September 20th, 2022
Skonstruowaliśmy nieukierunkowany przepływ metabolomiczny, który zintegrował XY-Meta i metaX razem. W tym protokole pokazaliśmy, jak używać XY-Meta do generowania wabikowej biblioteki spektralnej na podstawie odniesienia do widm w otwartym dostępie, a następnie przeprowadziliśmy kontrolę FDR i użyliśmy metaX do ilościowego określenia metabolitów po zidentyfikowaniu widm metabolomicznych.
Protokół ten umożliwia jakościową i ilościową analizę nieukierunkowanego metabolomu w oparciu o kontrolę jakości FDR, co skutecznie zmniejsza liczbę wyników fałszywie dodatnich w identyfikacji metabolitów. Ten przepływ pracy integruje XY-Meta, który wykorzystuje strategię celu-wabika do dokładniejszej oceny FDR w celu identyfikacji metabolomu w module analizy jakościowej. Środek ten może skutecznie filtrować fałszywie dodatnie wyniki nieukierunkowanej identyfikacji metabolomu, co zwiększa niezawodność odkrywania biomarkerów lub kluczowych cząsteczek.
Oczekujemy, że badacze będą w stanie zrozumieć i opanować strategię celu-wabika do kontroli FDR i powinni spróbować ściśle uruchomić ten potok kilka razy z domyślnymi parametrami protokołu. Zacznij od przejścia do strony internetowej bazy danych GNPS i kliknij przeglądaj zestawy danych. Wyszukaj słowo kluczowe w kolumnie tytułu, a następnie kliknij numer identyfikacyjny zestawu danych.
Pobierz zestaw danych za pomocą FTP i zapisz nieprzetworzone dane w odpowiednim folderze. Aby przekonwertować format surowych danych, najpierw zainstaluj oprogramowanie ProteoWizard. W ścieżce instalacji ProteoWizard wpisz msconvert.
exe, a następnie określone parametry, aby przekonwertować format danych pierwotnych na format mzXML. Ponownie, przy użyciu msconvert. exe konwertuje te dane do formatu MGF i przechowuje je w folderze MGF.
Aby przygotować referencyjną bibliotekę spektralną dla metabolitów, należy przejść do strony internetowej GNPS. Wyszukaj słowo kluczowe NIST, kliknij przycisk Widok, aby uzyskać szczegółowe informacje i pobierz bibliotekę. Zapisz bibliotekę w folderze bazy danych.
Pobierz program XY-Meta. Znajdź plik konfiguracyjny parametrów w folderze config i zmień jego zawartość zgodnie z opisem w protokole tekstowym. Ustaw typ przyduktów jako listę w folderze przyduktów.
Przeprowadź identyfikację metabolitów i kontrolę szybkości fałszywych wykryć za pomocą polecenia XY-Meta.exe. Pobierz i zainstaluj pakiet oprogramowania metaX. Następnie edytuj listę próbek.
txt, aby określić próbkę i odpowiadające jej dane spektrometrii mas zgodnie z opisem w protokole tekstowym. Użyj pliku R dostarczonego z protokołem tekstowym, aby uruchomić skrypt do kwantyfikacji grup makiet i dzikich przy użyciu oprogramowania metaX. Sprawdź folder wyjściowy, w którym przechowywane są wyniki analizy ilościowej, taki jak wykres PCA.
Następnie zmodyfikuj parametry w skrypcie R, aby dodać adnotacje do pików w analizie jakościowej i ilościowej przy użyciu identyfikacji metabolitów w celu zintegrowania zarówno wyników, jak i uruchomienia skryptu R. Wykresy pudełkowe ilościowo oznaczonych metabolitów wykazały, że ogólny rozkład próbek zdrowych i chorobowych był podobny z niewielkimi wahaniami średnich wartości. Tylko w 3,39% metabolitów brakowało więcej niż 30% wartości.
Wykres analizy głównych składowych próbek z obu grup wykazał, że metaX znacznie zwiększył odsetek metabolitów z CV mniejszym niż 0,3. Diagram Venna przedstawiający metabolity wykryte w różny sposób za pomocą trzech metod badań statystycznych ujawnił 119 powszechnych metabolitów. Czas retencji i rozkład masy według ładunku wszystkich opisanych metabolitów wykreślono ze wskaźnikiem fałszywych odkryć mniejszym niż 0,01, wykazując sześć istotnych i różnie wykrytych metabolitów.
Ważne jest, aby ograniczyć czas na testowanie przepływu pracy. Pamiętaj, aby nie wybierać zbyt wielu próbek do analizy i zachować co najmniej dwie próbki w każdej grupie. Technika ta umożliwia kontrolę jakości identyfikacji metabolizowanej na podstawie danych akwizycji niezależnych od danych, tworząc bardziej niezawodną bibliotekę widma referencyjnego przy użyciu wyników dopasowania widma w oparciu o kontrolę FDR.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Ten protokół umożliwia jakościową i ilościową analizę niecelowego metabolomu z wykorzystaniem kontroli jakości FDR w celu zmniejszenia fałszywych dodatnich wyników w identyfikacji metabolitów. Przepływ pracy integruje XY-Meta dla bardziej dokładnej oceny FDR poprzez strategię target-decoy.
High-throughput untargeted metabolomics generates vast spectral datasets, challenging data quality and increasing the risk of false positives in metabolite identification. Integrating FDR control via a target-decoy strategy enhances predictive confidence and supports robust biomarker discovery at critical early discovery and lead identification stages. This workflow enables scalable, reproducible metabolome analysis, directly impacting portfolio triage and translational research continuity.
This integrated workflow spans early discovery through preclinical research, supporting hypothesis testing, pathway clarification, and robust biomarker identification.