Name: Zastosowanie optycznej koherentnej tomografii do mysiego modelu retinopatii (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-01-12T14:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 22 s
Description: Poznaj technikę optycznej koherentnej tomografii do nieinwazyjnego obrazowania siatkówki w mysim modelu retinopatii. Metoda umożliwia ilościowe pomiary grubości siatkówki i identyfikację zmian chorobowych w czasie rzeczywistym.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Źródło projektu: Fundacja Nauk Przyrodniczych Prowincji Guangdong (2018A0303130306). Autorzy pragną podziękować Laboratorium Badań Okulistycznych, Joint Shantou International Eye Center Uniwersytetu Shantou oraz Chińskiemu Uniwersytetowi w Hongkongu za fundusze i materiały.

Operacje zostały przeprowadzone zgodnie z Oświadczeniem o wykorzystaniu zwierząt w badaniach okulistycznych i wzrokowych od Stowarzyszenia Badań nad Wzrokiem i Okulistyką. Projekt eksperymentalny został zatwierdzony przez instytucjonalną Komisję Etyki Zwierząt (Komisja Etyki Medycznej JSIEC, EC 20171213(4)-P01). W badaniu wykorzystano dwumiesięczne myszy C57BL/6J i myszy z nokautem Vldlr. W każdej grupie było 7 myszy, z których wszystkie były samicami i ważyły od 20 g do 24 g.
1. Warunki eksperymentalne
<ol>
	<li>Przypisz myszy do dwóch grup: grupy eksperymentalnej składającej się z myszy z nokautem Vldlr i grupy kontrolnej składającej się z myszy C57BL / 6J.</li>
	<li>Karm myszy jedzeniem i wodą konwencjonalnie.</li>
	<li>Hoduj myszy w laboratorium zwierzęcym w stabilnych warunkach temperatury pokojowej (22 °C), wilgotności (50-60%), cyklu jasne-ciemnego (12 h-12 h) i natężenia światła w pomieszczeniu (350-400 luksów).</li>
	<li>Przygotowanie sprzętu doświadczalnego: optycznej koherentnej tomografii z konfokalnym skaningowym laserowym oftalmoskopem (cSLO) dla małych zwierząt (<silna klasa="xfig">Rysunek 1A).</li>
	<li>Przygotuj wszystkie materiały potrzebne do eksperymentu (<silna klasa="xfig">Rysunek 1B) i zważ myszy (<silna klasa="xfig">Rysunek 1C).</li>
</ol>
2. Rekordy informacyjne
<ol>
	<li>Zapisz informacje: grupę, kod, datę urodzenia, wiek, płeć, wagę i dawkę środka znieczulającego.</li>
</ol>
3. Uruchamianie i testowanie instrumentu
<ol>
	<li>Włącz komputer i uruchom oprogramowanie.</li>
	<li>Kliknij przycisk Testuj program, aby zakończyć program testowy.</li>
	<li>Włącz termostat i podgrzej go do temperatury 37 °C.</li>
	<li>Rozpocznij procedurę modułu OCT po przetestowaniu programu.</li>
	<li>Utwórz nowy temat i uzupełnij informacje o myszy.</li>
	<li>Rozgrzej koc elektryczny i przykryj go ręcznikami chirurgicznymi.</li>
</ol>
4. Znieczulenie
<ol>
	<li>Do przygotowania mieszaniny znieczulającego należy użyć liofilizowanego proszku znieczulającego zawierającego Tiletaminę i Zolazepam. 
	UWAGA: Postępuj zgodnie z zaleceniami lokalnej komisji etyki zwierząt dotyczącymi wyboru, dawki i drogi podawania znieczulenia. Znieczulij zwierzę środkiem znieczulającym, który zapewni unieruchomienie i utratę percepcji bólu przez co najmniej 1 godzinę, po czym zwierzę szybko wraca do zdrowia. Dawkowanie powinno być oparte na długości czasu eksperymentu, wadze zwierzęcia i innych czynnikach.</li>
	<li>Znieczulić zwierzę przygotowaną mieszanką znieczulającą. Upewnij się, że zwierzę jest w cieple podczas całej procedury, aż do wyzdrowienia.</li>
</ol>
5. Stosowanie kropli rozszerzających rozszerzenie
<ol>
	<li>Osiągnij ręczne unieruchomienie myszy za kark, spraw, aby gałka oczna lekko wystawała i obróć głowę myszy tak, aby jedno oko było skierowane do góry.</li>
	<li>Zastosuj krople rozszerzające źrenice, aby rozszerzyć źrenice (<silna klasa="xfig">Rysunek 2A).</li>
	<li>Sprawdź, czy źrenica nie jest rozszerzona po 10 minutach.</li>
</ol>
6. Umiejscowienie myszy
<ol>
	<li>Umieść mysz na platformie z kocem elektrycznym</li>.
	<li>Pokryj oba oczy medycznym żelem hialuronianu sodu (<klasa silna = "xfig">Rysunek 2B).</li>
	<li>Przykręć podwójną soczewkę sferyczną 60 D (wstępnie ustawioną soczewkę) do urządzenia cSLO (<silna klasa="xfig">Rysunek 1A-5, 6).</li>
	<li>Umieść soczewkę kontaktową 100 D na rogówce myszy tak, aby wklęsła strona dotykała żelu hialuronianu sodu na powierzchni rogówki (<silna klasa = "xfig" >Rysunek 2C, D i <klasa silna = "xfig">Rysunek 3A-II).</li>
	<li>Umieść mysz na małej platformie dla zwierząt o stałej temperaturze i trzymaj oko w odległości 1-2 mm od soczewki urządzenia cSLO (<silna klasa="xfig">Rysunek 3A).</li>
	<li>Wyreguluj kąt soczewki kontaktowej za pomocą kleszczyków, aby źrenica znajdowała się pośrodku soczewki.</li>
	<li>Dostosuj regulacje głowy, aby oko było skierowane prosto przed siebie.</li>
</ol>
7. Konfokalny skaningowy laserowy oftalmoskop (cSLO)
<ol>
	<li>Kliknij przycisk OCT, wybierz moduł myszy i uruchom program cSLO (Rysunek 4B).</li>
	<li>Wybierz tryb IR (źródło światła: czerwone światło) i dostosuj parametr (zakres: 2047, <silna klasa="xfig">Rysunek 4D).</li>
	<li>Wybierz oko do zbadania (prawe oko: <silna klasa="xfig">Rysunek 4C-1; lewe oko: <silna klasa="xfig">Ryc. 4C-2).</li>
	<li>Steruj dźwignią i powoli przesuwaj ustawioną soczewkę w kierunku soczewki kontaktowej.</li>
	<li>Dostosuj wartość dioptrii, aż obrazowanie tylnego bieguna będzie wyraźne (<silna klasa="xfig">Rysunek 4E).</li>
	<li>Dokonaj dalszych korekt, aby wyrównać obraz tylnego bieguna siatkówki, centrując go na głowie nerwu wzrokowego.</li>
</ol>
8. Optyczna koherentna tomografia (OCT)
<ol>
	<li>Uruchom program OCT (<silna klasa="xfig">Rysunek 4G).</li>
	<li>Klikaj pasek postępu w górę i w dół, aż pojawi się obraz OCT (<silna klasa = "xfig" >Rysunek 4H).</li>
	<li>Dostosuj parametry: Zakres Min (<silna klasa = "xfig" >Rysunek 4I) = 0-20, Maksymalny zakres (<silna klasa = "xfig" >Rysunek 4J) = 40-60.</li>
	<li>Dostosuj wstępnie ustawioną odległość obiektywu i kierunek położenia, aż do uzyskania idealnego obrazu OCT.</li>
	<li>Wybierz pozycję skanowania, przesuwając standardową linię w cSLO (<silna klasa="xfig">Rysunek 4M).</li>
	<li>Rozpocznij skanowanie od głowy nerwu wzrokowego.</li>
	<li>Zbierz obrazy w tej samej kolejności dla każdego oka: linia pozioma: głowa nerwu wzrokowego → górna → dolna; linia pionowa: głowa nerwu wzrokowego → nosowa → skroniowa.</li>
	<li>Zbieraj obrazy z czterech kierunków.</li>
	<li>Kliknij Średnia, aby nałożyć sygnały obrazu cSLO i OCT (Rysunek 4F i <silna klasa="xfig">Rysunek 4O).</li>
	<li>Kliknij przycisk strzału, aby uzyskać obraz SLO-OCT (<silna klasa="xfig">Rysunek 4P).</li>
	<li>Zapisz i wyeksportuj wszystkie obrazy (<silna klasa="xfig">Rysunek 4Q, R).</li>
</ol>
9. Zakończenie eksperymentu (po badaniu OCT)
<ol>
	<li>Umieść mysz na kocu elektrycznym, aby utrzymać ją w cieple, dopóki się nie obudzi. 
	UWAGA: Mysz powinna być monitorowana, dopóki nie odzyska wystarczającej przytomności, aby utrzymać pozycję leżącą mostka. Pooperacyjna ekspozycja na jasne światło powinna być zminimalizowana.</li>
	<li>Wyjąć soczewkę kontaktową 100 D.</li>
	<li>Nałożyć żel pod oczy z lewofloksacyną, aby chronić rogówkę.</li>
	<li>Umieść mysz z powrotem w klatce po przebudzeniu. 
	UWAGA: Upewnij się, że badana mysz nie zostanie zwrócona do towarzystwa innych myszy, dopóki w pełni nie wyzdrowieje.</li>
	<li>Wyłącz oprogramowanie i wyłącz komputer.</li>
	<li>Wyczyść soczewkę kontaktową 100 D wodą, a następnie osusz soczewkę.</li>
	<li>Oczyść i zdezynfekuj środowisko.</li>
</ol>
10. Analiza obrazu
<ol>
	<li>Porównaj obrazy OCT myszy z nokautem Vldlr z obrazami myszy C57BL / 6J.</li>
	<li>Obserwuj wiele pozycji: skany pionowe i poziome przechodzące przez brodawkę wzrokową; skany górne, dolne, nosowe i skroniowe oraz nieprawidłowe skany miejsca odbicia.</li>
	<li>Obserwuj grubość, kształt, warstwy i nieprawidłowe zmiany odbicia siatkówki na każdym obrazie, a także interfejs ciała szklistego siatkówki i ciała szklistego.</li>
	<li>Zapisz lokalizacje, cechy i liczbę zmian chorobowych.</li>
</ol>
11. Korekta stratyfikacji siatkówki
<ol>
	<li>Kliknij Load Examination (Badanie obciążenia) na interfejsie OCT (<silna klasa="xfig">Rysunek 5A).</li>
	<li>Wywołaj obrazy OCT myszy z wyskakującego okienka.</li>
	<li>Wybierz obrazy: Skanowanie obrazu OCT przez brodawkę wzrokową, poziomo lub pionowo.</li>
	<li>Kliknij dwukrotnie obraz w kontenerze multimediów, aby wyświetlić go na ekranie (Rysunek 5C).</li>
	<li>Kliknij Wykrywanie warstw, aby zakończyć automatyczne nakładanie warstw na siatkówkę (<silna klasa="xfig">Rysunek 5D).</li>
	<li>Zaznacz linie podziału po obu stronach warstwy przygotowanej do analizy (Rysunek 6D-10).</li>
	<li>Wybierz oddzielną linię podziału (<silna klasa="xfig">Rysunek 6B-6) i kliknij Edytuj warstwę (<silna klasa="xfig">Rysunek 6A-1), aby aktywować linię, gdy pojawi się czerwone kółko (<silna klasa="xfig">Rysunek 6B-7).</li>
	<li>Dostosuj odstępy (<silna klasa="xfig">Rysunek 6A-4, np. 50) i zakres graniczny (<silna klasa="xfig">Rysunek 6A-5, np. 50).</li>
	<li>Zmodyfikuj linię podziału, przesuwając czerwone kółko (porównaj zieloną linię podziału w <silna klasa="xfig">Rysunek 6B i <silna klasa="xfig">Rysunek 6C; Rysunek 6C pokazuje zmodyfikowany wynik).</li>
</ol>
12. Grubość laminacji siatkówki
<ol>
	<li>Kliknij przycisk Measure Marker (Znacznik miary) (<silna klasa="xfig">Rysunek 6D-9).</li>
	Wybierz linię podziału warstwy, która ma być analizowana (np. w zewnętrznej warstwie jądrowej wybierz 4. i 5. linię podziału z listy), aby wyświetlić granicę warstwy na obrazie OCT (<silna klasa="xfig">Rysunek 6D-10).<li></li>
	<li>Wybierz opcję Połącz z warstwą (<silna klasa="xfig">Rysunek 6D-11) i Pozostań w kontakcie w ruchu (<silna klasa="xfig">Rysunek 6D-12).</li>
	<li>Wybierz obszar, aby wyświetlić wyniki (wybrana kolumna jest pokolorowana <silna klasa="xfig">Rysunek 6D-13).</li>
	<li>Kliknij pozycję do analizy na obrazie OCT, aby pojawiła się linia pomiarowa (prostopadła do osi poziomej i zgodna z kolorem wynikowego obszaru) (<silna klasa="xfig">Rysunek 6D-14).</li>
	<li>Kliknij na następną kolumnę, aby wykonać następny pomiar i wyświetlić poprzednie dane (<silna klasa="xfig">Rysunek 6E-15).</li>
	<li>Odczytaj wartość Vert (grubość mierzonej pozycji) w wierszu Długość w μm (tkanka) (<silna klasa = "xfig" >Rysunek 6E, czerwony prostokąt).</li>
	<li>Kliknij Usuń znacznik (<silna klasa = "xfig" > Rysunek 6E-16) i Nowy znacznik (<silna klasa = "xfig" > Rysunek 6E-17), aby ponownie przetestować, aby wyniki obejmowały oryginalne dane (jeśli konieczny jest ponowny pomiar).</li>
	<li>Naciśnij Print Scr na klawiaturze, aby zapisać zrzuty ekranu, lub kliknij Zapisz badanie, aby zapisać bezpośrednio (Rysunek 5H).</li>
	<li>Wprowadź dane do arkusza kalkulacyjnego lub oprogramowania statystycznego w celu analizy statystycznej.</li>
</ol>
13. Pomiar pełnej grubości siatkówki
<ol>
	<li>Wybierz linię 1 (ILM, wewnętrzna membrana ograniczająca, <silna klasa = "xfig" >Rysunek 7B) i linię 7 (OS-RPE, OS: zewnętrzne segmenty fotoreceptorów; RPE: warstwa nabłonka barwnika siatkówki, <silna klasa="xfig">Rysunek 7C) na liście w prawym górnym rogu. 
	UWAGA: Pełna grubość siatkówki oznacza grubość warstwy neurepithelu siatkówki, która jest siatkówką między ILM a OS-RPE w OCT).</li>
	<li>Zmierz grubość siatkówki po obu stronach brodawki wzrokowej w określonych odstępach czasu.
	<ol>
		<li>Na przykład: od wyglądu struktury siatkówki na krawędzi brodawki wzrokowej zmierz 4 wartości w odstępach 200 μm linijki poziomej (<silna klasa = "xfig" >Rysunek 7G, H).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Zapisz wszystkie zmierzone wartości w arkuszu kalkulacyjnym.</li>
	<li>Użyj wielu testów t (po jednym na wiersz), aby porównać zmierzone wartości dla każdej odpowiedniej pozycji w obu grupach.</li>
</ol>

<ol><li>Frombach, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serine+protease-mediated+cutaneous+inflammation%3A+characterization+of+an+ex+vivo+skin+model+for+the+assessment+of+dexamethasone-loaded+core+multishell-nanocarriers%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmaceutics%22%5BJournal%5D)">Serine protease-mediated cutaneous inflammation: characterization of an ex vivo skin model for the assessment of dexamethasone-loaded core multishell-nanocarriers.</a> Pharmaceutics. 12 (9), 862(2020).</li>
<li>Osiac, E., Săftoiu, A., Gheonea, D. I., Mandrila, I., Angelescu, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+coherence+tomography+and+Doppler+optical+coherence+tomography+in+the+gastrointestinal+tract%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">Optical coherence tomography and Doppler optical coherence tomography in the gastrointestinal tract.</a> Journal of Gastroenterology. 17 (1), 15-20 (2011).</li>
<li>Xiong, Y. Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diagnostic+accuracy+of+optical+coherence+tomography+for+bladder+cancer%3A+A+systematic+review+and+meta-analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Photodiagnosis+and+Photodynamic+Therapy%22%5BJournal%5D)">Diagnostic accuracy of optical coherence tomography for bladder cancer: A systematic review and meta-analysis.</a> Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. 27, 298-304 (2019).</li>
<li>Andrews, P. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+coherence+tomography+of+the+aging+kidney%5BTitle%5D)+AND+%22%26+Clinical+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Optical coherence tomography of the aging kidney.</a> & Clinical Transplantation. 14 (6), 617-622 (2016).</li>
<li>Terashima, M., Kaneda, H., Suzuki, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+optical+coherence+tomography+in+coronary+intervention%5BTitle%5D)+AND+%22The+Korean+Journal+of+Internal+Medicine%22%5BJournal%5D)">The role of optical coherence tomography in coronary intervention.</a> The Korean Journal of Internal Medicine. 27 (1), 1-12 (2012).</li>
<li>Avital, Y., Madar, A., Arnon, S., Koifman, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+coronary+calcifications+in+optical+coherence+tomography+imaging+using+deep+learning%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Identification of coronary calcifications in optical coherence tomography imaging using deep learning.</a> Scientific Reports. 11 (1), 11269(2021).</li>
<li>Huang, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+coherence+tomography%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Optical coherence tomography.</a> Science. 254 (5035), 1178-1181 (1991).</li>
<li>Tsai, T. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+coherence+tomography+in+gastroenterology%3A+a+review+and+future+outlook%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Optics%22%5BJournal%5D)">Optical coherence tomography in gastroenterology: a review and future outlook.</a> Journal of Biomedical Optics. 22 (12), 1-17 (2017).</li>
<li>Chen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relationship+between+optical+intensity+on+optical+coherence+tomography+and+retinal+ischemia+in+branch+retinal+vein+occlusion%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Relationship between optical intensity on optical coherence tomography and retinal ischemia in branch retinal vein occlusion.</a> Scientific Reports. 8 (1), 9626(2018).</li>
<li>Chen, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+analysis+of+retinal+layer+optical+intensities+on+three-dimensional+optical+coherence+tomography%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+Opthalmology+%26+Visual+Science%22%5BJournal%5D)">Quantitative analysis of retinal layer optical intensities on three-dimensional optical coherence tomography.</a> Investigative Opthalmology & Visual Science. 54 (10), 6846-6851 (2013).</li>
<li>Cruz-Herranz, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+retinal+changes+with+optical+coherence+tomography+predicts+neuronal+loss+in+experimental+autoimmune+encephalomyelitis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroinflammation%22%5BJournal%5D)">Monitoring retinal changes with optical coherence tomography predicts neuronal loss in experimental autoimmune encephalomyelitis.</a> Journal of Neuroinflammation. 16 (1), 203(2019).</li>
<li>Podoleanu, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+coherence+tomography%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Microscopy%22%5BJournal%5D)">Optical coherence tomography.</a> Journal of Microscopy. 247 (3), 209-219 (2012).</li>
<li>Augustin, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+coherence+tomography+findings+in+the+retinas+of+SOD1+knockout+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Translational+Vision+Science+%26+Technology%22%5BJournal%5D)">Optical coherence tomography findings in the retinas of SOD1 knockout mice.</a> Translational Vision Science & Technology. 9 (4), 15(2020).</li>
<li>Berger, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spectral-domain+optical+coherence+tomography+of+the+rodent+eye%3A+highlighting+layers+of+the+outer+retina+using+signal+averaging+and+comparison+with+histology%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Spectral-domain optical coherence tomography of the rodent eye: highlighting layers of the outer retina using signal averaging and comparison with histology.</a> PLoS One. 9 (5), 96494(2014).</li>
<li>Burns, M. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+developments+in+murine+imaging+for+assessing+photoreceptor+degeneration+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+Experimental+Medicine+%26+Biology%22%5BJournal%5D)">New developments in murine imaging for assessing photoreceptor degeneration in vivo.</a> Advances in Experimental Medicine & Biology. 854, 269-275 (2016).</li>
<li>Jagodzinska, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+coherence+tomography%3A+imaging+mouse+retinal+ganglion+cells+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%3A+Jove%22%5BJournal%5D)">Optical coherence tomography: imaging mouse retinal ganglion cells in vivo.</a> Journal of Visualized Experiments: Jove. (127), e55865(2017).</li>
<li>Kocaoglu, O. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simultaneous+fundus+imaging+and+optical+coherence+tomography+of+the+mouse+retina%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+Opthalmology+%26+Visual+Science%22%5BJournal%5D)">Simultaneous fundus imaging and optical coherence tomography of the mouse retina.</a> Investigative Opthalmology & Visual Science. 48 (3), 1283-1289 (2007).</li>
<li>Tode, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thermal+stimulation+of+the+retina+reduces+Bruch%27s+membrane+thickness+in+age+related+macular+degeneration+mouse+models%5BTitle%5D)+AND+%22Translational+Vision+Science+%26+Technology%22%5BJournal%5D)">Thermal stimulation of the retina reduces Bruch's membrane thickness in age related macular degeneration mouse models.</a> Translational Vision Science & Technology. 7 (3), 2(2018).</li>
<li>Wang, R., Jiang, C., Ma, J., Young, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+morphological+changes+in+the+retina+of+rhodopsin-%2F-+mice+with+spectral+domain+optical+coherence+tomography%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+Ophthalmology+%26+Visual+Science%22%5BJournal%5D)">Monitoring morphological changes in the retina of rhodopsin-/- mice with spectral domain optical coherence tomography.</a> Investigative Ophthalmology & Visual Science. 53 (7), 3967-3972 (2012).</li>
<li>Xie, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+spectral-domain+optical+coherence+tomographic+analysis+of+Rdh5-%2F-+mice+retina%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">A spectral-domain optical coherence tomographic analysis of Rdh5-/- mice retina.</a> PLoS ONE. 15 (4), 0231220(2020).</li>
<li>Li, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+imaging+by+optical+coherence+tomography+to+monitor+retinal+degeneration+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+Ophthalmology+%26+Visual+Science%22%5BJournal%5D)">Noninvasive imaging by optical coherence tomography to monitor retinal degeneration in the mouse.</a> Investigative Ophthalmology & Visual Science. 42 (12), 2981-2989 (2001).</li>
<li>Horio, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progressive+change+of+optical+coherence+tomography+scans+in+retinal+degeneration+slow+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Ophthalmology%22%5BJournal%5D)">Progressive change of optical coherence tomography scans in retinal degeneration slow mice.</a> Archives of Ophthalmology. 119 (9), 1329-1332 (2001).</li>
<li>Hu, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+VLDLR+in+the+retina+and+evolution+of+subretinal+neovascularization+in+the+knockout+mouse+model%27s+retinal+angiomatous+proliferation%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+Opthalmology+%26+Visual+Science%22%5BJournal%5D)">Expression of VLDLR in the retina and evolution of subretinal neovascularization in the knockout mouse model's retinal angiomatous proliferation.</a> Investigative Opthalmology & Visual Science. 49 (1), 407-415 (2008).</li>
<li>Wyne, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+the+VLDL+receptor+in+endothelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Arteriosclerosis%2C+Thrombosis%2C+and+Vascular+Biology%22%5BJournal%5D)">Expression of the VLDL receptor in endothelial cells.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 16 (3), 407-415 (1996).</li>
<li>Augustin, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+characterization+of+spontaneous+retinal+neovascularization+in+the+mouse+eye+by+multifunctional+optical+coherence+tomography%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+Opthalmology+%26+Visual+Science%22%5BJournal%5D)">In vivo characterization of spontaneous retinal neovascularization in the mouse eye by multifunctional optical coherence tomography.</a> Investigative Opthalmology & Visual Science. 59 (5), 2054-2068 (2018).</li>
<li>Fang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fundus+autofluorescence%2C+spectral-domain+optical+coherence+tomography%2C+and+histology+correlations+in+a+Stargardt+disease+mouse+model%5BTitle%5D)+AND+%22The+FASEB+Journal%22%5BJournal%5D)">Fundus autofluorescence, spectral-domain optical coherence tomography, and histology correlations in a Stargardt disease mouse model.</a> The FASEB Journal. 34 (3), 3693-3714 (2020).</li>
</ol>

Autorzy deklarują brak potencjalnego konfliktu interesów.

W tym badaniu obrazowanie OCT przy użyciu systemu obrazowania siatkówki małych zwierząt zastosowano do oceny zmian siatkówki u myszy z nokautem Vldlr , które wykazują niepełne tylne odwarstwienie ciała szklistego, neowaskularyzację podsiatkówkową i ścieńczenie grubości siatkówki. OCT to nieinwazyjna metoda obrazowania służąca do badania stanu siatkówki in vivo. Większość urządzeń OCT jest przeznaczona do badania wzroku człowieka. Wielkość sprzętu sprzętowego, ustawienie ogniskowej, ustawienie parametrów...

Optyczna koherentna tomografia (OCT) to technika obrazowania, która może zapewnić in vivo wysoką rozdzielczość i przekrojowe obrazowanie tkanek 1,2,3,4,5,6,7,8, szczególnie do nieinwazyjnego badania w siatkówce<klasa sup="xref">9,<klasa sup="xref">10,<klasa sup="xref">11,<klasa sup="xref">12. Można go również wykorzystać do ilościowego określenia niektórych ważnych biomarkerów, takich jak grubość siatkówki i grubość warstwy włókien nerwowych siatkówki. Zasadą działania OCT jest optyczna reflektometria koherentna, która uzyskuje informacje o przekroju poprzecznym tkanki na podstawie spójności światła odbitego od próbki i przekształca je w formę graficzną lub cyfrową za pomocą systemu komputerowego7. OCT jest szeroko stosowany w klinikach okulistycznych jako niezbędne narzędzie do diagnozowania, obserwacji i leczenia pacjentów z zaburzeniami siatkówki. Może również dostarczyć informacji na temat patogenezy chorób siatkówki.
Oprócz zastosowań klinicznych, OCT był również używany w badaniach na zwierzętach. Chociaż patologia jest złotym standardem charakterystyki morfologicznej, OCT ma tę zaletę, że umożliwia nieinwazyjne obrazowanie in vivo i długotrwałą obserwację. Ponadto wykazano, że OCT jest dobrze skorelowany z histopatologią w modelach zwierzęcych retinopatii11,13,14,15,16,17,18,19,20. Mysz jest najczęściej wykorzystywanym zwierzęciem w badaniach biomedycznych. Jednak jego małe gałki oczne stanowią wyzwanie techniczne dla przeprowadzenia obrazowania OCT u myszy.
W porównaniu do OCT po raz pierwszy użytego do obrazowania siatkówki u myszy21,22, OCT u małych zwierząt zostało teraz zoptymalizowane pod względem systemów sprzętowych i programowych. Na przykład OCT, w połączeniu z trackerem, znacznie zmniejsza stosunek sygnału do szumu; Aktualizacje systemu oprogramowania OCT umożliwiają automatyczne wykrywanie większej liczby warstw siatkówki; a zintegrowany rzutnik DLP pomaga zredukować artefakty ruchu.
Receptor lipoprotein o bardzo niskiej gęstości (Vldlr) jest białkiem transbłonowym w komórkach śródbłonka. Ulega ekspresji na komórkach śródbłonka naczyń krwionośnych siatkówki, komórkach nabłonka barwnikowego siatkówki oraz wokół zewnętrznej błony granicznej23,24. Neowaskularyzacja podsiatkówkowa jest fenotypem myszy z nokautem Vldlr23. Dlatego myszy z nokautem Vldlr są wykorzystywane do badania patogenezy i potencjalnej terapii neowaskularyzacji podsiatkówkowej. Artykuł ten demonstruje zastosowanie obrazowania OCT do wykrywania zmian w siatkówce u myszy z nokautem Vldlr, mając nadzieję na dostarczenie pewnych technicznych odniesień do badań nad retinopatią na małych modelach zwierzęcych.

<table><tbody><tr><td>Soczewki kontaktowe 100-Dpt</td><td>Volk Optical,Inc, Mentor, OH</td><td></td><td>Akcesorium należące do RETImap</td></tr><tr><td>Podwójna soczewka asferyczna ze szkła 60-Dpt</td><td>Volk Optical,Inc, Mentor, OH</td><td></td><td>Akcesorium należące do RETImap</td></tr><tr><td>Elektryczny koc grzewczy</td><td>POPOCOLA</td><td>CW-DRT-01</td><td>50 x 35 cm</td></tr><tr><td>Strzykawka iniekcyjna (1 mL)</td><td>Kaile</td><td></td><td>0,45 x 16RWLB</td></tr><tr><td>Żel pod oczy chlorowodorku lewofloksacyny</td><td>EBE PHARMACEUTICAL Co.LTD</td><td></td><td>5 g: 0,015 g</td></tr><tr><td>Medyczny żel hialuronianu sodu</td><td>Alcon</td><td>16H01E</td><td></td></tr><tr><td>Strzykawki mikrolitrowe</td><td>Shanghai high pigeon industry and trade co., LTD</td><td>Q31/0113000236C001-2017</td><td>50 &micro; L</td></tr><tr><td>roztwór jodu powidonu</td><td>Guangdong medihealth pharmaceutical Co., LTD</td><td></td><td>100 ml</td></tr><tr><td>RETImap</td><td>ROLAND CONSULT</td><td>19-99_50-2.1_1.2E</td><td>cSLO/ERG/VEP/FA/OCT/GFP</td></tr><tr><td>Kolczyki do uszu małych zwierząt</td><td>OSMO POCKET OT110</td><td>INS1005-1S</td><td></td></tr><tr><td>Krople do oczu tropicamidu fenylefryny</td><td>Santen Pharmaceutical Co., LTD</td><td></td><td>5 mg / ml</td></tr><tr><td>ksylazyny</td><td>Sigma</td><td>X1251-5G</td><td>5 g</td></tr><tr><td>Zoletil 50</td><td>Virbac.S.A</td><td>7FRPA</td><td>Tiletamine 125 mg + Zolazepam 125 mg</td></tr></tbody></table>

zastosowanie optycznej koherentnej tomografii do mysiego modelu retinopatii

Application of Optical Coherence Tomography to a Mouse Model of Retinopathy

Optyczna koherentna tomografia (OCT) oferuje nieinwazyjną metodę diagnozowania retinopatii. Maszyna OCT może rejestrować obrazy przekroju poprzecznego siatkówki, na podstawie których można obliczyć grubość siatkówki. Chociaż OCT jest szeroko stosowany w praktyce klinicznej, jego zastosowanie w badaniach podstawowych nie jest tak powszechne, zwłaszcza u małych zwierząt, takich jak myszy. Ze względu na mały rozmiar gałek ocznych przeprowadzenie badań obrazowania dna oka u myszy jest trudne. Dlatego wymagany jest specjalistyczny system obrazowania siatkówki, aby umożliwić obrazowanie OCT u małych zwierząt. W artykule przedstawiono specyficzny dla małych zwierząt system procedur badawczych OCT oraz szczegółową metodę analizy obrazu. Przedstawiono wyniki badania OCT siatkówki myszy z nokautem receptora lipoprotein o bardzo niskiej gęstości (Vldlr) oraz myszy C57BL/6J. Obrazy OCT myszy C57BL / 6J wykazały warstwy siatkówki, podczas gdy obrazy myszy z nokautem Vldlr wykazały neowaskularyzację podsiatkówkową i ścieńczenie siatkówki. Podsumowując, badanie OCT może ułatwić nieinwazyjne wykrywanie i pomiar retinopatii w modelach mysich.

Dzięki skanom OCT o wysokiej rozdzielczości można obserwować warstwy siatkówki myszy oraz identyfikować nieprawidłowe odblaski i ich dokładną lokalizację. W niniejszym badaniu porównano obrazy OCT siatkówki myszy z knockoutem genu Vldlr oraz myszy C57BL/6J. Obrazy OCT wszystkich myszy C57BL/6J wykazały obecność różnych warstw siatkówki o zróżnicowanej odblaskowości, a ich granice były wyraźne (Rycina 8D). W przeciwieństwie do nich, u wszystkich myszy z knockoutem Vldlr na o...

Tutaj opisujemy technikę obrazowania in vivo wykorzystującą optyczną koherentną tomografię ułatwiającą diagnozę i ilościowy pomiar retinopatii u myszy.

Zastosowanie optycznej koherentnej tomografii do mysiego modelu retinopatii

Optical coherence tomography (OCT) offers a noninvasive method for the diagnosis of retinopathy. The OCT machine can capture retinal crosssectional images ...

Optyczna koherentna tomografia jest szeroko stosowana w diagnostyce klinicznej różnych chorób siatkówki, ale nadal jest trudna do zastosowania w modelach mysich. Protokół ten opisuje, jak postępować z techniką OCT u zwierząt. Technologia ta może być stosowana u zwierząt o różnych rozmiarach gałek ocznych.Umożliwia nieinwazyjne obrazowanie przekroju poprzecznego siatkówki w wysokiej rozdzielczości w czasie rzeczywistym, wraz z ilościowymi pomiarami grubości siatkówki. OCT pomaga w diagnostyce retinopatii, identyfikując cechy zmiany, takie jak lokalizacja, zakres, kształt i wielkość zmian, a także wszystkie podejrzewane nieprawidłowości siatkówki, takie jak neowaskularyzacja siatkówki. Protokół ten ma zastosowanie do badań na zwierzętach lub chorób dna oka, w tym chorób siatkówki.Przed rozpoczęciem zabiegu przygotuj się i postępuj zgodnie z protokołem krok po kroku. Wykonaj eksperyment, gdy zwierzę jest znieczulone. Po odrobinie praktyki powinno być w stanie uzyskać dobrej jakości obrazy OCT.Aby rozpocząć, włącz komputer i uruchom oprogramowanie. Kliknij przycisk programu testowego, aby zakończyć program testowy. Następnie włącz termostat i podgrzej go do 37 stopni Celsjusza.Po przetestowaniu programu uruchom procedurę modułu OCT. Utwórz nowy temat i uzupełnij informacje o myszy. Następnie rozgrzej koc elektryczny i przykryj go ręcznikami chirurgicznymi.Umieść znieczuloną mysz na platformie koca elektrycznego i natychmiast pokryj oba oczy medycznym żelem hialuronianu sodu. Następnie umieść soczewkę kontaktową 100D na rogówce myszy tak, aby wklęsła strona dotykała żelu hialuronianu sodu na powierzchni rogówki. Następnie umieść mysz na małej platformie zwierzęcej urządzenia cSLO o stałej temperaturze.Wyreguluj kąt soczewki kontaktowej za pomocą kleszczyków, aby źrenica znajdowała się pośrodku soczewki. Dostosuj regulacje głowy, aby oko było skierowane prosto przed siebie. Kliknij przycisk OCT, wybierz moduł myszy i uruchom program cSLO.Następnie za pomocą dźwigni sterującej powoli przesuwaj ustawioną soczewkę w kierunku soczewki kontaktowej. Dokonaj dalszych korekt, aby wyrównać obraz bieguna przednio-tylnego, centrując go na głowie nerwu wzrokowego. Następnie uruchom program OCT i klikaj pasek postępu w górę iw dół, aż pojawi się obraz OCT.Dostosuj minimalny zakres od 0 do 20 i maksymalny zakres od 40 do 60. Następnie dostosuj zaprogramowaną odległość obiektywu i kierunek położenia, aż do uzyskania idealnego obrazu OCT. Wybierz pozycję skanowania, przesuwając standardową linię w cSLO.Następnie kliknij średnią, aby nałożyć sygnał obrazu cSLO i OCT i kliknij przycisk strzału, aby uzyskać obraz SLO OCT. Po eksperymencie wyjmij soczewkę kontaktową 100D i nałóż żel do oczu z lewofloksacyną, aby chronić rogówkę. Aby skorygować stratyfikację siatkówki, kliknij test obciążenia w interfejsie OCT i wywołaj obrazy OCT z wyskakującego okienka.Następnie kliknij dwukrotnie obraz w kontenerze multimediów, aby wyświetlić go na ekranie. Następnie kliknij wykrywanie warstw, aby zakończyć automatyczne nakładanie warstw na siatkówce. Po zaznaczeniu linii podziału po obu stronach warstwy przygotowanej do analizy, kliknij edytuj warstwę, aby dostosować odstępy i ograniczyć zakres.Następnie zmodyfikuj linię, przesuwając czerwone kółko. Aby zmierzyć grubość laminacji siatkówki, kliknij przycisk znacznika pomiaru i wybierz linię podziału warstwy, która ma być analizowana, aby wyświetlić granicę warstwy na obrazie OCT. Następnie wybierz opcję Połącz z warstwą i pozostań w kontakcie w ruchu.Następnie wybierz obszar, w którym chcesz wyświetlić wyniki i kliknij pozycję do analizy na obrazie OCT, aby pojawiła się linia pomiaru. Kliknij następną kolumnę, aby wyświetlić kolejne pomiary i wyświetlić poprzednie dane. Aby zmierzyć pełną grubość siatkówki, wybierz linię pierwszą i linię siódmą z listy w prawym górnym rogu.Następnie, od momentu pojawienia się struktury siatkówki na krawędzi brodawki wzrokowej, zmierz cztery wartości w odstępach 200 mikrometrów na linijce poziomej. Obrazy OCT myszy C57BL/6 wykazały różne warstwy siatkówki z wyraźnym rozgraniczeniem. Natomiast myszy z nokautem Vldlr wykazywały nieprawidłowe zmiany hiperrefleksyjne.Obrazy OCT pokazały kilka środkowych pasm odblaskowych na powierzchniach siatkówki myszy z nokautem Vldlr. Pasma te przylegały do naczynia siatkówki, co jest zgodne z charakterystyką OCT niepełnego odwarstwienia ciała szklistego. Jedna zmiana hiperrefleksyjna pojawiła się w przestrzeni podsiatkówkowej i rozprzestrzeniła się na zewnętrzną warstwę jądrową, ale nie przebiła się przez zewnętrzną warstwę splotowatą.Wygląd OCT tej zmiany był zgodny z wynikami patologicznymi. Sekcja patologiczna wykazała, że neowaskularyzacja przebiła się przez warstwę nabłonka barwnikowego siatkówki, wewnętrzne i zewnętrzne segmenty fotoreceptorów oraz zewnętrzną błonę ograniczającą, atakując zewnętrzną warstwę jądrową, ale nie zewnętrzną warstwę splotowatą. Inne pasmo zmiany hiperrefleksyjnej, zlokalizowane w przestrzeni podsiatkówkowej, nie obejmowało zewnętrznej warstwy jądrowej.Zgodnie z ustaleniami patologicznymi, ta neowaskularyzacja podsiatkówkowa nie przebiła się przez zewnętrzną błonę ograniczającą. Porównanie grubości siatkówki prawego oka w kierunku skroniowym, nosowym, górnym i dolnym tylnego bieguna między dwiema grupami wykazało, że grubość siatkówki myszy z nokautem Vldlr była znacznie niższa niż myszy C57BL / 6J. Podczas wykonywania protokołu należy prawidłowo umieścić soczewkę kontaktową 100D na rogówce, a następnie wyregulować położenie obrazu.Wybierz miejsce skanowania i nałóż obraz przed zrobieniem zdjęcia. Po tej procedurze możliwe jest wykonanie OCT przedniego odcinka, co wymaga zmiany odległości między wstępnie ustawioną soczewką a rogówką. Może pokazywać rogówkę, przednią komorę, tęczówkę, ciało rzęskowe i soczewkę.Technika ta stanowi ważne narzędzie do badań nad retinopatią na małych modelach zwierzęcych, promując nieinwazyjne wykrywanie i pomiar retinopatii w badaniach podstawowych.

application-optical-coherence-tomography-to-mouse-model

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Ten film demonstruje technikę obrazowania in vivo do wykrywania i ilościowego określania stanu zapalnego oka w mysim modelu poinfekcyjnego zapalenia błony naczyniowej oka. Technika ta, znana jako optyczna tomografia koherentna (OCT), generuje obrazy przekroju poprzecznego oka o wysokiej rozdzielczości w celu oceny postępu choroby.

Obrazowanie optycznej koherentnej tomografii do oceny zapalenia błony naczyniowej oka w modelu mysim

Source: Jagodzińska, J., et. al., optyczna tomografia koherentna: obrazowanie komórek zwojowych siatkówki myszy . J. Vis. Exp. (2017)  W tym filmie pokazujemy zastosowanie optycznej koherentnej tomografii w domenie spektralnej (SD-OCT) do obrazowania warstw siatkówki i oceny zmian strukturalnych w genetycznie zmodyfikowanym modelu myszy z neuropatią nerwu wzrokowego.

Obrazowanie in vivo siatkówki myszy za pomocą optycznej koherentnej tomografii

Ten manuskrypt opisuje protokół obrazowania in vivo siatkówki myszy za pomocą optycznej koherentnej tomografii spektralnej o wysokiej rozdzielczości (SD-OCT). Koncentruje się na komórkach zwojowych siatkówki (RGC) w okolicy okołobrodawkowatej, z opisanymi kilkoma podejściami do skanowania i kwantyfikacji.

Optyczna tomografia koherentna: obrazowanie komórek zwojowych siatkówki myszy in vivo

Tutaj demonstrujemy nowatorskie podejście do wykorzystania wysokiej rozdzielczości optycznej koherentnej tomografii spektralnej (HR-SD-OCT) do wspomagania dostarczania środków terapii genowej do przestrzeni podsiatkówkowej, oceny jej zasięgu powierzchniowego i charakteryzowania żywotności fotoreceptorów.

Optyczna koherentna tomografia myszy o ultrawysokiej rozdzielczości wspomagająca wstrzyknięcie do gałki ocznej w badaniach nad terapią genową siatkówki

Ten protokół opisuje, jak techniki obrazowania o wysokiej rozdzielczości, takie jak optyczna koherentna tomografia w domenie spektralnej i skaningowa oftalmoskopia laserowa, mogą być wykorzystane u małych gryzoni, przy użyciu systemu platformy obrazowania okulistycznego, aby uzyskać informacje odpowiednio o grubości siatkówki i rozmieszczeniu komórek mikrogleju.

In vivo (in vivo) Obrazowanie myszy reporterowych Cx3cr1gfp/gfp z optyczną koherentną tomografią w domenie spektralnej i skaningową oftalmoskopią laserową

Przedstawiono szczegółowy protokół oceny odczytów strukturalnych i wizualnych u gryzoni za pomocą optycznej koherentnej tomografii i odpowiedzi optokinetycznej. Wyniki dostarczają cennych informacji dla badań okulistycznych i neurologicznych.

Wykorzystanie optycznej tomografii koherentnej i odpowiedzi optokinetycznej jako strukturalnych i funkcjonalnych odczytów układu wzrokowego u myszy i szczurów

Tutaj opisujemy użycie optycznej koherentnej tomografii spektralnej (SD-OCT) do wizualizacji struktur siatkówki i oka in vivo w modelach zwyrodnienia siatkówki, jaskry, retinopatii cukrzycowej i krótkowzroczności.

Strukturalne oceny in vivo chorób oczu w modelach gryzoni przy użyciu optycznej koherentnej tomografii

Tutaj opisujemy mysi model niedokrwienia siatkówki poprzez przejściowe obustronne zamknięcie tętnicy szyjnej za pomocą prostych szwów i zacisku. Model ten może być przydatny do zrozumienia patologicznych mechanizmów niedokrwienia siatkówki spowodowanego nieprawidłowościami sercowo-naczyniowymi.

Mysi model niedokrwiennego uszkodzenia siatkówki wywołanego przejściowym obustronnym zamknięciem tętnicy szyjnej wspólnej

Tutaj opisujemy zoptymalizowany protokół do zamykania żył siatkówki za pomocą róży bengalskiej i sterowanego laserowo systemu obrazowania siatkówki z zaleceniami maksymalizacji jego odtwarzalności w genetycznie modyfikowanych szczepach.

Optymalizacja mysiego modelu niedrożności żyły siatkówki w celu ograniczenia zmienności

Obecny protokół przedstawia kroki do wyrównania in vivo obrazów światłowodowej optycznej koherentnej tomografii koherentnej (vis-OCTF) in vivo z obrazami konfokalnymi ex vivo tej samej siatkówki myszy w celu weryfikacji obserwowanej morfologii pęczka aksonów komórek zwojowych siatkówki na obrazach in vivo.

Wyrównanie światłowodów światłowodowej koherentnej tomografii koherentnej w świetle widzialnym z obrazami konfokalnymi tej samej siatkówki myszy

Poznaj technikę optycznej koherentnej tomografii do nieinwazyjnego obrazowania siatkówki w mysim modelu retinopatii. Metoda umożliwia ilościowe pomiary grubości siatkówki i identyfikację zmian chorobowych w czasie rzeczywistym.

Zastosowanie optycznej koherentnej tomografii do mysiego modelu retinopatii

Przeglądaj więcej filmów