-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Izolacja i oczyszczanie bakteryjnych pęcherzyków zewnątrzkomórkowych z ludzkiego kału za pomocą w...
Izolacja i oczyszczanie bakteryjnych pęcherzyków zewnątrzkomórkowych z ludzkiego kału za pomocą w...
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Isolation and Purification of Bacterial Extracellular Vesicles from Human Feces Using Density Gradient Centrifugation

Izolacja i oczyszczanie bakteryjnych pęcherzyków zewnątrzkomórkowych z ludzkiego kału za pomocą wirowania w gradiacji gęstości

Full Text
3,969 Views
06:39 min
September 1, 2023

DOI: 10.3791/65574-v

Yicong Xue*1, Xixin Huang*1, Zihao Ou*1, Yuanyuan Wu1, Qianbei Li1, Xinyue Huang1, Minghui Wen1, Yan Yang1, Bo Situ1, Lei Zheng1

1Department of Laboratory Medicine, Nanfang Hospital,Southern Medical University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol for isolating and purifying bacterial extracellular vesicles (BEVs) from human feces using density gradient centrifugation (DGC). The method reduces centrifugation time significantly and enhances BEV separation from contaminants, providing a standard approach for future research on BEVs.

Key Study Components

Research Area

  • Bacterial extracellular vesicles
  • Disease diagnostics and therapeutics
  • Clinical and scientific applications

Background

  • BEVs play a critical role in intercellular communication and disease
  • Traditional methods for BEV isolation can be time-consuming and inefficient
  • There is a need for standardized protocols in BEV research

Methods Used

  • Density gradient centrifugation
  • Human fecal samples as a biological system
  • Ultracentrifugation technology

Main Results

  • Successfully isolated and purified BEVs with reduced centrifugation time
  • Enhanced separation of BEVs from contaminants like lipoproteins
  • Demonstrated applicability of the method to other biological fluids

Conclusions

  • The study establishes a reliable method for BEV isolation
  • Enhances understanding of BEV heterogeneity in human biology

Frequently Asked Questions

What are bacterial extracellular vesicles?
Bacterial extracellular vesicles are membrane-bound particles released by bacteria that can influence various biological processes.
How does density gradient centrifugation work for isolating BEVs?
It uses layers of different densities to separate vesicles based on their size and density during centrifugation.
Can this method be applied to other biological fluids?
Yes, with appropriate modifications, this method can be adapted for use with other body fluids.
What makes this method reliable?
The reduced centrifugation time and improved separation techniques contribute to its reliability.
What potential applications are there for this research?
It may aid in diagnostics, therapeutics, and understanding bacterial behavior and interactions in human health.
How do BEVs contribute to our understanding of cell biology?
BEVs carry molecular signals that play a role in cell communication, thus providing insights into bacterial roles in health and disease.

To badanie opisuje metodę izolacji i oczyszczania bakteryjnych pęcherzyków zewnątrzkomórkowych (BEV) wzbogaconych z ludzkiego kału poprzez wirowanie w gradifikacji gęstości (DGC), identyfikuje fizyczne cechy BEV na podstawie morfologii, wielkości cząstek i stężenia, oraz omawia potencjalne zastosowania podejścia DGC w badaniach klinicznych i naukowych.

Nasze badanie izoluje, oczyszcza i charakteryzuje bakteryjne pęcherzyki zewnątrzkomórkowe z kału za pomocą wirowania w gradiacji gęstości. Naszym celem jest dostosowanie separacji pojazdów typu BEV od zanieczyszczeń i zapewnienie wiarygodnej metody dla badaczy. Nasz protokół skraca czas wirowania z 18 do siedmiu godzin.

Tryb top-down poprawia separację BEV i zmniejsza zanieczyszczenie lipoproteinami. Nasza metoda upraszcza separację pojazdów typu BEV, ustanawiając standard dla przyszłych badań. Może być stosowany do innych płynów ustrojowych z odpowiednią modyfikacją, poszerzając naszą wiedzę i ułatwiając badanie pojazdów typu BEV, ujawniając ich nieodłączną heterogeniczność w ludzkim ciele.

Na początek weź przygotowane próbki kału ludzkiego. Schłodzić szybkoobrotową wirówkę z chłodzeniem do czterech stopni Celsjusza. Użyj PBS, aby dostosować wagę probówek z próbkami do 0,1 grama i odwirować je w temperaturze 3 000 G przez 20 minut w temperaturze czterech stopni Celsjusza.

Za pomocą plastikowej pipety przenieś supernatant do dwóch 50-mililitrowych probówek, pozostawiając jeden mililitr. Następnie odwirować supernatant w temperaturze 12 000 G przez 30 minut w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Za pomocą strzykawki o pojemności 20 mililitrów odessać supernatant i wyjąć igłę ze strzykawki.

Przefiltruj ciecz przez filtry 0,22 mikrometra do 50-mililitrowych probówek. Następnie przetrzyj wiadro 75% alkoholem, aby usunąć wszelkie pozostałe zanieczyszczenia. Przenieść około 30 mililitrów przefiltrowanego supernatantu kałowego do probówki ultrawirówkowej.

Napełnij probówkę około ośmioma mililitrami PBS, pozostawiając trzymilimetrową przerwę od otworu probówki. Umieść dwie probówki do ultrawirówek w przeciwległych wiadrach do ultrawirowania i wyrównaj wagę dwóch wiader za pomocą PBS. Załaduj wszystkie wiadra na wirnik, niezależnie od tego, czy są załadowane rurami.

Umieść próbki w wirówce, rozpocznij próżnię i wiruj je w temperaturze 160 000 G przez 70 minut w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Jak tylko wirowanie zakończy się odwirowywanie zwolnij próżnię w komorze i otwórz drzwiczki ultrawirówki. Następnie natychmiast wyjmij wirnik.

Przenieś wiadra z wirnika na stojak i podnieś rurki za pomocą szczypiec. Wyrzucić supernatant i zachować widoczne brązowe granulki. Dodaj jeden mililitr wstępnie schłodzonego PBS, aby całkowicie zawiesić granulki.

Napełnij probówkę około 37 mililitrami PBS, pozostawiając trzymilimetrową przerwę od otworu. Po wykonaniu kolejnej rundy ultrawirowania wyrzucić supernatant i pozostawić probówkę odwróconą do góry dnem na pięć minut. Usuń pozostały roztwór z wewnętrznej ściany za pomocą wycieraczek.

Używając pipety o pojemności 1 000 mikrolitrów, dodaj 1,2 mililitra wstępnie schłodzonego PBS w celu ponownego zawieszenia granulek i wymieszaj je przez pipetowanie. Przenieś 1,2 mililitra roztworu PBS BEV z jednej probówki ultrawirówki do czystej mikroprobówki o pojemności 1,5 mililitra. Na początek weź 500 mikrolitrów przygotowanego roztworu PBS BEV.

Połącz go z trzema mililitrami PBS i delikatnie wymieszaj za pomocą pipety o pojemności 1 000 mikrolitrów. Umieść 31-mililitrową probówkę ultrawirówki na piankowej płytce z otworami i oznacz probówkę strzałką w dół. Następnie trzymaj pionowo pipetę o pojemności 1 000 mikrolitrów i dodaj trzy mililitry 50% roztworu jodiksanolu na dno probówki.

Umieść uchwyt na rurkę nieco powyżej poziomu płytki piankowej poniżej otworu rurki i przechyl rurkę pod kątem 70 stopni. Za pomocą pipety o pojemności 1 000 mikrolitrów dodaj trzy mililitry 40% roztworu jodu na 50% roztwór jodu. Następnie nałóż trzy mililitry 20% roztworu jodiksanolu na 40% roztwór jodiksanolu.

Za pomocą pipety o pojemności 1 000 mikrolitrów dodaj trzy mililitry 10% roztworu jodiksanolu na przygotowany 20% roztwór jodiksanolu. Następnie dodaj 3,5 mililitra roztworu PBS BEV na 10% roztwór jodiksanolu i delikatnie ustaw probówki w pozycji pionowej. Teraz umieść 31-mililitrową probówkę ultrawirówki na piankowej płytce z otworami i oznacz ją strzałką w górę.

Za pomocą pipety o pojemności 1 000 mikrolitrów dodaj pionowo 2,5 mililitra 60% roztworu podstawowego jodiksanolu na dno probówki i połącz go z 500 mikrolitrami roztworu PBS BEV, aby uzyskać trzy mililitry 50% roztworu jodiksanolu BEV. Dokładnie wymieszać roztwór, pipetując. Następnie, po ułożeniu kolejno 40, 20 i 10% roztworu jodu, użyj pipety o pojemności 1 000 mikrolitrów, aby dodać 3,5 mililitra PBS na wierzch 10% roztworu jodu.

Dostosuj wagę dwóch probówek z PBS do całkowitej wagi w zakresie plus/minus 0,005 grama. Następnie umieść probówki w wiadrach i odwiruj je w temperaturze 160 000 G przez siedem godzin w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Za pomocą pipetora zbierz frakcje uzyskane w trybie ultrawirowania gradientowego sekwencyjnie od góry do dołu względem ściany bocznej do 10 oddzielnych probówek ultrawirówek o pojemności 38,5 mililitra.

Następnie ultraodwirować frakcje w temperaturze 160 000G przez 70 minut w czterech stopniach Celsjusza. Usunąć supernatant i odwrócić probówki ultrawirówkowe na pięć minut. Następnie ponownie zawieś granulki w 200 mikrolitrach wstępnie schłodzonego PBS za pomocą pipety o pojemności 200 mikrolitrów.

Przenieś roztwór PBS BEV do czystej mikroprobówki o pojemności 1,5 mililitra. Oznaczyć frakcje od F1 do F10 jako uzyskane z jednego gradientowego trybu ultrawirowania i przystąpić do analizy.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Bakteryjne pęcherzyki zewnątrzkomórkowe BEV wirowanie w gradionym spadku gęstości izolacja kału BEV metoda oczyszczania tryb top-down redukcja zanieczyszczeń komunikacja mikrobioty jelitowej cząsteczki bioaktywne morfologia cząstek wskaźniki odzysku zawartość białka implikacje żołądkowo-jelitowe stosowanie płynów ustrojowych

Related Videos

Izolacja i wzbogacanie pęcherzyków zewnątrzkomórkowych pochodzących z błony zewnętrznej od bakterii

03:53

Izolacja i wzbogacanie pęcherzyków zewnątrzkomórkowych pochodzących z błony zewnętrznej od bakterii

Related Videos

396 Views

Izolacja bakteryjnych pęcherzyków zewnątrzkomórkowych za pomocą chromatografii wykluczającej wielkość

03:24

Izolacja bakteryjnych pęcherzyków zewnątrzkomórkowych za pomocą chromatografii wykluczającej wielkość

Related Videos

413 Views

Oczyszczanie subpopulacji pęcherzyków zewnątrzkomórkowych: technika oczyszczania subpopulacji pęcherzyków zewnątrzkomórkowych za pomocą ultrawirowania w gradimencie gęstości

04:27

Oczyszczanie subpopulacji pęcherzyków zewnątrzkomórkowych: technika oczyszczania subpopulacji pęcherzyków zewnątrzkomórkowych za pomocą ultrawirowania w gradimencie gęstości

Related Videos

3K Views

Oczyszczanie wysokowydajnych preparatów pęcherzyków zewnątrzkomórkowych z wirusa

07:15

Oczyszczanie wysokowydajnych preparatów pęcherzyków zewnątrzkomórkowych z wirusa

Related Videos

12.3K Views

Skalowalna izolacja i oczyszczanie pęcherzyków zewnątrzkomórkowych z Escherichia coli i innych bakterii

09:56

Skalowalna izolacja i oczyszczanie pęcherzyków zewnątrzkomórkowych z Escherichia coli i innych bakterii

Related Videos

4.8K Views

Izolacja i charakterystyka pęcherzyków zewnątrzkomórkowych sinic

08:44

Izolacja i charakterystyka pęcherzyków zewnątrzkomórkowych sinic

Related Videos

6.5K Views

Chromatografia wykluczająca wielkość do oddzielania pęcherzyków zewnątrzkomórkowych od kondycjonowanych pożywek do hodowli komórkowych

10:46

Chromatografia wykluczająca wielkość do oddzielania pęcherzyków zewnątrzkomórkowych od kondycjonowanych pożywek do hodowli komórkowych

Related Videos

4.8K Views

Izolacja ludzkich wysp trzustkowych: Część II: Oczyszczanie i hodowla ludzkich wysp trzustkowych

08:35

Izolacja ludzkich wysp trzustkowych: Część II: Oczyszczanie i hodowla ludzkich wysp trzustkowych

Related Videos

16.1K Views

Ekstrakcja DNA z filtrów sterivex 0,22 μM i wirowanie w gradiencie gęstości chlorku cezu

15:14

Ekstrakcja DNA z filtrów sterivex 0,22 μM i wirowanie w gradiencie gęstości chlorku cezu

Related Videos

30.2K Views

Izolacja i oczyszczanie kinezyny z zarodków Drosophila

09:49

Izolacja i oczyszczanie kinezyny z zarodków Drosophila

Related Videos

12.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code