-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Analiza rozmiaru, kształtu i kierunkowości sieci sprzężonych astrocytów
Analiza rozmiaru, kształtu i kierunkowości sieci sprzężonych astrocytów
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Analyzing the Size, Shape, and Directionality of Networks of Coupled Astrocytes

Analiza rozmiaru, kształtu i kierunkowości sieci sprzężonych astrocytów

Full Text
9,128 Views
10:10 min
October 4, 2018

DOI: 10.3791/58116-v

Steven Condamine1, Dorly Verdier1, Arlette Kolta1,2

1Groupe de Recherche sur le Système Nerveux Central, and Département de Neurosciences,Université de Montréal, 2Faculté de Médecine Dentaire,Université de Montréal

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Tutaj prezentujemy protokół do oceny organizacji sieci astrocytowych. Opisana metoda minimalizuje odchylenie, aby zapewnić opisowe pomiary tych sieci, takie jak liczba komórek, rozmiar, obszar i położenie w jądrze. Anizotropię ocenia się za pomocą analizy wektorowej.

Transcript

Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania dotyczące organizacji sieci astrocytarnych w strukturach mózgu. Główną zaletą tej techniki jest to, że proponuje bezstronną metodę liczenia komórek i dokumentowania ich anatomicznej organizacji w określonej strukturze. Otwórz ImageJFIJI, wybierz żądany plik i kliknij OK w oknie opcji importu bioformatu.

Aby ponownie zdefiniować stos Z, który będzie zawierał tylko wycinki optyczne potrzebne do końcowego stosu Z, najpierw wybierz projekt STK i Z, a następnie kliknij pokrętło stosu na pasku narzędzi. Wybierz maksymalną intensywność w ustawieniu typu projekcji. Zapisz plik i nadaj mu nazwę plik stosu.

Jeśli plik obrazowania zawiera kilka kanałów, użyj koloru obrazu i podziel kanały, aby wyświetlić tylko kanał z obrazem sieci astrocytów. Sprawdź ustawienia pikseli obrazu, wybierając obraz, właściwości, piksel, z jednym dla wymiaru piksela. Następnie użyj narzędzia do odejmowania tła, otwierając proces i odejmuj tło, aby usunąć etykietowanie biocytyny w tle.

Użyj funkcji podglądu, aby ustawić promień toczącej się kuli, który zwykle wynosi 50 pikseli. Jeśli wymagana jest dalsza redukcja szumów po odjęciu tła, wybierz opcję proces, szum i usuń wartości odstające. Wybierz opcję jasny w ustawieniu które wartości odstające, a następnie użyj funkcji podglądu, aby ustawić promień i próg.

Zachowaj ostrożność podczas korzystania z narzędzia do usuwania wartości odstających, ponieważ może ono spowodować rozmycie danych, jak pokazano tutaj. Dostosuj próg za pomocą obrazu, dostosuj, progu. Wybierz tryb domyślny oraz czarno-biały.

Kliknij Zastosuj. Przekonwertuj obraz na obraz binarny za pomocą narzędzia procesu binarnego, wybierając proces, binarny i utwórz binarny. Zapisz plik jako plik tiff i nazwij go plikiem binarnym.

Aby policzyć komórki, najpierw ustaw typ pomiaru, klikając przycisk Analizuj i ustaw pomiar. Następnie wybierz opcję środka ciężkości. Upewnij się, że plik binarny jest otwarty na ekranie.

Ponownie otwórz menu analizy i tym razem wybierz opcję analizuj cząstki. Następnie wybierz pozycję pokaż i kontury. Spowoduje to wygenerowanie nowego pliku, który pokazuje wynik wykrywania.

Zoptymalizuj parametry, aby uściślić wykrywanie. Aby wykryć tylko komórki, użyj wartości rozmiaru z zakresu od 30 do 6000 i okrągłości z zakresu od zera do jednego, gdzie jeden definiuje idealny okrąg, a zero losowy kształt. Uruchom wykrywanie, klikając przycisk OK. Zostaną wyświetlone dwie tabele, tabela zatytułowana podsumowanie, która zawiera liczbę wykrytych komórek, oraz tabela zatytułowana wyniki, która zawiera współrzędne X i Y każdej komórki.

Skopiuj wartości i wklej je do aplikacji arkusza kalkulacyjnego. Zapisz tę tabelę w tabeli wykrywania nazw. Pojawi się również plik z wykresem wykrytych komórek.

Zapisz ten plik jako plik TIFF w pliku wykrywania nazw. Jeśli grupa dwóch lub więcej oznaczonych komórek zostanie wykryta jako pojedyncza komórka za pomocą narzędzia Analizuj cząstki, użyj narzędzia zlewni na obrazie binarnym, wybierając proces , binarny i zlewnia przed zastosowaniem narzędzia do analizy cząstek. Aby zmierzyć powierzchnię sieci, użyj pliku wykrywania w ImageJ.

Kliknij lewym przyciskiem myszy, aby wybrać narzędzie do zaznaczania wielokątów na pasku narzędzi. Kliknij ponownie lewym przyciskiem myszy, aby rozpocząć śledzenie obszaru zainteresowania lub ROI, który łączy wszystkie komórki znajdujące się na zewnętrznych peryferiach sieci. Kliknij prawym przyciskiem myszy, aby zamknąć wielokąt.

Otwórz okno ustawiania pomiaru i wybierz opcję obszaru. Następnie otwórz menedżera ROI i dodaj śledzony wielokąt w menedżerze ROI, klikając dodaj. Uruchom pomiar, klikając przycisk miary w menedżerze zwrotu z inwestycji.

Pomiar powierzchni pojawi się w tabeli i będzie wyrażony w pikselach. Nie zapomnij przeliczyć tej wartości na współczynnik konwersji dla mikroskopu użytego do uzyskania wartości w mikrometrach kwadratowych. Otwórz plik stosu w ImageJFIJI i zidentyfikuj załataną komórkę z jej większą intensywnością etykietowania.

Następnie otwórz plik o nazwie detection table w aplikacji arkusza kalkulacyjnego i znajdź numer powiązany z załataną komórką oraz odpowiadające jej współrzędne. Jeśli nie możesz dokładnie określić załatanej komórki, użyj narzędzia wielokąta, aby otoczyć obszar, w którym złogi biocytyny są gęstsze, i odnieś się do tej pozycji jako do miejsca załatanej komórki. Użyj menedżera ROI, tak jak poprzednio, aby narysować ROI w lokalizacji poprawionej komórki i dodać go do menedżera ROI.

Następnie ustaw pomiar i wybierz opcję środka ciężkości. W menedżerze RIO kliknij środek, aby uzyskać współrzędne środka ciężkości śledzonego obszaru. Użyj tych współrzędnych jako punktu odniesienia dla tej konkretnej sieci.

Użyj tej formuły, aby obliczyć współrzędne każdej komórki w odniesieniu do astrocytu z łatką. Wyrażenie współrzędnych każdej komórki w odniesieniu do astrocytu z łatką jest ważnym krokiem do obliczenia wektora z łatanych astrocytów. Użyj tego wzoru, aby obliczyć współrzędne głównego wektora orientacji preferencyjnej.

Głównym wektorem preferencyjnej orientacji sieci jest suma wszystkich wcześniej obliczonych wektorów dla każdej komórki wchodzącej w skład sieci. Podziel długość głównego wektora przez liczbę komórek w sieci, minus jeden, aby wykluczyć załataną komórkę, aby znormalizować wartości i umożliwić porównania między sieciami. Aby określić położenie każdej sieci w jądrze zainteresowania, najpierw otwórz obraz four x za pomocą edytora obrazów wektorowych.

Pomnóż wymiary w oknie wymiarowania przez pięć, aby zwiększyć rozmiar obrazu z czterema x. W tym przypadku obraz był próbkowany z rozdzielczością 800 na 800 pikseli, a więc rozdzielczość próbkowania została zmieniona na 4000 na 4000 pikseli. Wyeksportuj plik w formacie tiff i nazwij go o zmienionym rozmiarze cztery x.

Wyrównaj lewy górny róg obrazu o zmienionym rozmiarze z czterema x do lewego dolnego rogu dokumentu programu Adobe Illustrator. Oprogramowanie udostępnia współrzędne z punktu odniesienia w lewym dolnym rogu. Otwórz obraz sieci 20 x.

Użyj pliku binarnego lub pliku wykrywania, ponieważ są one łatwiejsze do wyrównania. Następnie pobaw się narzędziem do krycia na pliku binarnym obrazu 20 x, aby wyrównać go z obrazem o zmienionym rozmiarze. Po zakończeniu wyrównywania wybierz i przytrzymaj narzędzie do pipetowania, aby pojawiło się narzędzie do mierzenia, a następnie wybierz je na lewym pasku narzędzi.

Użyj narzędzia do mierzenia, aby kliknąć lewy górny róg obrazu 20 x, aby uzyskać współrzędne punktu odniesienia 20 x na obrazie o zmienionym rozmiarze. Te 20 x współrzędnych referencyjnych jest przydatnych do wyrażania położenia każdej sieci na schematycznym rysunku jądra. Podsumowując dane, stosuje się normalizację jądra jako prostokąta.

Aby to zrobić, użyj narzędzia wielokąta, aby otoczyć jądro na obrazie o zmienionym rozmiarze four x. Następnie otwórz menedżera ROI i dodaj narysowany ROI. Użyj obrazu z przezroczystymi światłami, jeśli granice jądra nie są widoczne, w takim przypadku pamiętaj, aby najpierw zmienić jego rozmiar.

W polu Pomiar zestawu wybierz opcję prostokąta ograniczającego, aby obliczyć najmniejszy prostokąt w narysowanym jądrze. Na koniec kliknij przycisk zmierz, a następnie postępuj zgodnie z instrukcjami w pisemnym protokole, aby wyrazić współrzędne oznaczonych komórek w znormalizowanym jądrze reprezentowanym przez prostokąt ograniczający. Pojedynczy astrocyt w grzbietowej części głównego jądra czuciowego trójdzielnego, oznaczony przez SR101, został przeznaczony do rejestracji całej komórki i wypełniony 0,2% biocytyną.

Stymulacja elektryczna piątego przewodu zwiększyła znakowanie biocytyny w grzbietowej części głównego jądra czuciowego nerwu trójdzielnego, co oznacza wzrost liczby sprzężonych komórek. Sieci astrocytarne pozostają ograniczone w grzbietowej części głównego jądra czuciowego nerwu trójdzielnego i ich głównej orientacji. Technika ta została opracowana w celu pozycjonowania sieci astrocytarnych w określonej strukturze, ale może być używana do wyrażania pozycji populacji znakowanej komórki w dowolnej strukturze.

Explore More Videos

Słowa kluczowe: Sieci astrocytowe astrocyty FIDŻI ImageJ stos Z projekcja maksymalnej intensywności odejmowanie tła redukcja szumów obraz binarny zliczanie komórek analiza morfologiczna

Related Videos

Protokół trójwymiarowej konfokalnej analizy morfometrycznej astrocytów

09:13

Protokół trójwymiarowej konfokalnej analizy morfometrycznej astrocytów

Related Videos

9.1K Views

Test pośredniej kokultury neuron-astrocyty: zestaw in vitro do szczegółowego badania interakcji neuron-glej

11:08

Test pośredniej kokultury neuron-astrocyty: zestaw in vitro do szczegółowego badania interakcji neuron-glej

Related Videos

15.1K Views

Trójwymiarowe, wyrównane sieci astrocytów oparte na inżynierii tkankowej w celu podsumowania mechanizmów rozwojowych i ułatwienia regeneracji układu nerwowego

08:52

Trójwymiarowe, wyrównane sieci astrocytów oparte na inżynierii tkankowej w celu podsumowania mechanizmów rozwojowych i ułatwienia regeneracji układu nerwowego

Related Videos

14.6K Views

Hodowla mysich astrocytów podobnych do vivo przy użyciu szybkiego, prostego i niedrogiego protokołu AWESAM

07:56

Hodowla mysich astrocytów podobnych do vivo przy użyciu szybkiego, prostego i niedrogiego protokołu AWESAM

Related Videos

8.7K Views

Modelowanie mikroukładów synaptycznych z kokulturami 3D astrocytów i neuronów z ludzkich pluripotencjalnych komórek macierzystych

08:48

Modelowanie mikroukładów synaptycznych z kokulturami 3D astrocytów i neuronów z ludzkich pluripotencjalnych komórek macierzystych

Related Videos

12.5K Views

Metoda rekonstrukcji 3D i analizy w wirtualnej rzeczywistości komórek glejowych i neuronalnych

12:49

Metoda rekonstrukcji 3D i analizy w wirtualnej rzeczywistości komórek glejowych i neuronalnych

Related Videos

13.1K Views

Wizualizacja morfologii astrocytów za pomocą jonoforezy Lucyfera Yellow

07:38

Wizualizacja morfologii astrocytów za pomocą jonoforezy Lucyfera Yellow

Related Videos

13.1K Views

Wizualizacja i analiza transportu wewnątrzkomórkowego organelli i innych ładunków w astrocytach

07:19

Wizualizacja i analiza transportu wewnątrzkomórkowego organelli i innych ładunków w astrocytach

Related Videos

8.1K Views

Badanie interakcji przestrzennych między astrocytami a neuronami w oczyszczonych mózgach

05:17

Badanie interakcji przestrzennych między astrocytami a neuronami w oczyszczonych mózgach

Related Videos

2.7K Views

Analiza objętości terytorium astrocytów i kafelkowania w grubych, swobodnie pływających skrawkach tkanek

10:53

Analiza objętości terytorium astrocytów i kafelkowania w grubych, swobodnie pływających skrawkach tkanek

Related Videos

3.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code