RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/62311-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
This protocol outlines a method known as the quadruple checkerboard to study all possible combinations of four drugs in a single experiment. It primarily aims to address treatments for multi-drug resistant microorganisms while utilizing a 96-well plate micro dilution assay for effective evaluation.
Ten protokół opisuje, jak badać wszystkie możliwe kombinacje, które można uzyskać między czterema lekami w jednym eksperymencie. Metoda ta opiera się na standardowym teście mikrorozcieńczania na 96-dołkowej płytce i obliczeniu frakcyjnych stężeń hamujących (FIC) w celu oceny wyników.
Poczwórna szachownica to technika, która bada wszystkie możliwe kombinacje, które można uzyskać, łącząc cztery leki, i ważne jest, aby znaleźć leczenie dla opornych mikroorganizmów, głównie MDR lub znanych również jako mikroorganizmy wielolekooporne. Technika ta nie jest pracochłonna, a wyniki można uzyskać następnego dnia lub po zakończeniu okresu inkubacji. Oprócz tego może badać wszystkie możliwe kombinacje, a nie tylko specyficzne i bardzo ograniczone kombinacje, które można uzyskać, łącząc te cztery leki i wszystko, wszystko w jednym eksperymencie.
Oprócz tego technika ta może być stosowana w wielu dyscyplinach i to nie tylko w mikrobiologii, a nawet w mikrobiologii. Może badać wszystkie możliwe kombinacje różnych środków przeciwdrobnoustrojowych, a nie tylko środków przeciwbakteryjnych. Oprócz części mikrobiologicznej może być stosowany w celu badania kombinacji między lekami przeciwnowotworowymi, między ekstraktami roślinnymi a lekami, a nawet między panelami skutecznych molekularnych terapii molekularnych.
Miejsce przygotowania 4 96, płytki dołkowe obok siebie, aby uformować kwadrat za pomocą taśmy, sklej ich dno razem. Powtórz ten krok, aby uzyskać cztery panele, z których każdy zawiera cztery płytki i nazwij je jedynką, dwójką, trójką i czwórką. Dodaj 50 mikrolitrów Muellera.
Wskazówka i bulion do studzienek między kolumną drugą a kolumną 11 w 1696 r., płytki studzienne czterech paneli dodają 200 mikrolitrów bulionu Muellera Hintona do studzienki H 12, służąc jako kontrola ujemna. Otóż w 1696 r. płytki studzienkowe z czterech paneli dodać jeden 50-mikrolitrowy bulion Muellera Hintona do studzienek A jeden i jeden H, służący jako studzienki kontroli pozytywnej w 1696 r. płytki studzienkowe czterech paneli, lek jeden cefotaksym seryjne rozcieńczanie do stożkowej probówki o pojemności 15 ml. Sterylna woda destylowana.
Obliczyć objętość, która ma zostać usunięta z roztworu podstawowego leku, postępując zgodnie ze wzorem C, jeden V jeden równa się C, dwa, V, dwa. Pobrać obliczoną objętość z 15 ml sterylnej wody destylowanej i dodać taką samą objętość roztworu podstawowego leku Do stożkowej probówki pipetować 50 mikrolitrów przygotowanego roztworu leku do każdej studzienki w kolumnie 11 i kolumnie 12, z wyjątkiem studzienki H 12, rozpocząć seryjne rozcieńczanie, usuwając 50 mikrolitrów z kolumny 11 i umieszczając je w odpowiednich studzienkach w kolumnie 10, a następnie od 10 do osiągnięcia kolumny drugiej, gdzie 50 mikrolitrów pobranych z kolumny drugiej zostanie odrzuconych. Powtórzyć seryjne rozcieńczanie dla każdej z 1696 płytek dołkowych z czterech paneli.
Lek dwa seryjne rozcieńczenie amiki do stożkowej probówki o pojemności 10 ml. Sterylna woda destylowana. Obliczyć objętość, która ma zostać usunięta z roztworu podstawowego leku.
Usunąć obliczoną objętość z 10 ml sterylnej wody destylowanej i dodać taką samą objętość roztworu podstawowego leku do stożkowej probówki. Weź oddzielną 96-dołkową płytkę, dodaj sto mikrolitrów sterylnego bulionu Muellera Hintona do studzienek między różą G a B.In tej płytki, dodaj sto mikrolitrów wcześniej przygotowanego leku. Dwa, roztwór do studzienek rzędu G. Rozcieńczyć szeregowo Od rzędu G do rzędu B, pobierając sto mikrolitrów z każdej studzienki w RO G. I na koniec wyrzucając sto mikrolitrów z dołków rzędu B. Powtórz te kroki, aby przygotować osiem oddzielnych 96-dołkowych płytek, przenieść lek dwa do czterech paneli, pipetować 50 mikrolitrów leku dwa z dołków między rzędami G i B do Odpowiednie studzienki w każdej płytce w czterech panelach, jedna przygotowana 96-dołkowa płytka zawiera sto mikrolitrów drugiego narkotyku.
To wystarczy na dwie płytki w jednym panelu leku. Trzy żywe schaby oprócz czterech różnych stożkowych probówek o objętości 14 ml sterylnej wody destylowanej. Obliczyć objętość, która ma zostać usunięta z roztworu podstawowego leku.
Pobrać obliczoną objętość z 14 ml sterylnej wody destylowanej z każdej probówki i dodać odpowiednią objętość leku. Po przygotowaniu wymaganych stężeń trzeciego leku weź 50 mikrolitrów i dodaj go do odpowiednich studzienek między rzędami B i G oraz kolumnami drugim i 12 na odpowiedniej płytce. W każdym panelu, gdzie C, jedna odpowiada czterem P, jedna tabliczka i cztery panele, C, dwie odpowiadają czterem P, dwie płytki i cztery panele, C3 odpowiadają czterem P, trzy płytki i cztery panele, a C, cztery odpowiadają czterem P, cztery płytki i cztery panele, narkotyk: cztery trimetoprim, sulfametoksazol, dodać do stożkowej probówki, dodać 14 ml.
Dąż do wody destylowanej. Obliczyć objętość, która ma zostać usunięta z roztworu podstawowego leku. Usunąć obliczoną objętość z 14 ml sterylnej wody destylowanej z każdej probówki i dodać wymaganą objętość leku.
Po przygotowaniu wymaganych stężeń czwartego leku weź 50 mikrolitrów i dodaj go do odpowiednich studzienek między rzędami B i G oraz kolumnami drugą i 12. W czterech tabliczkach w odpowiednim panelu, gdzie C jeden odpowiada panelowi pierwszemu, C dwa odpowiada panelowi drugiemu, C3, odpowiada panelowi trzeciemu, a C cztery odpowiada panelowi czwartemu. Przygotowanie i dodanie inokulum bakteryjnego jest równe I-E-S-B-L za pomocą sterylnego transferu pętlowego.
Jedna kolonia izolatu bakteryjnego równa się uprzednio wyhodowanej na płytce na dwa ml sterylnego bulionu Muellera Hintona i wiru Sprawdź zmętnienie tam, gdzie powinno wynosić 0,5 McFarlanda za pomocą gęstości dodaj sterylny bulion Mueller Hinton TML do sterylnego kubka na mocz dodać inokulum bakteryjne z 0,5 inokulum McFarlanda do kubka na mocz według wzoru C jeden V jeden równa się C dwa V dwa, gdzie V jeden równa się 800 mikrolitrów pipeta rurowa 50 mikrolitrów roztworu inokulum i do każdej studzienki z wyjątkiem H 12, która jest kontrolą sterylności, dobrze inkubować panele w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez noc. Ten rysunek przedstawia pierwszy panel A. Kolorowe zagłębienia to studzienki, w których występują bakterie, a czarne strzałki reprezentują dołki na wzroście.
Brak interfejsu wzrostu na płytce pierwszej, drugiej i trzeciej. Widzimy, że w rzędzie D występuje zahamowanie zawierające jeden na ponad osiem MIC amikacyny, oprócz kilku sub mików cefotaksymu i lewofloksacyny, a także jeden ponad osiem MIC trimetoprimu sulfametoksazolu na tablicy czwartej. Zauważyliśmy, że w kwadrancie zawierającym kombinację nie obserwuje się wzrostu bakterii.
Dzieje się tak, ponieważ w tej płytce mamy MIC lewofloksacyny, która całkowicie hamuje wzrost. Rysunek pierwszy B przedstawia panel drugi. W tym panelu widzimy, że hamowanie wzrostu bakterii obserwuje się również w RD, który zawiera sub iki cefotaksymu i lewofloksacyny oprócz jednego ponad ośmiu MIC amikacyny i jednego ponad czterech MIC trimetoprimu sulfametoksazolu figura 1 C reprezentuje panel A trzy.
Na tym rysunku widzimy, że zahamowanie wzrostu bakterii jest widoczne w rzędzie C i rzędzie D zawierającym kilka sub mików cefotaksymu i lewofloksacyny oraz dodatek do połowy MIC trimetoprimu sulfametoksazolu i jeden ponad cztery MIC amikacyny w rzędzie C i jeden ponad dwa MIC amikacyny w wierszu D rysunek 1D reprezentuje panel A czwarty. W tym panelu mamy jeden MIC trimetoprimu sulfametoksazolu w połączeniu z kilkoma stężeniami cefotaksymu, amikacyny i lewofloksacyny. Na tym rysunku widzimy, że wzrost bakterii jest całkowicie zahamowany w kwadrancie zawierającym kombinację, gdzie to hamowanie jest efektem jednego MIC trimetoprimu sulfametoksazolu w arkuszu FIC, wszystko w pliku Excel.
Tabela pokaże końcowy FIC dźwięku, wraz z interpretacją uzyskanej wartości. Podsumowując, technika szachownicy Q bada wszystkie możliwe kombinacje między czterema lekami w jednym eksperymencie. Wyniki są uzyskiwane następnego dnia i są interpretowane w łatwy i szybki sposób za pomocą szablonu Excel.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
15:41
Related Videos
17.9K Views
10:07
Related Videos
15.5K Views
08:38
Related Videos
13.8K Views
09:09
Related Videos
8.3K Views
07:51
Related Videos
12.5K Views
12:08
Related Videos
19.4K Views
12:03
Related Videos
27.5K Views
12:41
Related Videos
5.6K Views
12:39
Related Videos
12K Views
09:37
Related Videos
12.2K Views