1 września 2017
Ta praca przedstawia krok po kroku protokół bezstronnego stereologicznego szacowania liczby komórek neuronalnych dopaminergicznych w istocie czarnej myszy przy użyciu standardowego sprzętu mikroskopowego (tj. mikroskopu świetlnego, zmotoryzowanej tabeli obiektów (płaszczyzna x, y, z) oraz oprogramowania do cyfrowej analizy obrazu.
Ogólnym celem tego protokołu jest opisanie opartego na projekcie stereologicznego oszacowania liczby komórek dopaminergicznych w SN myszy przy użyciu standardowego sprzętu mikroskopowego. Metoda ta jest przydatna do oszacowania liczby neuronów dopaminergicznych w istocie czarnej myszy w przedklinicznych badaniach nad chorobą Parkinsona przy użyciu bezstronnej stereologii opartej na projektowaniu. Główną zaletą tej techniki jest to, że można ją osiągnąć za pomocą standardowego sprzętu do mikroskopii bez konieczności posiadania dostępnego na rynku kompletnego zestawu do badań geologicznych.
Procedurę zademonstruje Louisa Friez, technik z mojego laboratorium. Zacznij od umieszczenia mózgu myszy z utrwalonym paraformaldehydem w matrycy mózgowej i wykonania cięcia plus 0,74 milimetra od bregmy. Przenieś ogonową część mózgu, w tym SN, do 4% PFA w 0,1 mola i utrwal przez noc w temperaturze czterech stopni Celsjusza.
Następnego dnia wymień PFA na 30% sacharozę w 0,1 molowym PBS i inkubuj przez kolejne dwa dni w temperaturze czterech stopni Celsjusza, aby zabezpieczyć próbkę przed krioochroną. Po dwóch dniach, gdy mózg zanurzy się w sacharozy, umieść tkankę w Cryomold wypełnionym związkiem o optymalnej temperaturze cięcia i powoli zamrażaj tkankę w płynnym izopentanie chłodzonym suchym lodem. Użyj kriostatu, aby seryjnie przeciąć 30-mikronowe odcinki kriogeniczne w płaszczyźnie koronalnej.
Zaznacz prawą półkulę, przebijając mały otwór w górnej części pnia mózgu. Zbierz cztery serie sekcji, zaczynając od minus 2,46 milimetra od bregmy i kończąc na 4,04 milimetra od bregmy. Przenieś każdą serię odcinków do probówki wypełnionej krioprotektantem i przechowuj w temperaturze minus 20 stopni Celsjusza.
Przechwytywanie cyfrowych obrazów immunohistochemicznie wybarwionych skrawków SN hydroksylazy tyrozyny za pomocą oprogramowania do obrazowania sprzężonego z mikroskopem. Zacznij od określenia rzeczywistego mocowania i grubości sekcji w trzech losowo wybranych miejscach liczenia na sekcję. Najpierw kliknij odsunięcie górnej części widoku, aby zdefiniować górną część sekcji.
Następnie kliknij zatrzymaj widok u góry. Następnie kliknij przesunięcie dolnego widoku, a następnie kliknij zatrzymaj widok na dole. Zapisz grubość przekroju.
Oblicz strefę ochronną, odejmując trzy mikrony od górnego przesunięcia i wpisz wynik w polu górnego przesunięcia. Następnie odejmij wysokość 13 mikronów dysektora optycznego od górnego numeru przesunięcia i wpisz wynik w polu dolnego przesunięcia. Wybierz następujące parametry, kroki 14, rozmiar 1.00.
Wybierz katalog, w którym chcesz zapisać plik. Kliknij sekwencję, aby rozpocząć akwizycję. Po uzyskaniu obrazów kliknij przetwarzanie i wybierz następujące parametry, wszystkie płaszczyzny z sekwencji, montażu oraz pola szybkiego i zszywania z nakładaniem się obrazów 10%Rozpocznij zszywanie obrazów, klikając start.
Spowoduje to wygenerowanie obrazów stosu do analizy. Aby rozpocząć, otwórz obraz, klikając plik i otwórz. Ustawianie skali obrazu za pomocą polecenia Analizuj i Ustaw skalę.
W tym kroku zmień zdefiniowany rozmiar z pikseli na mikrony. Wybierz wtyczki, a następnie siatkę, a następnie polecenie linii typu grid, aby losowo wstawić siatkę. Zaznacz pole losowego przesunięcia.
Zdefiniuj rozmiar jednego kwadratu w siatce jako 130 mikronów na 130 mikronów, co odpowiada 16 900 mikronom kwadratowym. Zmień typ obrazu z 16-bitowego na kolor RGB, klikając obraz, a następnie wpisz, a następnie kolor RGB. Zlokalizuj substantia nigra pars compacta.
Okrąż obszar za pomocą narzędzia Pędzel za pomocą pędzla o szerokości 11. Cofnij polecenie ustaw skalę, klikając analizuj, a następnie ustaw skalę, a następnie kliknij, aby usunąć skalę, aby obliczać w pikselach, a nie w mikronach. Zrób zrzut ekranu, zapisz plik obrazu i otwórz nowy plik za pomocą ImageJ.
Wybierz pędzel i szerokość pędzla 25. Zaznacz każdy kwadrat siatki, który styka się z SN, w celu umieszczenia dysektora optycznego. Wybierz jeden kwadrat siatki, który zawiera części numeru seryjnego. Zmierz lewy górny róg kwadratu za pomocą kursora w ImageJ, aby zdefiniować początkowe współrzędne x i y.
Wybierz szablon arkusza kalkulacyjnego zatytułowany Pozycja optycznej dyssektora i oblicz pozycję optycznego rozsektorowania. Następnie oszacuj liczbę komórek, korzystając z obliczeń arkusza kalkulacyjnego liczby komórek, jak opisano w pisemnej części protokołu. Ten obraz o niskiej mocy pokazuje fragment mózgu myszy po barwieniu TH dla neuronów dopaminergicznych.
Większe powiększenie przedstawia neurony dopaminergiczne TH dodatnie. Wstawka przedstawia obszar ramki w zwiększonym powiększeniu. Ten obraz przedstawia jedną serię wybarwionych TH odcinków SN obejmujących cały SN myszy od rostralnego do ogonowego.
Każda sekcja jest oddzielona od kolejnej sekcji o 120 mikronów. Liczbę neuronów TH dodatnich w SN prawej i lewej myszy oszacowano przy użyciu metody pokazanej w tym filmie i przy użyciu dostępnego na rynku systemu stereologicznego. Jak widać tutaj, obie metody dały porównywalną liczbę komórek i nie było znaczących różnic między zestawami danych.
Nie zapominaj, że praca z paraformaldehydem może być niezwykle niebezpieczna, a podczas wykonywania tej procedury należy zawsze podejmować środki ostrożności, takie jak noszenie środków ochrony osobistej, takich jak rękawice ochronne. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak przeprowadzić bezstronne stereologiczne oszacowanie liczby neuronów dopaminergicznych w istocie czarnej myszy przy użyciu metody frakcji optycznej i standardowego sprzętu mikroskopowego.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł przedstawia protokół bezstronnej oceny stereologicznej liczby neuronów dopaminergicznych w istocie czarnej myszy z wykorzystaniem standardowych narzędzi mikroskopowych. Metoda ta ma na celu ułatwienie badań przedklinicznych nad chorobą Parkinsona poprzez zapewnienie niezawodnego podejścia do kwantyfikacji komórek bez konieczności stosowania specjalistycznych systemów stereologicznych.
Dokładna kwantyfikacja utraty neuronów dopaminergicznych w obrębie istoty czarnej jest kluczowym punktem końcowym w przedklinicznych badaniach nad chorobą Parkinsona, bezpośrednio wpływając na walidację celu oraz redukcję ryzyka mechanistycznego strategii neuroprotekcyjnych. Niniejszy protokół umożliwia wiarygodną i bezstronną ocenę stereologiczną z wykorzystaniem standardowego sprzętu mikroskopowego, co zmniejsza zależność od specjalistycznych systemów stereologicznych i zwiększa dostępność dla procesów badawczych w biologii odkrywczej. Dostarczając ilościowe i powtarzalne dane dotyczące liczby komórek, metoda ta wspiera pewność prognostyczną w testowaniu hipotez dotyczących celów na wczesnym etapie oraz w decyzjach dotyczących priorytetów portfolio.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum procesów badawczych, od testowania hipotez dotyczących celów terapeutycznych, przez identyfikację wiodących związków, aż po przedkliniczną ocenę skuteczności, zapewniając ilościowy odczyt histologiczny, który pogłębia zrozumienie mechanizmów działania i zwiększa pewność co do wyboru celu.