-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Preparaty i protokoły do rejestracji całych komórek w postaci klamry krosowej neuronów tektalnych...
Preparaty i protokoły do rejestracji całych komórek w postaci klamry krosowej neuronów tektalnych...
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Preparations and Protocols for Whole Cell Patch Clamp Recording of Xenopus laevis Tectal Neurons

Preparaty i protokoły do rejestracji całych komórek w postaci klamry krosowej neuronów tektalnych Xenopus laevis

Full Text
9,986 Views
05:25 min
March 15, 2018

DOI: 10.3791/57465-v

Zhenyu Liu1, Katelynne B. Donnelly1, Kara G. Pratt1

1Department of Zoology and Physiology and Program in Neuroscience,University of Wyoming

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study explores whole cell patch clamp recording techniques to study the retinotectal circuit in Xenopus laevis tadpoles. By utilizing different brain preparations, the research aims to understand the connectivity patterns of neurons in the tadpole optic tectum during development and the overall function of neural circuits.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Electrophysiology
  • Neural Circuitry

Background

  • Investigating how neural circuits form and function in developing organisms.
  • The retinotectal circuit is crucial for visual processing in amphibians.
  • Xenopus laevis tadpoles serve as a valuable model for studying neural connectivity.
  • Whole cell recordings provide detailed insights into neuronal activity.

Purpose of Study

  • To understand the patterns of connectivity among neurons in the optic tectum.
  • To analyze how neurons change throughout development.
  • To explore how neural circuits contribute to behavior.

Methods Used

  • Whole cell patch clamp methods were used for electrophysiological recordings.
  • The biological model involved dissected tadpole brains to study optic tectum neurons.
  • No multiomics workflows were mentioned.
  • Specific steps included immobilizing the tadpole, isolating the brain, and performing targeted recordings.
  • The methods allow recording within a crucial timeframe of 10 minutes, typically lasting for several hours.

Main Results

  • The preparations successfully facilitated the recording of neuron activity in the tectum.
  • Electrophysiological changes indicative of neural connectivity were observed.
  • The results prompted discussions on the functional implications of the retinotectal circuit.
  • Findings contribute to understanding developmental neural circuitry.

Conclusions

  • This research demonstrates effective methods for studying neural connectivity in developing tadpole brains.
  • The study enhances understanding of neural circuit function during development.
  • Results have broader implications for examining neurological processes and behaviors in amphibians.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using Xenopus laevis tadpoles for neural studies?
Xenopus laevis tadpoles offer a simplified model for studying neural circuits and are amenable to electrophysiological techniques due to their transparent bodies and accessible brain structures.
How are whole cell recordings performed on tadpole neurons?
Whole cell recordings are performed after isolating the tadpole brain, allowing direct access to tectal neurons via a recording pipette.
What types of outcomes can be obtained from this method?
Electrophysiological data such as action potentials, synaptic responses, and neuronal connectivity can be obtained from the recordings.
How might these techniques be adapted for use in other species?
The dissection and recording techniques could be modified to fit other amphibians or vertebrates with similar brain structures for comparative neuroscience studies.
Are there any limitations to this method?
One limitation is that the preparation requires significant skill and may have variable success rates depending on the operator.
What insights do the findings provide regarding neural circuit function?
The findings highlight the importance of specific connectivity patterns in the retinotectal circuit, elucidating how these connections may evolve during development.

W tym artykule omawiamy trzy preparaty mózgowe używane do rejestracji klamer z całych komórek w celu zbadania obwodu siatkówkowego kijanek Xenopus laevis. Każdy preparat, z własnymi specyficznymi zaletami, przyczynia się do eksperymentalnej wykonalności kijanki Xenopus jako modelu do badania funkcji obwodów neuronalnych.

Ogólnym celem tej procedury jest uzyskanie zapisów elektrofizjologicznych całej komórki z neuronów tektum nerwu wzrokowego kijanki, aby poznać ich wzorzec połączeń podczas rozwoju i ostatecznie zrozumieć, jak powstają i funkcjonują obwody nerwowe. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie rozwoju neuronalnego, takie jak to, w jaki sposób neurony zmieniają się w trakcie rozwoju i jak funkcjonują obwody, które powodują zachowanie. Główną zaletą tych preparatów jest to, że pozwalają na elektrofizjologiczny zapis neuronów tektum wzrokowego, aby zapewnić wgląd w funkcję rozwijających się obwodów neuronalnych.

Procedurę zademonstruje Zhenyu Lui, doktorant w moim laboratorium. Za pomocą pipety do usuwania zanieczyszczeń przenieś znieczuloną kijankę do naczynia rejestrującego sekcję zawierającą zewnętrzny roztwór do nagrywania. Przymocuj znieczuloną kijankę do zanurzonego silikonowego bloku na podłodze naczynia do nagrywania sekcji.

Aby uzyskać wyraźny widok mózgu, usuń skórę pokrywającą mózg, wykonując powierzchowne nacięcie wzdłuż linii środkowej za pomocą sterylnej igły o rozmiarze 25. Wyfiletuj mózg wzdłuż tej samej osi linii środkowej, wkładając igłę do cewy nerwowej i delikatnie pociągając w górę, tak aby grzbietowa część rurki została czysto przecięta, pozostawiając nienaruszoną płytkę podłogową. Aby wyizolować mózg, najpierw użyj igły o rozmiarze 25, aby przeciąć tyłomózgowie.

Następnie delikatnie przesuń igłę pod mózgiem w kierunku ogonowym do rostralnego, aby przeciąć całą boczną i brzuszną tkankę łączną oraz włókna nerwowe. Następnie przymocuj mózg do bloku elastomeru silikonowego, umieszczając jedną szpilkę przez jedną z opuszki węchowych, a drugą szpilkę przez tyłomózgowie. Jest to optymalna konfiguracja do nagrywania z neuronów tektalnych.

Następnie przenieś naczynie zawierające przypięty preparat całego mózgu z lunety prosektoryjnej do stanowiska do elektrofizjologii. Usuń błonę komorową za pomocą pipety z potłuczonego szkła. Aby bezpośrednio aktywować aksony RGC, delikatnie opuść bipolarną elektrodę stymulującą na skrzyżowanie wzrokowe, tak aby powstało małe wgniecenie w tkance.

Bipolarna elektroda stymulująca powinna być rostralna i prawie przylegać do dużej środkowej komory, w której znajduje się skrzyżowanie wzrokowe. Elektroda bipolarna napędzana jest stymulatorem impulsów, który pozwala na precyzyjną kontrolę siły stymulacji. Aby przygotować poziomy wycinek mózgu, zacznij od przygotowania całego mózgu.

Następnie użyj żyletki, aby wyciąć najbardziej boczną czwartą część jednej strony jednego z boków jednej tarczy optycznej. To cięcie jest wykonane równolegle do rostralnej płaszczyzny ogonowej. Następnie ponownie przypnij mózg do boku elastomeru silikonowego pokrojoną stroną skierowaną do góry, tak aby somata i neuropil były bezpośrednio dostępne w celu zapisu, a powierzchnia komorowa mózgu była skierowana od bloku elastomeru silikonowego, tak aby można było umieścić elektrodę bipolarną na skrzyżowaniu wzrokowym.

Następnie wykonaj rejestrację całego zacisku krosowego komórki lub potencjału lokalnego pola. Poniżej znajduje się schemat przedstawiający konfigurację poziomego przygotowania wycinka mózgu. Należy zauważyć, że chociaż elektroda stymulująca pozostaje na skrzyżowaniu wzrokowym, pipeta rejestrująca jest teraz ustawiona tak, aby uzyskać dostęp do komórek we wszystkich warstwach tektalnych odsłoniętych przez poziome przygotowanie wycinka mózgu.

Jest to reakcja wywołana przez RGC ze strony neuronu znajdującego się w powierzchownej warstwie tectum. Na tym rysunku zarejestrowane potencjały pola w neuropolu i przekształcone gęstości źródła prądu są pokazane na wykresie obrazu. Po opanowaniu tej techniki można ją wykonać w ciągu 10 minut i zwykle trwa to do trzech lub czterech godzin.

Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak wykonać przygotowanie całego mózgu i poziomego wycinka mózgu do nagrań całych komórek w celu ilościowego określenia właściwości elektrycznych neuronów tektalnych i ich połączeń.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Słowa kluczowe: Klamra łaty na całe komórki Xenopus Laevis neurony tektalne rozwój neuronów obwody neuronalne zapis elektrofizjologiczny tektum wzrokowe znieczulona kijanka rozwarstwienie przygotowanie mózgu elektroda stymulująca skrzyżowanie nerwu wzrokowego

Related Videos

Zapis kanałów jonowych ulegających ekspresji w oocytach Xenopus

08:00

Zapis kanałów jonowych ulegających ekspresji w oocytach Xenopus

Related Videos

26.6K Views

Techniki patch clamp i perfuzji do badania kanałów jonowych ulegających ekspresji w oocytach Xenopus

10:19

Techniki patch clamp i perfuzji do badania kanałów jonowych ulegających ekspresji w oocytach Xenopus

Related Videos

21.7K Views

Elektrofizjologia klamer krosowych całych komórek: metoda badania właściwości elektrycznych neuronów

03:42

Elektrofizjologia klamer krosowych całych komórek: metoda badania właściwości elektrycznych neuronów

Related Videos

5.9K Views

Ustanawianie opaski krosowej całej komórki do zapisu elektrofizjologicznego z siatkówki myszy z płaskim mocowaniem

04:05

Ustanawianie opaski krosowej całej komórki do zapisu elektrofizjologicznego z siatkówki myszy z płaskim mocowaniem

Related Videos

2.2K Views

Zapis klamry krosowej całej komórki w neuronie istoty żelatynowej wycinka rdzenia kręgowego

03:45

Zapis klamry krosowej całej komórki w neuronie istoty żelatynowej wycinka rdzenia kręgowego

Related Videos

629 Views

Nagrania klamry krosowej całej komórki na nienaruszonych zwojach korzenia grzbietowego szczura

04:11

Nagrania klamry krosowej całej komórki na nienaruszonych zwojach korzenia grzbietowego szczura

Related Videos

664 Views

Klamra krosowa całej komórki do badania mechanizmów stymulacji neuronalnej w podczerwieni

08:58

Klamra krosowa całej komórki do badania mechanizmów stymulacji neuronalnej w podczerwieni

Related Videos

21.5K Views

Nagrania patch clamp z embrionalnych komórek Mauthnera danio pręgowanego

07:38

Nagrania patch clamp z embrionalnych komórek Mauthnera danio pręgowanego

Related Videos

16.5K Views

Jednokanałowe nagrywanie z zaciskiem krosowym dołączonym do komórki

13:07

Jednokanałowe nagrywanie z zaciskiem krosowym dołączonym do komórki

Related Videos

25.3K Views

In Utero (w macicy) Podejścia elektroporacyjne do badania pobudliwości subpopulacji neuronalnych i połączeń pojedynczych komórek

10:49

In Utero (w macicy) Podejścia elektroporacyjne do badania pobudliwości subpopulacji neuronalnych i połączeń pojedynczych komórek

Related Videos

10.1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code