-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Pomiar postępującej niepełnosprawności neurologicznej w mysim modelu stwardnienia rozsianego
Pomiar postępującej niepełnosprawności neurologicznej w mysim modelu stwardnienia rozsianego
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Measuring Progressive Neurological Disability in a Mouse Model of Multiple Sclerosis

Pomiar postępującej niepełnosprawności neurologicznej w mysim modelu stwardnienia rozsianego

Full Text
11,564 Views
08:11 min
November 14, 2016

DOI: 10.3791/54616-v

Francesca Gilli1, Darlene B. Royce1, Andrew R. Pachner1

1Department of Neurology,Geisel School of Medicine at Dartmouth

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Zoptymalizowany protokół testowy jest przedstawiony w tym artykule dla testu wydajności Rotarod, używanego do pomiaru postępującej niepełnosprawności neurologicznej u myszy zakażonych TMEV.

Ogólnym celem tej procedury jest ocena postępującego upośledzenia neurologicznego u myszy z przewlekłymi chorobami demielinizacyjnymi. Osiągamy to, oferując rekomendacje parametrów testowych odpowiednich do badania długotrwałej niepełnosprawności neurologicznej w modelu wirusa Theilers postępującego stwardnienia rozsianego, przy użyciu testu Rotarod. Procedura ta stanowi punkt odniesienia, na podstawie którego można ocenić znaczenie modelu mysiego dla postępującej demielinizacji i jego przydatność do testowania terapii mających na celu leczenie postępujących schorzeń neurologicznych, takich jak stwardnienie rozsiane.

Przewagą tego zoptymalizowanego testu nad tradycyjnym wizualnym systemem punktacji jest to, że generuje on obiektywną zmienną do ilościowego określenia długoterminowego wpływu terapii i procedur eksperymentalnych na funkcje motoryczne. Tę procedurę zademonstruje Darlene Royce, technik z laboratorium neuroimmunologii w Dartmouth. Aby ocenić wyjściową równowagę, koordynację i kontrolę motoryczną, należy rozpocząć protokół adaptacyjny na pięć dni przed zakażeniem TMEV, najpierw pozwalając myszom zaaklimatyzować się w pomieszczeniu testowym przez co najmniej 30 minut.

Podczas gdy myszy się aklimatyzują, ustaw Rotarod z parametrami treningowymi minus pięć DPI. Następnie chwyć mysz za ogon i umieść ją na pręcie skierowanym tyłem do operatora. Jeśli mysz upadnie lub podskoczy, umieść ją z powrotem na swoim pasie na Rotarodzie, aż wszystkie myszy znajdą się na swoim miejscu.

Po załadowaniu wszystkich czterech myszy naciśnij przycisk Enter, aby rozpocząć eksperyment. Upewnij się, że timery uruchamiają się automatycznie i obserwuj obroty na minutę wyświetlane dla każdego pasa. Następnie, gdy każde zwierzę spada z pręta, zapisz prędkość pręta w momencie upadku, a także czas, w którym zwierzę pozostawało na pręcie.

Po tym, jak wszystkie myszy upadną, użyj chusteczki, aby usunąć wszelkie kał i mocz z pręta, ponieważ obecność moczu i materiału kałowego może wpływać na zdolność myszy do prawidłowego chwytania pręta. Po trzyminutowym odpoczynku daj myszom drugą, a następnie trzecią próbę, w której maksymalny czas pojedynczej próby wynosi 240 sekund. Wykonaj w sumie trzy próby w ciągu każdego dnia testowego.

Na koniec zwróć myszy do ich domowej klatki. W dniach ujemnych cztery, ujemnie trzy, ujemnie dwa i ujemnie jeden PI, ustaw Rotarod z odpowiednimi parametrami protokołu treningowego i powtórz eksperyment Rotarod. Zacznij od przeniesienia klatek zawierających od czterech do sześciu tygodni samic myszy SJL ze stojaka do wygodnej przestrzeni roboczej.

Użyj dziurkaczy do uszu do oznaczania myszy, aby umożliwić indywidualną ocenę choroby klinicznej i histologicznej. Następnie narysuj 30 mikrolitrów materiału infekującego TMEV w PBS do igły strzykawki insulinowej o rozmiarze 29. Przygotuj aparat do znieczulenia, zapewniając obecność odpowiedniej ilości tlenu i izofluranu na czas trwania zabiegu.

Umieść zwierzę w komorze indukcyjnej i uszczelnij górę. Po kilku minutach wyjmij zwierzę z komory i przetestuj mysz, ściskając podkładkę pod stopę, aby zapewnić odpowiednie znieczulenie. Następnie oczyść miejsce wstrzyknięcia 70% alkoholem izopropylowym i wstrzyknij 30 mikrolitrów materiału infekującego TMEV do prawej półkuli mózgowej za pomocą wstrzyknięcia z wolnej ręki.

Na koniec przywróć mysz do klatki trzymania, gdy będzie w pełni czujna i mobilna. W siódmym dniu po zakażeniu należy ustawić Rotarod z odpowiednimi parametrami eksperymentalnymi i powtórzyć całe ćwiczenie treningowe Rotarod z odpowiednimi parametrami protokołu eksperymentalnego. Po trzecim badaniu każdego dnia należy zważyć każdą mysz i zanotować masę ciała w karcie danych.

Testuj myszy dwa razy w tygodniu przez następne sześć tygodni w ten sam sposób. Po sześciu tygodniach testuj myszy raz w tygodniu za pomocą tego samego protokołu eksperymentalnego przez średnio 150 dni eksperymentalnych. Następnie przeanalizuj surowe dane i wyraź je jako neurologiczny wskaźnik funkcjonalny lub NFI.

Aby określić indywidualną wartość NFI, oblicz wyjściowy próg wydajności każdej myszy jako średnią wszystkich czasów działania od 15 do 45 dni po zakażeniu. Aby umożliwić ocenę sprawności motorycznej w wyniku postępującej demielinizacji i wykluczyć wszelkie deficyty przyczyniające się do wczesnego zapalenia mózgu. Następnie oblicz wartość NFI jako średnią trzech ostatnich średnich czasów działania podzieloną przez podstawowy próg wydajności myszy.

Na koniec należy obliczyć skorygowany NFI, dzieląc wartość NFI przez średnią wartość NFI uzyskaną przez grupę pozorowaną leczoną w tym konkretnym dniu. Rysunek ten pokazuje, że myszy zakażone TMEV wykazują znacznie zwiększone deficyty neurologiczne w czasie w porównaniu z myszami kontrolnymi. Przewlekłe zakażenie dwoma różnymi szczepami TMEV negatywnie wpłynęło na czas pracy myszy.

Obie grupy myszy zakażonych TMEV miały znacznie niższe wartości NFI niż myszy pozorowane. Co więcej, nie było różnicy między progresją niepełnosprawności u myszy zakażonych szczepem BeAn i u myszy zakażonych szczepem DA we wszystkich punktach czasowych. Po tej procedurze można zastosować tradycyjne metody oceny wizualnej, takie jak test odruchu prostującego, w celu szybkiej oceny ogólnego stanu zdrowia myszy.

Po jej opracowaniu technika ta utorowała drogę naukowcom zajmującym się stwardnieniem rozsianym i chorobami neurodegeneracyjnymi do testowania skuteczności terapii i innych interwencji w opóźnianiu postępującej niepełnosprawności. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak ocenić długoterminową postępującą niepełnosprawność u myszy. Procedura ta jest przydatna nie tylko w wykrywaniu postępującej niepełnosprawności neurologicznej w modelu wirusa Theilera, ale jest również przydatna w odkrywaniu upośledzeń w innych mysich modelach chorób neurodegeneracyjnych.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Słowa kluczowe: Model mysi stwardnienie rozsiane postępująca niepełnosprawność neurologiczna test rotarod wirus Theilers funkcje motoryczne koordynacja równowagi aklimatyzacja protokół treningowy czas do upadku próby

Related Videos

Pomiar koordynacji ruchowej u myszy

10:07

Pomiar koordynacji ruchowej u myszy

Related Videos

102.2K Views

Badania kliniczne i usunięcie rdzenia kręgowego w mysim modelu stwardnienia zanikowego bocznego (ALS)

12:35

Badania kliniczne i usunięcie rdzenia kręgowego w mysim modelu stwardnienia zanikowego bocznego (ALS)

Related Videos

28.7K Views

Test wydajności stwardnienia rozsianego (MSPT): narzędzie do oceny niepełnosprawności oparte na iPadzie

11:35

Test wydajności stwardnienia rozsianego (MSPT): narzędzie do oceny niepełnosprawności oparte na iPadzie

Related Videos

58.8K Views

Szybki fenotypowy system punktacji neurologicznej do oceny postępu choroby w mysim modelu SOD1-G93A ALS

06:49

Szybki fenotypowy system punktacji neurologicznej do oceny postępu choroby w mysim modelu SOD1-G93A ALS

Related Videos

20.9K Views

Bioluminescencja i obrazowanie w bliskiej podczerwieni zapalenia nerwu wzrokowego i zapalenia mózgu w modelu EAE stwardnienia rozsianego u myszy

08:05

Bioluminescencja i obrazowanie w bliskiej podczerwieni zapalenia nerwu wzrokowego i zapalenia mózgu w modelu EAE stwardnienia rozsianego u myszy

Related Videos

9.7K Views

Analiza kinematyczna chodu w płaszczyźnie strzałkowej u myszy C57BL/6 poddanych eksperymentalnemu autoimmunologicznemu zapaleniu mózgu i rdzenia wywołanemu MOG35-55

13:02

Analiza kinematyczna chodu w płaszczyźnie strzałkowej u myszy C57BL/6 poddanych eksperymentalnemu autoimmunologicznemu zapaleniu mózgu i rdzenia wywołanemu MOG35-55

Related Videos

9.2K Views

In vivo (in vivo) Elektrofizjologiczny pomiar złożonego potencjału czynnościowego mięśni z kończyn przednich w mysich modelach zwyrodnienia neuronów ruchowych

06:35

In vivo (in vivo) Elektrofizjologiczny pomiar złożonego potencjału czynnościowego mięśni z kończyn przednich w mysich modelach zwyrodnienia neuronów ruchowych

Related Videos

20.6K Views

Wykorzystanie MouseWalker do ilościowego określenia dysfunkcji lokomotorycznej w mysim modelu urazu rdzenia kręgowego

07:28

Wykorzystanie MouseWalker do ilościowego określenia dysfunkcji lokomotorycznej w mysim modelu urazu rdzenia kręgowego

Related Videos

4.2K Views

Ocena zapalenia ośrodkowego układu nerwowego, demielinizacji i uszkodzenia aksonów w eksperymentalnym autoimmunologicznym zapaleniu mózgu i rdzenia

08:17

Ocena zapalenia ośrodkowego układu nerwowego, demielinizacji i uszkodzenia aksonów w eksperymentalnym autoimmunologicznym zapaleniu mózgu i rdzenia

Related Videos

5.6K Views

Modelowanie stwardnienia rozsianego u obu płci: eksperymentalne autoimmunologiczne zapalenie mózgu i rdzenia wywołane MOG35-55

05:44

Modelowanie stwardnienia rozsianego u obu płci: eksperymentalne autoimmunologiczne zapalenie mózgu i rdzenia wywołane MOG35-55

Related Videos

2.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code