowanie mikroorganizmów i mikrocząstek poprzez sekwencyjny montaż wspomagany kapilarnością

10:17

Modelowanie mikroorganizmów i mikrocząstek poprzez sekwencyjny montaż wspomagany kapilarnością

Related Videos

3.5K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code