Name: Métodos para Recordings patch-clamp Capacitância da Calyx (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2007-07-29T00:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 58 s
Description: Aprenda técnicas de patch-clamp pré-sináptico na calyx de Held, um terminal nervoso do sistema nervoso central de mamíferos. Este método demonstra preparação de tecido cerebral para estudos de neurofisiologia sináptica.

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Setup Grampo patch: Óptica: A ótica é muito importante encontrar um celular bom, e para estabelecer a posição dele. Tentar obter uma imagem clara das células: bordas afiadas, soft-olhando celular. Digitalizar todo o campo para procurar boas MNTB células principais com cálice em anexo. Prato girar para procurar cálices de diferentes ângulos. Na primeira, ele está OK para a prática do balão em forma de terminal. Escolha de células na superfície da fatia, ou na camada de células 2 ª. Alvo da rd 03/01 primeiro celular com pipeta Identificar cálices: Procure uma membrana dupla (ver figura 1) e gire o prato fatia para vê-lo de ângulos diferentes para ajudar a confirmar que é um cálice. <img src="/files/ftp_upload/old/244_2008_8_22_2/244_Figure-01.png" alt="Figura 1" width="298" height="159" /> Figura 1 Profundidade da Calyx: Calyx deve estar na superfície ou o mais próximo à superfície possível. De superfície disponível para aplicação de patches: Use o foco fino botão no microscópio para determinar como &quot;wide / deep&quot; o cálice é. Por exemplo, ~ 10% de uma volta completa sobre o foco fino lhe dará mais de área de superfície suficiente para corrigir em. Vedação em uma célula pré-sináptica: Para chegar ao celular ligado, procure uma deformação &quot;pequeno&quot; na superfície da célula, devido à pos de pressão (~ 0.15psi) na pipeta, use manipulador para executar pipeta cima, para baixo e em frente, e até mesmo em a superfície do terminal presyn para obter uma deformação bom, em seguida, solte a pressão e sucção, se e quando necessário. PULSE, dados do programa de aquisição: Necessidade de aumentar o tamanho do buffer antes da primeira utilização e, sempre que exigido pela capacidade de amostragem. Necessidade de carregar macros modificado a cada vez. Junção Potencial líquido: Solução de Gravação Presyn é-11mV (11mV negativo). Presyn: Cslow = ~ 15 pF Rs comp para presyn: 10 ms, 65% (mais possível a compensação pode w / out oscilações) Antes de capacitância de gravação: relaxamento Corrente de teste (10 mV, 10 ms salto) para ver se o relaxamento é monoexponencial, ou seja, se presyn prazo pode ser modelado por um único compartimento. Filtros: Situado a 30 kHz e 10 kHz (Bessel filtro 1 e 2, respectivamente) durante a medição de relaxamento, para ter certeza de um componente rápido não é perdido para fora. Durante as gravações mini, Xinsheng usado 10 kHz e 5 kHz. LBV me pediu para usar apenas 1 conjunto de filtro de 30 kHz para ter certeza de que podemos medir tempo de subida de mini. Nomear arquivos: 7 dígitos 000mmxx, onde mm é o mês (ou mês e ano) e xx é o número de células. Linhas de limpeza Solução: Linhas limpas no final do experimento com 20 ml de 0,1 M HCl seguido por 200 ml ddH2O. Soluções externas são reciclados, a velocidade da bomba é 20-30 rpm. (Solução de retornar da câmara de banho flui de volta para o cilindro graduado). Criar três linhas de saída para garantir sucção suficiente. Adição da solução de gravação pré-sináptica: ~ 310 milli Osmolar Solução Presyn precisa ser ~ 310 mOsm para impedir R acesso aumentam durante a experiência. Presyn solução pipeta é diferente de postsyn pipeta solução (Presyn tem ATP e GTP por ex.). TTX-TEA Solução (para isolar Ca correntes): <ul><li> Tentar aplicar após a selagem, ou mesmo o patch, para a célula, como TEA em blocos solução K-canais e despolariza a célula. Isso não é bom para a célula. Pela mesma razão, pode não ser possível a reutilização da fatia após TTX é aplicada. </li><li> Compare a resposta primeiro e último da célula, ou uma fatia para verificar se há algum efeito de despolarização prolongada. </li><li> TTX é utilizada até 1 mM em vez de 0,5 mM de modo que o efeito é mais rápido. Necessidade de esperar menos tempo depois de mudar soluções. </li></ul> Fatias de corte Vibratome configurações: <ul><li> 70Hz vibrações laterais </li><li> Amplitude: 1,0 milímetros </li><li> A velocidade de avanço 0,01-0,02 mm / seg, enquanto corta fatias de cálice, 0,1 espessura de outra forma: 180 M (~ 150M em animais mais velhos) </li></ul> Fatias de incubar a 37 º C por 1 hora (inclui o tempo de corte), ou seja, deixar em banho de 15-20 minutos após o corte. Pipetas: Presyn: 3,5-4,5 mohms num primeiro momento, 3,0-3,5 mohms quando se sentir mais confiante Uso manual extrator para definir as configurações. Use recurso de atraso porque o vidro é grosso (atrasos de 200 ou um trabalho) Vidro tipo: borosilicato, padrão parede, nenhum filamento Diâmetro externo: 2,0 mm Diâmetro interno 1,16 milímetros Comprimento: 7.5 cm

métodos para recordings patch-clamp capacitância da calyx

Methods for Patch Clamp Capacitance Recordings from the Calyx

Demonstramos as técnicas básicas para a gravação pré-sináptica patch-clamp no cálice de Held, um terminal de nervo do sistema nervoso central de mamíferos. Gravações elétrica do terminal pré-sináptico permitem a medição de potenciais de ação, as correntes dos canais de cálcio, fusão das vesículas (exocitose) e absorção da membrana subseqüentes (endocitose). A fusão das vesículas contendo neurotransmissor faz com que a membrana da vesícula para ser adicionado à membrana celular do cálice. Este aumento na quantidade de membrana celular é medida como um aumento na capacitância. A redução subsequente na capacitância indica endocitose, o processo de captação de membrana ou remoção da membrana cálice. Endocitose, é necessário manter a estrutura do cálice e também é necessário para formar vesículas que será preenchido com neurotransmissor para eventos exocitose futuro. Gravações de capacitância no cálice de Held tornaram possível a direta e rapidamente medida liberação vesicular e endocitose subseqüentes em um terminal de mamíferos CNS nervosas. Além disso, a atividade correspondente pós-sinápticos podem ser medidos em simultâneo usando gravações emparelhados. Assim, um quadro completo da atividade pré-sináptica e pós-sináptica elétrica em uma sinapse do sistema nervoso central é viável o uso desta preparação. Aqui, os métodos para a preparação fatia, características morfológicas para a identificação de cálices de Held, patches técnicas básicas de fixação, e exemplos de gravações para medir a capacitância exocitose e endocitose são apresentados.

Métodos para Recordings patch-clamp Capacitância da Calyx

Demonstramos as técnicas básicas para o registro de patch clamp pré-sináptico no cálice de Held, um terminal nervoso do sistema nervoso central de mamíferos. ...

Olá, meu nome é Ken Paradiso. Trabalho para Ling Gang Wu no programa intramural do Instituto Nacional de Transtornos Neurológicos e Acidente Vascular, localizado no NIH no campus de Bethesda. Vou mostrar as técnicas para a gravação pré-sináptica do cálise através do método de patch clamping.Para preparar o tecido cerebral, removemos o cérebro do rato. Colocamos o cérebro nesta solução, que deve estar gelada e com baixo teor de cálcio, e a borbulhamos com carbogênio para garantir o suprimento contínuo de oxigênio ao cérebro. Além disso, a solução precisa permanecer gelada para minimizar a DA, reduzindo ao máximo a quantidade de danos.Então, o cérebro ficaria agora nesta solução. Retiraríamos o cérebro, cortando-o adequadamente para que possa ser colocado sobre o bloco, fixado ao bloco com Sano correlate ou cola instantânea, mas preencheríamos a câmara com uma solução fria com baixo teor de cálcio, borbulharíamos gás na solução, colocaríamos sobre o vibrátomo e então cortaríamos fatias com espessura de 180 a 190 mícrons, com uma frequência da lâmina de 70 hertz e uma velocidade de avanço de 0,01 a 0,02 milímetros por segundo. Isso corresponderia a 10 a 20 mícrons por segundo.Após cad

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Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Este destina-se como uma introdução para o patch clamp de gravação a partir de oócitos Xenopus laevis. Abrange vitelínico remoção da membrana, a formação de um selo gigaohm (gigaseal), ea conversão opcional do patch para a topologia de fora-out.

Gravação de patch-clamp de canais iônicos Expresso em Oócitos Xenopus

Corrente iônica de canais BK é gravado usando técnicas de patch clamp. Canais BK são expressos...

Grampo patch e Técnicas de Perfusão para estudar canais iônicos Expresso em Xenopus Oócitos

Nós fornecemos um protocolo passo a passo para a gravação de célula inteira patch clamp de Cálcio O cálcio Release-Ativado (CRAC) correntes em sangue periférico mononuclear de células derivadas de linfócitos T humanos.

Todo-Cell Gravação de Cálcio O cálcio Release-Ativado (CRAC) Correntes em linfócitos humanos T

Aqui nós descrevemos um protocolo para a preparação de agar-embedded fatias da retina que são adequados para eletrofisiologia e Ca2 + imagem. Este método permite que um estudo de fita do tipo sinapses em microcircuitos da retina usando direto de patch-clamp gravações de um único terminais nervosos pré-sinápticos.

Patch-clamp medidas de capacitância e Ca 2 + Imaging nos terminais nervosos da retina único em Fatias

Este protocolo descreve uma técnica chamada eletrofisiologia de patch clamp de célula inteira, que é um método para estudar propriedades elétricas de neurônios de Mauthner e outras células reticuloespinhais em embriões de peixe-zebra.

Eletrofisiologia de grampo de remendo de células inteiras: um método para estudar as propriedades elétricas dos neurônios

Nós desenvolvemos uma preparação cordão intacto cérebro espinhal para gravar e monitorar a atividade elétrica através de patches gravação braçadeira dos neurônios e outras células Mauthner reticulospinais em embriões de peixe-zebra. Assim, somos capazes de gravar correntes sinápticas excitatórias e inibitórias, a atividade do canal voltagem-dependentes e potenciais de ação dos neurônios-chave em um embrião em desenvolvimento.

Grampo patch Gravações de Embryonic Cells Zebrafish Mauthner

Descrito aqui é um procedimento para a obtenção de longos trechos de gravação atual de um canal iônico com a técnica de patch-clamp anexado à célula. Este método permite observar, em tempo real, o padrão de open-close conformações dos canais que estão na base do sinal biológico. Estes dados informar sobre as propriedades dos canais nas membranas biológicas não perturbadas.

Um canal de gravação de patch-clamp anexado-Cell

Após a exocitose, a membrana plasmática fundida é recuperada por meio de um processo conhecido como endocitose. Esse mecanismo reforma novas vesículas sinápticas para a próxima rodada de liberação. Eventos endocíticos individuais são capturados e analisados por meio do uso de registros de capacitância ligados a células em células cromafins adrenais de camundongos.

Métodos de medidas de capacitância ligado por células em Rato Adrenal Cromafim celular

O presente protocolo descreve um método eficiente para a aquisição dinâmica e em tempo real de correntes de canal de potássio dependentes de voltagem (Kv) em cardiomiócitos H9c2 usando a técnica de patch-clamp de células inteiras.

Registro de Corrente de Potássio Dependente de Voltagem em Cardiomiócitos H9c2 através da Técnica de Patch-Clamp de Células Inteiras

Este é um guia para modificar a forma de micropipetas de vidro. Especificamente, usando calor e pressão de ar do cone é alargado, sem aumentar a abertura da ponta, levando a menor resistência da pipeta. Isto é fundamental para obter gravações de baixo ruído de pequenas células, mas é útil em muitas aplicações.

Pressão polimento Pipetas para Gravação de patch-clamp melhorada

Aprenda técnicas de patch-clamp pré-sináptico na calyx de Held, um terminal nervoso do sistema nervoso central de mamíferos. Este método demonstra preparação de tecido cerebral para estudos de neurofisiologia sináptica.

Métodos para Recordings patch-clamp Capacitância da Calyx

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