April 3rd, 2026
Tu przedstawiamy standardowy protokół, który łączy wieloetapowe drzewa spektrometrii masowej z procesem fragmentacji opartym na peroralnym płynie Huoxiang Zhengqi.
Opracowano wieloetapowy metodę fragmentacji spektrometrii masowej w celu identyfikacji i charakteryzacji złożonych składników w płynie doustnym Huoxiang Zhengqi. Tradycyjna tandemowa spektrometria masowa nie pozwala na rozdzielcze nieznanych struktur związków. Wieloetapowa spektrometria masowa zapewnia głębszą fragmentację dla kompleksowej identyfikacji strukturalnej.
W przypadku przygotowania ultra-wydajnej chromatografii cieczowej, zacznij od dwukrotnego kliknięcia na oprogramowanie Xcalibur, aby je otworzyć. Kliknij Gotowy do pobrania, a następnie kliknij Sterowanie bezpośrednie. W wyskakującym oknie kliknij kolumnę Moduł Pompy i ustaw procent B na 50, procent C na zero i procent D na zero.
Kliknij przycisk Motor, aby włączyć go. Kliknij więcej opcji, ustaw przepływ na pięć mililitrów na minutę, a czas na 180 sekund w wyskakującym oknie. Kliknij Opróżnij, a następnie kliknij Wykonaj pomimo ostrzeżenia w wyskakującym oknie.
Wróć do głównego okna programu i kliknij Widok ustawienia sekwencji. Kliknij Otwórz, aby zaimportować edytowany szablon. Kliknij prawym przyciskiem myszy nazwę metody i kliknij Otwórz plik, aby otworzyć plik metody.
W głównym oknie programu ustaw pierwszą masę na 100 stosunek masy do ładunku i ostatnią masę na 1200 stosunek masy do ładunku. Kliknij Zapisz, aby zapisać metodę. Kliknij Uruchom sekwencję, wybierz Gotowy w systemie po sekwencję, a następnie kliknij OK w wyskakującym oknie.
Poczekaj na zakończenie wstrzyknięcia próbki. Kliknij Widok mapy, a następnie kliknij ikonę Przeglądarki Qual, aby otworzyć okno Przeglądarki Qual. Kliknij Otwórz, wybierz plik danych z formatem RAW i kliknij dwukrotnie, aby go otworzyć.
Kliknij prawym przyciskiem myszy na oknie chromatogramu i kliknij Zakresy. W sekcji filtra skanowania wybierz ESI full MS. A w sekcji typu wykresu wybierz TIC, a następnie kliknij OK. Obserwuj wyświetlany chromatogram całkowitego jonu.
Kliknij przycisk Załącznik w oknie spektrum masy. W oknie chromatogramu kliknij i przesuń, aby wybrać region czasu z najsilniejszą relacją obfitości. Obserwuj odpowiadające jony spektrum masy i zapisz wartości stosunku masy do ładunku.
Otwórz okno ustawień instrumentu. Znajdź kolumnę masy macierzystej wiersza N równego dwóm i wprowadź wcześniej zapisaną wartość stosunku masy do ładunku. Kliknij Zapisz, aby zapisać metodę.
Wróć do widoku ustawienia sekwencji w oknie programu, zmodyfikuj nazwę pliku i kliknij Zapisz, aby zapisać sekwencję. Kliknij Uruchom sekwencję, a następnie kliknij OK w wyskakującym oknie. Poczekaj na zakończenie wstrzyknięcia próbki.
Przejdź do okna Przeglądarki Qual, kliknij Otwórz, wybierz plik danych RAW i kliknij dwukrotnie, aby go otworzyć. Kliknij prawym przyciskiem myszy na oknie chromatogramu i kliknij Zakresy. W sekcji filtra skanowania wybierz ESI full MS. W sekcji typu wykresu wybierz TIC i kliknij OK, aby wyświetlić chromatogram.
W oknie spektrum masy kliknij przycisk Załącznik. Wybierz region czasu z najsilniejszą relacją obfitości i obserwuj jony spektrum masy. Zapisz wartości stosunku masy do ładunku dla kolejnego poziomu spektrometrii masowej.
W oknie ustawień instrumentu znajdź kolumnę masy macierzystej wiersza N równego trzem i wprowadź wcześniej zapisaną wartość stosunku masy do ładunku. Kliknij Zapisz, aby zapisać metodę. Jak pokazano wcześniej, powtórz procedurę wyświetlania danych, aby ukończyć wstrzyknięcie i analizę próbki.
Po otwarciu pliku danych RAW kliknij przycisk Załącznik w oknie spektrum masy i obserwuj zmieniające się szczyty jonów fragmentów. W oknie ustawień instrumentu przejdź do kolumny Typ aktywacji i kliknij CID. Następnie wybierz PQD lub ETD, aby zmienić tryb zderzeń.
W kolumnie Znormalizowana energia zderzenia kliknij 35 i zmień ją na 50, aby dostosować energię zderzenia. Narysuj jona macierzystego i jony fragmentacji w programie do rysowania, w tym strukturę jona macierzystego, nazwę związku i wartość stosunku masy do ładunku. Na przykład zidentyfikuj fragment o stosunku masy do ładunku 461,15 i sprawdź jona prekursora o stosunku masy do ładunku 623,21 w spektrum tandemowej spektrometrii masowej.
Oblicz różnicę mas. Przeanalizuj dalszą fragmentację jonu pośredniego o stosunku masy do ładunku 461,15. Aby wygenerować jona produktu o stosunku masy do ładunku 315,09 w MS cubed, oblicz różnicę mas na podstawie analiz położenia wiązań i łączy wszystkich fragmentów.
Wywnioskuj końcową strukturę nieznanego związku o stosunku masy do ładunku 623,21. Nieznany związek o stosunku masy do ładunku 623,21 stracił jedną jednostkę heksozy i wytworzył jona fragmentu o stosunku masy do ładunku 461,15. Trzeciostopniowa fragmentacja spektrometrii masowej pośrednika wytworzyła neobyakangelicol o stosunku masy do ładunku 315,09 po utracie jednej jednostki ramnozy.
Czterokrotna spektrometria masy neobyakangelicol wytworzyła jona fragmentu o stosunku masy do ładunku 1
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
This article presents a comprehensive technique for the structural exploration of unknown compounds in Chinese herbal compounds (CHCs), with a focus on Huoxiang Zhengqi oral liquid. The method leverages advanced mass spectrometry, particularly linear ion trap technology, to achieve deeper fragmentation and more detailed molecular characterization than traditional approaches. The developed workflow is applicable to the analysis of bioactive small molecules in traditional Chinese medicine.
Comprehensive structural elucidation of unknown small molecules in complex herbal mixtures is critical for advancing discovery-stage confidence in traditional medicine-derived therapeutics. The use of linear ion trap mass spectrometry enables deeper fragmentation and more detailed molecular characterization, directly supporting target validation and mechanistic de-risking in early R&D. This approach enhances the ability to link bioactive constituents to pharmacological mechanisms, informing portfolio decisions and translational research continuity.
This structural analysis technique fits at the interface of early discovery and lead identification, providing foundational molecular data for subsequent screening and translational studies.