-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Oznaczanie partycjonowania błony plazmatycznej dla białek związanych obwodowo
Oznaczanie partycjonowania błony plazmatycznej dla białek związanych obwodowo
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Determination of Plasma Membrane Partitioning for Peripherally-associated Proteins

Oznaczanie partycjonowania błony plazmatycznej dla białek związanych obwodowo

Full Text
8,823 Views
11:11 min
June 15, 2018

DOI: 10.3791/57837-v

Stanislav Vosolsobě1, Kateřina Schwarzerová1, Jan Petrášek1

1Department of Experimental Plant Biology,Faculty of Science, Charles University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a protocol for quantitatively analyzing the plasma-membrane association of fluorescently-tagged peripherally-associated proteins. The method allows for real-time observation of protein distribution without the need for sophisticated microscopy.

Key Study Components

Area of Science

  • Cell Biology
  • Fluorescence Microscopy
  • Protein Analysis

Background

  • Understanding cell signaling pathways is crucial in cell biology.
  • Light diffraction complicates the evaluation of membrane partitioning.
  • Fluorescent markers are used to visualize protein localization.
  • This method simplifies the analysis of protein distribution.

Purpose of Study

  • To provide a fast and efficient protocol for analyzing protein localization.
  • To enable real-time observation of protein distribution in cells.
  • To address challenges in quantifying membrane association of proteins.

Methods Used

  • Preparation of biological material as per the protocol.
  • Staining with FM 4-64 dye.
  • Computational decomposition of fluorescence signals.
  • Real-time observation of protein distribution.

Main Results

  • The method allows for effective quantification of membrane association.
  • Real-time observations provide insights into protein dynamics.
  • Challenges of light diffraction are addressed through computational methods.
  • The protocol is applicable to various biological materials.

Conclusions

  • This protocol offers a straightforward approach to study protein localization.
  • It enhances the understanding of cell signaling pathways.
  • The method is accessible and does not require advanced microscopy.

Frequently Asked Questions

What is the main advantage of this method?
The main advantage is that it does not require sophisticated microscopy and allows for real-time observation of protein distribution.
How does light diffraction affect the analysis?
Light diffraction can cause mixing of plasma membrane and cytoplasmic fluorescence, complicating the evaluation of membrane partitioning.
What dye is used for staining?
FM 4-64 dye is used for staining the biological material.
Can this method be applied to different biological materials?
Yes, the protocol is applicable to various biological materials.
What type of analysis does this protocol facilitate?
It facilitates quantitative analysis of plasma-membrane association of proteins.
Is this method suitable for real-time studies?
Yes, the method is designed for fast, real-time observation of protein distribution.

Tutaj prezentujemy protokół do przeprowadzenia analizy ilościowej poziomu asocjacji plazmato-błonowej dla fluorescencyjnie oznakowanego białka związanego obwodowo. Metoda opiera się na obliczeniowej dekompozycji błonowej i cytoplazmatycznej składowej sygnału obserwowanej w komórkach znakowanych markerem fluorescencyjnym błony plazmatycznej.

Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w biologii komórki, w tym rozwikłać szlaki sygnalizacji komórkowej. Główną zaletą tej techniki jest to, że nie wymaga ona żadnych wyrafinowanych, mikroskopijnych podejść. Jest również bardzo szybki, a zatem można go używać do obserwacji dystrybucji białek w komórkach w czasie rzeczywistym.

Ocena i kwantyfikacja partycjonowania błony białka związanego obwodowo jest skomplikowana ze względu na dyfrakcję światła, która powoduje mieszanie się błony plazmatycznej i fluorescencji cytoplazmatycznej pod mikroskopem. Procedurę tę należy rozpocząć od przygotowania materiału biologicznego zgodnie z opisem w protokole tekstowym. Przygotowany materiał należy zabarwić barwnikiem FM 4-64 stosując protokół barwienia odpowiedni dla badanego materiału.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Słowa kluczowe: partycjonowanie błony plazmatycznej białka związane obwodowo biologia komórki sygnalizacja komórkowa mikroskopia barwnik FM 4-64 obrazowanie konfokalne Fiji ImageJ projekt R analiza obrazu

Related Videos

Znakowanie metaboliczne i frakcjonowanie błonowe do porównawczej analizy proteomicznej hodowli zawiesinowych komórek Arabidopsis thaliana

11:44

Znakowanie metaboliczne i frakcjonowanie błonowe do porównawczej analizy proteomicznej hodowli zawiesinowych komórek Arabidopsis thaliana

Related Videos

14.8K Views

Określanie topologii białek błonowych za pomocą ochrony proteazy fluorescencyjnej (FPP)

08:14

Określanie topologii białek błonowych za pomocą ochrony proteazy fluorescencyjnej (FPP)

Related Videos

18.4K Views

Metoda wizualizacji i analizy białek oddziałujących z błoną za pomocą transmisyjnej mikroskopii elektronowej

10:49

Metoda wizualizacji i analizy białek oddziałujących z błoną za pomocą transmisyjnej mikroskopii elektronowej

Related Videos

14K Views

-on-a-chip: bezznacznikowe badanie interakcji białko-fosfoinozytyd

10:58

-on-a-chip: bezznacznikowe badanie interakcji białko-fosfoinozytyd

Related Videos

10K Views

Kawitacja azotu i wirowanie różnicowe pozwalają na monitorowanie dystrybucji białek błony obwodowej w hodowanych komórkach

08:24

Kawitacja azotu i wirowanie różnicowe pozwalają na monitorowanie dystrybucji białek błony obwodowej w hodowanych komórkach

Related Videos

17.2K Views

System natywnych nanocząstek błony komórkowej do analizy interakcji białko-białko błonowe

07:31

System natywnych nanocząstek błony komórkowej do analizy interakcji białko-białko błonowe

Related Videos

6.7K Views

Spektroskopia korelacji fluorescencji zmienności plamki do analizy dyfuzji molekularnej na błonie plazmatycznej żywych komórek

05:56

Spektroskopia korelacji fluorescencji zmienności plamki do analizy dyfuzji molekularnej na błonie plazmatycznej żywych komórek

Related Videos

3.3K Views

Wzbogacanie białek subkomórkowych w Leptospira przy użyciu metody frakcjonowania opartej na Triton X-114

04:25

Wzbogacanie białek subkomórkowych w Leptospira przy użyciu metody frakcjonowania opartej na Triton X-114

Related Videos

1.4K Views

Pomiar wskaźników endocytarności białek błony komórkowej za pomocą odwracalnej biotynylacji

11:32

Pomiar wskaźników endocytarności białek błony komórkowej za pomocą odwracalnej biotynylacji

Related Videos

17.6K Views

Krystalizacja białek błonowych do określania struktury przy użyciu mezofaz lipidowych

22:00

Krystalizacja białek błonowych do określania struktury przy użyciu mezofaz lipidowych

Related Videos

30.7K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code