November 2nd, 2020
Ten artykuł przedstawia metody hodowli miocytów serca o różnych kształtach, które reprezentują różne patologie, oraz sortowania tych przylegających miocytów serca na podstawie ich morfologii na poziomie pojedynczej komórki. Proponowana platforma zapewnia nowatorskie podejście do wysokoprzepustowych badań przesiewowych i badań przesiewowych leków w kierunku różnych rodzajów niewydolności serca.
Proponujemy nowatorską platformę do badania wpływu kształtu komórki na ekspresję genów, wykorzystując metody hodowli i sortowania adherencji o różnych morfologiach na poziomie pojedynczej komórki. Główną zaletą tej techniki jest to, że ułatwia ona wysokoprzepustowe badanie kształtu komórki in vitro, ponieważ porównywanie komórek o różnych kształtach in vivo jest technicznie wymagające. Aby skonfigurować wzorzystą hodowlę kardiomiocytów, przenieś zawiesinę kardiomiocytów o interesującym współczynniku proporcji do 15-mililitrowej probówki do liczenia i rozcieńcz komórki do 1 razy 10 do pięciu komórek na mililitr o odpowiednim stężeniu podłoża galwanicznego.
Dodaj dwa mililitry komórek na mikrowzorzysty chip pokryty fibronektyną zanurzony w dwóch mililitrach ciepłego podłoża galwanicznego wewnątrz 35-mililitrowej szalki Greniera Petriego i umieść naczynie w inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% dwutlenku węgla na 18 godzin. Następnego dnia sprawdź chip za pomocą mikroskopii świetlnej, aby potwierdzić, że większość komórek jest przyczepiona. Wyjmij pożywkę z naczynia, aby usunąć wszelkie zanieczyszczenia i/lub martwe komórki, a zaczynając od środka i przesuwając się w kierunku boków w sposób kropli, delikatnie dodaj PBS do komórek.
Po trzecim płukaniu zastąp PBS czteromililitrową pożywką konserwacyjną i włóż komórki z powrotem do inkubatora do hodowli komórkowych. Po 72 godzinach delikatnie przepłucz powierzchnię frytki dwa razy dwoma mililitrami ciepłego PBS Dulbecco na mycie, jak pokazano, i użyj kleszczy, aby natychmiast przenieść umyty wiór na nową sterylną 35-mililitrową szalkę Petriego Greniera. Szybko dodaj do chipa 1,5 mikrolitra żywej dwukolorowej zieleni rozcieńczonej 1000 razy w DPBS.
Zamocuj komorę na chipie i umieść naczynie na uchwycie naczynia stopnia pobierania komórek. Włóż nasadkę magnetyczną i znajdź celownik w oknie podglądu na żywo. Skoncentruj się na celowniku, a następnie w oknie skanowania i sortowania wybierz kalibrację automatycznego wstrzykiwania i skalibruj.
Zastąp supernatant naczynia 1,5 mililitra roztworu potrójnego E w proporcji jeden do jednego, aby rozluźnić komórki z fibronektyny i otwórz zakładkę skanowania. Aby zeskanować cały chip, skup się na lewym górnym rogu chipa w polu view i kliknij pobierz aktualną pozycję mikroskopu. Następnie skoncentruj się na prawym dolnym rogu chipa i kliknij pobierz aktualną pozycję mikroskopu.
W wyskakującym okienku kliknij ustaw najostrzejszą płaszczyznę i kliknij przejdź do prawego górnego rogu i przejdź do przycisków w lewym dolnym rogu. Następnie kliknij przycisk Zakończ, aby rozpocząć skanowanie. Po zakończeniu skanowania otwórz kartę analizy i kliknij przycisk pokaż mapę, aby wybrać pojedyncze komórki, które spełniają kryteria badania.
Wyśrodkuj szklaną mikrokapilę na środku mikroskopu podgląd na żywo i otwórz klapkę pompy. Aby wytworzyć podciśnienie, wycofaj tłok z 50-mililitrowej strzykawki numer jeden, cztery mililitry i otwórz kartę sortowania. Aby umożliwić wybranie pojedynczej komórki, ustaw zawór drugi tak, aby był otwarty na 120 milisekund, a zawór pierwszy na 20 milisekund po upływie 200 milisekund.
Aby umożliwić pomyślne dostarczenie pobranej komórki do probówki PCR zawierającej bufor do lizy, należy ustawić zawór pierwszy na otwarcie na 20 milisekund i zawór drugi na 10 milisekund po upływie 10 milisekund. Po dostosowaniu ustawień zaworu kliknij przycisk Oblicz ścieżkę. Oprogramowanie obliczy najszybszą ścieżkę od komórki do komórki w celu pobrania i wstrzyknięcia wybranych komórek w całym chipie.
Następnie skoncentruj mikroskop na wzorze na powierzchni wióra. Za pomocą joysticka ostrożnie przesuń mikrokapilę w dół, aby uzyskać najostrzejszy obraz końcówki mikrokapilary bez dotykania powierzchni chipa i kliknij ustawione. Otworzy się nowe okno, pokazujące przekrój mikrokapilarny.
Aby oprogramowanie zarejestrowało przesunięcie końcówki kapilary we współrzędnych X, Y i Z, kliknij dokładny środek kapilary. Następnie kliknij przycisk Rozpocznij sortowanie, aby rozpocząć sortowanie. W tej reprezentatywnej analizie wstępnie amplifikowanego cDNA z pobranej pojedynczej komórki zaobserwowano wyraźne prążki na wykresie densytometrii żelowej odpowiadającej pikowi przy 1 852 parach zasad w elektroferogramie.
Średnia wielkość fragmentów wynosiła 1 588 par zasad z niewielką liczbą fragmentów, które były krótsze niż 300 par zasad, co wskazuje na generowanie dobrej biblioteki cDNA. Można również przeprowadzić barwienie i analizę immunofluorescencyjną w celu oceny struktury sarkomeru w obrębie wzorzystych kardiomiocytów. Platforma ta toruje drogę do wysokoprzepustowych badań i badań przesiewowych leków w różnych typach niewydolności serca.
To badanie wprowadza nową platformę do hodowli i sortowania kardiomiocytów na podstawie ich morfologii na poziomie pojedynczych komórek. Ta metoda umożliwia wysokowydajne przesiewanie leków dla różnych rodzajów niewydolności serca.
This platform enables systematic investigation of how cardiac myocyte morphology influences gene expression, addressing a critical gap in understanding shape-dependent transcriptomic regulation in heart failure. By linking defined geometrical morphotypes to pathological phenotypes such as hypertrophic and dilated cardiomyopathy, it provides a mechanistic bridge between cellular structure and disease-relevant signaling. The approach supports early-stage target validation and phenotypic screening by generating reproducible, morphology-stratified single-cell transcriptomic data for de-risking therapeutic hypotheses.
The method integrates into the discovery continuum by enabling hypothesis-driven analysis of cell shape effects prior to lead identification, with outputs informing preclinical model selection and mechanistic de-risking strategies.