5 maja 2023
Praca ta opisuje protokół dla swobodnego osadzonego druku 3D komórek macierzystych nerwowych wewnątrz samonaprawiającego, wyżarniającego się układu cząstek i matrycy zewnątrzkomórkowej. Protokół umożliwia programowalne wzorcowanie połączonych konstrukcjonów tkanek nerwowych ludzkich z wysoką dokładnością.
Wbudowany druk 3D w kompozytach SHAPE przezwycięża tradycyjne ograniczenia biofabrykacji, umożliwiając dokładne wzorowanie mechanicznie wrażliwych tkanek wewnątrz hydrożeli przypominających rodzime środowisko zewnątrzkomórkowe. SHAPE toolbox opiera się na modułowym projektowaniu biomateriałów, co umożliwia łatwe zmiany w formułowaniu wsparcia druku. Wykorzystuje także tanie materiały i dostępny sprzęt do prostych adaptacji przez inne grupy badawcze.
To podejście można zastosować do tworzenia przestrzennie zdefiniowanych modeli ludzkiej tkanki nerwowej do badania rozwoju neuronów i komunikacji w chorobach neurodegeneracyjnych, takich jak choroba Parkinsona. Zacznij od przygotowania roztworu węglanu wapnia w ultraczystej wodzie w stężeniu dwóch miligramów na mililitr. Wymieszaj go z roztworem alginatu w równym stopniu i mieszaj magnetycznie w 650 obr./min przez godzinę w temperaturze pokojowej.
Następnie dodaj kwas octowy do tej mieszanki w proporcji 1 do 500 i mieszaj ponownie przez noc. Następnego dnia mechanicznie rozdrobnić roztwór galareatu alginianu na mikrocząstki przy 15 000 obr./min przez 10 minut za pomocą homogenizatora. Następnie wiruję w wirówce, aby uzyskać mikrocząstki.
Ostrożnie odrzuć supernatant i ponownie zawiesić cząstki w DMEM, zawierające dwa milimolowe wodorotlenek sodu i 1% penicyliny, streptomycynę. Kolor zawieszenia powinien wrócić do czerwonego. Inkubuj zawiesinę przez noc w temperaturze czterech stopni Celsjusza.
Po inkubacji ujednolicz zawiesinę przez trzy minuty przy 15 000 obr./min i wiruj w 18 500 G przez 10 minut. Po wirowaniu usuń supernatant i obserwuj granulat pod kątem ściśle upakowanych mikrocząstek alginatu. Aby uzyskać kompozyt SHAPE, wymieszaj granulki mikrocząstek alginatu z rozcieńczonym i zneutralizowanym kolagenem w proporcji dwa do jednego i pipetuj go na lodzie.
Przenieś wygenerowany materiał kompozytowy do schłodzonej płyty o długości 24 dołków. Przed wydrukowaniem rozłóż wcześniej hodowane ludzkie komórki macierzyste nerwowe, czyli hNSC, przez pięć minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza za pomocą roztworu 0,025% trypsyny. Następnie zneutralizuj trypsynę podłożem wzrostu i wiruj zawiesinę komórkową w 400 G przez pięć minut w temperaturze pokojowej.
Po usunięciu supernatantu ponownie zawiesij osad komórkowy w dwóch do trzech mililitrach podłoża wzrostowego. Używając tępej metalowej igły o grubości 21, załaduj do strzykawki 100 mikrolitrów ciasno upakowanych mikrocząstek alginatu. Następnie załaduję przygotowaną zawiesinę komórkową do strzykawki.
Do druku wymień igłę ładowającą na tępą metalową igłę 27. Korzystając z oprogramowania referencyjnego, po zaprojektowaniu struktury do druku kliknij generuj, aby uzyskać generowanie kodu G. Włóż strzykawkę załadowaną komórką do głowicy wytłaczania objętościowej na bioprinterze opartym na wytłaczaniu i zapisz długość igły, klikając na start proces pomiaru długości igły.
Następnie umieść płytę 24 dołków załadowaną kompozytem SHAPE na drukarce i kliknij na SHM, aby zmierzyć wysokość powierzchni pustego dołka. Wybierz pH 2, a następnie symbol klucza. Następnie pod ustawionym parametrem zmień przepływ objętościowy na 3,6 mikrolitra na sekundę i naciśnij Zastosowanie parametru, a następnie Zapisz i koniec.
Załaduj kod G do interfejsu drukarki, klikając ikonę, aby otworzyć kod G. Wybierz ikonę programu uruchamiania, aby rozpocząć procedurę drukowania. Zaraz po wydruku inkubuj żel SHAPE w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 30 minut do wyżarzania.
Następnie delikatnie dodaj podłoże do żelowego podłoża SHAPE annealed. W przypadku immunobarwienia usuń nadmiar medium z żelu, a za pomocą szpatułki przenieś żel do pojemnika zawierającego DPBS. Gdy płytka zostanie umieszczona w okapie spalinowym, usuń DPBS.
Okryj żel roztworem 4% formaldehydu i inkubuj przez godzinę w temperaturze pokojowej. Po umyciu DPBS dodaj roztwór blokujący do żelu. Delikatnie kołysz płytę i inkubuj przez sześć godzin w temperaturze pokojowej, aby zapobiec nieokreślonym wiązaniu.
Po usunięciu roztworu blokującego dodaj do żelu główne przeciwciało i delikatnie go kołysaj. Inkubuj płytę przez 48 godzin w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Po myciu DPBS podobnie traktuj żel roztworem przeciwciał wtórnych przez 24 godziny.
Umieść zabarwiony żel szpatułką w płytkę z cienkim dnem obrazującym przed wykonaniem obrazowania. W niniejszym badaniu tusz hNSC wydrukował włókno komórek o średnicy około 200 mikrometrów. Wydrukowane pasma były bogate w żywotne komórki o morfologii wokół nich.
Po 30 dniach od druku komórki wykazały morfologię neuronalną z małymi ciałami komórkowymi i długimi, cienkimi wyrostkami, co wskazywało na udaną różnicację hNSC. Barwienie tubuliną beta 3 umożliwiło wizualizację generowanych sieci neuronowych z zachowaniem geometrii. Podczas procesu różnicowania komórki nie migrowały poza wydrukowane nici.
Kompozyt SHAPE może być używany do tworzenia kanałów przepuszczalnych poprzez drukowanie atramentu ofiarnego zamiast komórek. Ponadto wsparcie może obejmować kulki wrażliwe na tlen do monitorowania napięcia tlenu w konstrukcjach drukowanych 3D w czasie i przestrzeni.
Niniejsza praca opisuje protokół wbudowanego druku 3D neuronalnych komórek macierzystych wewnątrz samogojących się, wyżarzalnych kompozytów cząsteczkowych i macierzy zewnątrzkomórkowej. Metoda ta umożliwia programowalne wzorowanie wzajemnie połączonych struktur ludzkiej tkanki nerwowej z wysoką precyzją.
Zintegrowany druk 3D ludzkich konstruktów neuronalnych w kompozytach SHAPE wypełnia istotną lukę w modelowaniu chorób neurodegeneracyjnych, zapewniając regulowane środowisko naśladujące macierz zewnątrzkomórkową (ECM), które wspiera długoterminową hodowlę i dojrzewanie funkcjonalne. Podejście to umożliwia działom badawczo-rozwojowym w branży biofarmaceutycznej generowanie powtarzalnych, istotnych dla człowieka modeli tkanki neuronalnej do walidacji celów terapeutycznych i minimalizacji ryzyka mechanistycznego we wczesnych etapach odkrywania leków. Modułowa, niskokosztowa konstrukcja wspiera skalowalną adaptację w procesach badawczych nad chorobą Parkinsona i zaburzeniami pokrewnymi.
Kompozytowa metoda SHAPE integruje się z kontinuum odkryć, umożliwiając wczesne testowanie hipotez w ludzkich modelach neuronalnych, wspierając rozwój testów do oceny związków oraz dostarczając translacyjnych odczytów, które stanowią pomost do oceny przedklinicznej.