April 26th, 2016
Przedstawiono protokół użycia wysokosprawnych kolumn do chromatografii cieczowej z przepływem reakcji dla metod wykorzystujących derywatyzację po kolumnie (PCD).
Ogólnym celem tej metody jest poprawa wydajności i czułości wysokosprawnej chromatografii cieczowej po derywatyzacji kolumnowej lub metody PCD poprzez zastosowanie kolumny przepływowej reakcji. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinach takich jak farmacja, biomedycyna i nauki o środowisku, gdzie analizowane są związki o niskiej odpowiedzi na detektory HPLC. Główną zaletą tej techniki jest to, że nie są potrzebne cewki reakcyjne.
Ponieważ mieszanie odczynnika odpływającego z kolumny i odczynnika derywatyzującego zachodzi bardziej efektywnie niż metody konwencjonalne. Ta metoda została wykorzystana do zapewnienia wglądu w przeciwutleniacze, aminokwasy i fenole. Może być również stosowany do związków innych klas, takich jak tiole, metale, antybiotyki i toksyny.
Chociaż cała próbka nie jest derywatyzowana, ze względu na mniejsze poszerzenie pasma, stężenie analitu w strumieniu przepływu ścieków jest wyższe niż w konwencjonalnej analizie derywatyzacji po kolumnie. Aby rozpocząć tę procedurę, należy przygotować przyrząd HPLC ze 100% wodą na linii A i 100% metanolem na linii B jako fazą ruchomą, przedmuchując pompy zgodnie z wymaganiami producenta. Ustawić komponenty instrumentalne HPLC i dodatkową pompę do derywatyzacji.
Następnie ustaw detektor UV/VIS na analizę na długości fali 520 nanometrów. Podłącz wlot kolumny przepływu reakcyjnego lub RF do przyrządu HPLC. Podłącz wylotowy port peryferyjny do detektora UV/VIS za pomocą rurki o długości 15 centymetrów i średnicy wewnętrznej 0.13 milimetra.
Następnie podłącz przewód pompy DPPH do portu peryferyjnego na wylocie kolumny RF. Zablokuj nieużywany port peryferyjny na wylocie kolumny RF za pomocą ogranicznika kolumny. Podłącz rurkę o długości 15 centymetrów i średnicy wewnętrznej 0.13 milimetra do centralnego portu wylotowego kolumny RF.
Doprowadzić natężenie przepływu pompy HPLC do jednego milimetra na minutę przy 100% metanolu. Następnie równoważyć kolumnę ze 100% metanolem przez 10 minut. W tym momencie przygotuj 0,1 miligrama na mililitr roztworu DPPH i metanolu.
Sonikować kolbę zawierającą odczynnik DPPH przez 10 minut. Przedmuchnąć pompę DPPH przygotowanym odczynnikiem DPPH zgodnie z wymaganiami producenta. Następnie weź dwa suche i czyste naczynia i oznacz jedno jako środkowe"a drugie jako peryferyjne"Dokładnie zważ oba naczynia.
Zbieraj ścieki wychodzące z portu centralnego do naczynia oznaczonego jako "central" przez jedną minutę. Po ponownym zważeniu centralnego statku portowego należy obliczyć masę przepływu z portu centralnego. Powtórz poprzednie kroki dla ścieków wychodzących z UV/VIS, który jest podłączony do portu peryferyjnego kolumny RF.
Obliczyć masę statku z portem peryferyjnym. Następnie oblicz procent przepływu pochodzącego z portów centralnych i peryferyjnych. Powtarzaj poprzednie kroki, aż stosunek przepływu będzie prawidłowy, a następnie ustaw natężenie przepływu pompy DPPH na 0,5 mililitra na minutę.
Po zakończeniu przebiegu zatrzymaj przepływ pompy odczynnika do derywatyzacji. Odłącz przewód pompy odczynnika DPPH od portu peryferyjnego i zakorkuj port. Zrównoważyć kolumnę z fazą ruchomą, w której ma być przechowywana, pozwalając fazie ruchomej przechodzić przez kolumnę z prędkością jednego milimetra na minutę przez 10 minut.
Następnie zatrzymaj przepływ pompy fazy bąbelkowej w przyrządzie HPLC. Na koniec zastąp odczynnik DPPH metanolem i oczyść dodatkową pompę. Pokazano tutaj dwa chromatogramy próbki kawy ristretto, derywatyzowanej rodnikiem DPPH przy użyciu zarówno konwencjonalnego oprzyrządowania PCD, jak i RF-PCD.
Obliczone granice oznaczalności i wykrywania dla każdego z aminokwasów analizowanych zarówno w trybie RF-PCD, jak i konwencjonalnym PCD są wymienione tutaj. Przedstawiono chromatogram czterech aminokwasów analizowanych konwencjonalną metodą PCD, metodą RF-PCD oraz niederywatyzowanego strumienia z metody RF-PCD. Przedstawiono tutaj porównanie sygnałów uzyskanych dla pików spowodowanych glicyną i leucyną przy użyciu zarówno konwencjonalnych metod PCD, jak i RF-PCD.
Przedstawiono porównanie szerokości piku tryptofanu podczas analizy przy użyciu konwencjonalnej metody PCD, metody RF-PCD oraz strumienia niederywatyzowanego z metody RF-PCD. 21-składnikowa próbka testowa, która zawierała niektóre składniki, które wykazują reakcję na schemat derywatyzacji, a niektóre, które tego nie robią, zostały oddzielone, derywatyzowane i wykryte. Ta sama mieszanina została również oddzielona i wykryta jako niederywatyzowana dla porównania.
Przedstawiono tutaj porównanie kształtu piku para-krezolu, zarówno derywatyzowanego przy użyciu kolumny RF-PCD, jak i niederywatyzowanego. Po opanowaniu technikę tę można skonfigurować w tym samym czasie, co konwencjonalną analizę derywatyzacji po kolumnie. Podczas wykonywania tej procedury należy pamiętać, aby być jak najbardziej zbliżonym do zalecanych proporcji przepływu.
Zgodnie z tą procedurą można użyć innych odczynników do derywatyzacji po kolumnie, takich jak OPA, ninhydryna lub halogeny w celu analizy innych związków. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś mieć dobry pomysł, jak skonfigurować i dostroić kolumnę przepływu reakcji.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Ten artykuł przedstawia protokół poprawy wydajności i czułości chromatografii cieczowej wysokiej efektywności (HPLC) po kolumnie pochodnych (PCD) z wykorzystaniem kolumn z przepływem reakcji. Ta metoda jest szczególnie przydatna w analizie związków o niskich odpowiedziach dla detektorów HPLC w różnych dziedzinach nauki.
Post column derivatization (PCD) enhances detection sensitivity for low-response analytes in pharmaceutical and biomedical research, but conventional methods suffer from band broadening due to large reaction coils. Reaction flow PCD (RF-PCD) eliminates this limitation by enabling efficient mixing within the column, improving separation efficiency and signal-to-noise ratio. This advancement supports reliable quantification of compounds such as amino acids, antioxidants, and phenols, directly impacting assay sensitivity in early discovery workflows.
RF-PCD fits within the discovery continuum by improving detection reliability in early-stage screening, where sensitive quantification of bioactive compounds informs lead identification and prioritization.