-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Badanie interakcji przestrzennych między astrocytami a neuronami w oczyszczonych mózgach
Badanie interakcji przestrzennych między astrocytami a neuronami w oczyszczonych mózgach
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Investigation of Spatial Interaction Between Astrocytes and Neurons in Cleared Brains

Badanie interakcji przestrzennych między astrocytami a neuronami w oczyszczonych mózgach

Full Text
2,942 Views
05:17 min
March 31, 2022

DOI: 10.3791/63679-v

Ron Refaeli1, Inbal Goshen1

1Edmond and Lily Safra Center for Brain Sciences (ELSC),The Hebrew University of Jerusalem

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study utilizes the CLARITY method combined with viral vector transduction to explore the spatial relationships between neurons and astrocytes in the mouse hippocampus. By making tissue transparent, this technique allows researchers to investigate a larger number of cells, revealing insights into cellular organization and interactions.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Tissue clearing techniques
  • Cellular imaging

Background

  • The CLARITY technique enables the visualization of brain tissue at a cellular level.
  • It allows for the analysis of large populations of neurons and astrocytes in intact tissues.
  • This method enhances the clarity of thick brain slices compared to traditional imaging methods.
  • The study emphasizes the role of tissue transparency in understanding neuronal architecture.

Purpose of Study

  • To investigate the structural relationships between astrocytes and neurons in the mouse hippocampus.
  • To measure the distances between different cell types across various brain structures.
  • To demonstrate the effectiveness of the CLARITY method for cellular imaging.

Methods Used

  • The study used the CLARITY technique for tissue clearing in brain slices.
  • Mouse hippocampal tissue was utilized to visualize astrocytes and excitatory neurons.
  • No multiomics workflows were mentioned.
  • Key steps included degassing, polymerization of hydrogel, and incubation in clearing solutions.
  • Tissue was imaged using two-photon and confocal microscopy.

Main Results

  • Over 300 astrocytes were visualized in cleared hippocampal sections.
  • The spatial context of astrocytes and excitatory neurons was established, showing their proximity.
  • There were significant observations of axonal bundles between neuronal populations in cleared tissues.
  • Various factors affected the clarity of the tissues, highlighting the need for precise methodology.

Conclusions

  • This study demonstrates that the CLARITY method can significantly enhance the visualization of cellular relationships in the brain.
  • The findings enable better understanding of the spatial organization of neurons and glial cells.
  • Insights gained from this method may have implications for research in neuronal mechanisms and potential disease models.

Frequently Asked Questions

What advantages does the CLARITY method offer?
The CLARITY method allows for the visualization of thick brain slices at a single-cell resolution, facilitating the study of cellular architecture and interactions.
How is the mouse hippocampal model implemented?
Mouse hippocampal tissue is prepared by clearing and sectioning, allowing for extensive imaging of astrocytes and excitatory neurons.
What types of data are obtained from this method?
The method yields spatial data on the proximity of astrocytes and neurons, as well as structural data on axonal bundles.
How can the CLARITY method be adapted for other tissues?
While primarily used for brain tissue, the CLARITY protocol can be modified for use in various biological systems.
What are the critical steps in the CLARITY protocol?
Key steps include degassing, hydrogel polymerization, and incubation in clearing solutions, which must be performed precisely for optimal results.
Are there any limitations to the CLARITY technique?
The success of the CLARITY method depends heavily on temperature, solution concentrations, and precise timing during the protocol.

Połączenie transdukcji wektora wirusowego i oczyszczania mózgu za pomocą metody CLARITY pozwala na badanie dużej liczby neuronów i astrocytów jednocześnie.

Technika klarowności opisana po raz pierwszy w 2013 roku to technika oczyszczania tkanek, która umożliwia pobieranie próbek większych ilości komórek, naczyń krwionośnych, a więc nawet białek, takich jak rozdzielczość pojedynczej komórki w grubych wycinkach mózgu. Technika ta umożliwia badanie nienaruszonych mikroskopijnych struktur poprzez uczynienie całego mózgu przezroczystym. Ten protokół jest prostym chipem i prostym rurociągiem do czyszczenia tkanki.

Technika ta może być stosowana do oczyszczania tkanek w innych układach oprócz tkanek mózgowych. Aby rozpocząć, uszczelnij rurkę i nakrętkę za pomocą parafilmu i przebij dwa otwory w nasadce. Następnie przenieś gazowy azot ze zbiornika za pomocą elastycznej rurki o średnicy wewnętrznej pięciu milimetrów i igły o średnicy 19 podłączonej na jej końcu.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

interakcja przestrzenna astrocyty neurony technika oczyszczania tkanek przezroczystość mózgu struktury mikroskopowe roztwór hydrożelu roztwory oczyszczające polimeryzacja wycinki mózgu wymiana gazowa inkubacja roztwór dopasowujący współczynnik załamania światła techniki pobierania próbek

Related Videos

Analiza obrazowa interakcji neuron-glej w systemie kohodowli neuronów i gleju opartym na platformie hodowli mikroprzepływowej (MCP)

09:34

Analiza obrazowa interakcji neuron-glej w systemie kohodowli neuronów i gleju opartym na platformie hodowli mikroprzepływowej (MCP)

Related Videos

15.6K Views

Technika pośredniej kohodowli neuronów i astrocytów do badania interakcji neuron-glej

04:53

Technika pośredniej kohodowli neuronów i astrocytów do badania interakcji neuron-glej

Related Videos

1.2K Views

Mikroskopia dwufotonowa astrocytów i neuronów pobudzających w oczyszczonej tkance hipokampa myszy

02:19

Mikroskopia dwufotonowa astrocytów i neuronów pobudzających w oczyszczonej tkance hipokampa myszy

Related Videos

500 Views

Izolacja i hodowla astrocytów korowych myszy

11:25

Izolacja i hodowla astrocytów korowych myszy

Related Videos

94.8K Views

Test pośredniej kokultury neuron-astrocyty: zestaw in vitro do szczegółowego badania interakcji neuron-glej

11:08

Test pośredniej kokultury neuron-astrocyty: zestaw in vitro do szczegółowego badania interakcji neuron-glej

Related Videos

15.5K Views

Trójwymiarowe, wyrównane sieci astrocytów oparte na inżynierii tkankowej w celu podsumowania mechanizmów rozwojowych i ułatwienia regeneracji układu nerwowego

08:52

Trójwymiarowe, wyrównane sieci astrocytów oparte na inżynierii tkankowej w celu podsumowania mechanizmów rozwojowych i ułatwienia regeneracji układu nerwowego

Related Videos

15K Views

Analiza rozmiaru, kształtu i kierunkowości sieci sprzężonych astrocytów

10:10

Analiza rozmiaru, kształtu i kierunkowości sieci sprzężonych astrocytów

Related Videos

9.4K Views

Wizualizacja morfologii astrocytów za pomocą jonoforezy Lucyfera Yellow

07:38

Wizualizacja morfologii astrocytów za pomocą jonoforezy Lucyfera Yellow

Related Videos

13.5K Views

Wizualizacja i analiza transportu wewnątrzkomórkowego organelli i innych ładunków w astrocytach

07:19

Wizualizacja i analiza transportu wewnątrzkomórkowego organelli i innych ładunków w astrocytach

Related Videos

8.4K Views

Analiza objętości terytorium astrocytów i kafelkowania w grubych, swobodnie pływających skrawkach tkanek

10:53

Analiza objętości terytorium astrocytów i kafelkowania w grubych, swobodnie pływających skrawkach tkanek

Related Videos

4.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code