7 de agosto de 2013
Nós descrevemos um método analítico para estimar o tempo de vida de glutamato em membranas astrocitários de registros eletrofisiológicos de correntes transportador de glutamato em astrócitos.
O objetivo geral do experimento é estimar o curso temporal da eliminação de glutamato das membranas astrocíticas após sua liberação a partir de sinapses excitatórias. O primeiro passo neste processo é registrar a ocorrência de transporte de glutamato ativado sinapticamente a partir de astrócitos em fatias cerebrais agudas na ausência e na presença de uma concentração sub-saturante do antagonista de amplo espectro de transportadores de glutamato, TBOA. O segundo passo é analisar os registros para isolar as correntes de transportadores de glutamato ativadas sinapticamente de todos os outros componentes da resposta evocada.
Em seguida, a cinética do filtro é estimada analisando as correntes do transportador registradas na presença de TBOA, desconvolvendo o filtro a partir da ocorrência de transporte registrada em condições controladas. Obtém-se a cinética da remoção de glutamato das membranas astrocitárias. Os resultados mostram que, no hipocampo de camundongo, os astrócitos precisam de apenas alguns milissegundos para remover o glutamato liberado sinapticamente do espaço extracelular.
Essa abordagem fornece uma ferramenta sensível para detectar alterações na capacidade de captação de astrócitos em diferentes regiões cerebrais durante condições fisiológicas e patológicas. A principal vantagem desse método em relação a outras técnicas, por exemplo, baseadas na análise de deslocamento de antagonistas de receptores de glutamato de dissociação rápida em indicadores fluorescentes de glutamato ou em simulações computacionais de reação-difusão, é que ele oferece uma alta resolução temporal e uma leitura experimental direta da eliminação de glutamato pelos astrócitos. Este método nos permite compreender a dinâmica espacial e temporal da transmissão sináptica no cérebro.
Isso pode nos ajudar a interpretar alterações fisiopatológicas no glutamato, na difusão e na captação que podem ocorrer em certos distúrbios neurológicos, como a doença de Alzheimer. Inicie este procedimento fazendo cinco cortes em um cérebro de camundongo dissecado com um bisturi. Primeiro, remova os bulbos olfatórios e o córtex frontal.
Em segundo lugar, remova o cerebelo. Em seguida, remova os lobos temporais esquerdo e direito. Depois, separe os dois hemisférios cerebrais com um corte sagital mediano.
Em seguida, cole a superfície lateral de cada seção cerebral à placa-base fria do vibram. O lado dorsal do cérebro deve ficar voltado para a lâmina do Vibram e o lado ventral do cérebro deve estar em contato com o bloco de ágar, afastado da lâmina do vibratomo. Em seguida, fixe a placa-base do vibratomo à câmara de dissecação.
Defina a espessura da fatia como 250 micrômetros e ajuste a largura da lâmina antes do corte. Após a lâmina atravessar o córtex e o hipocampo, use um bisturi para separar o córtex-hipocampo do mesencéfalo. Posteriormente, coloque uma fatia na câmara de submersão a 34 graus Celsius, após manter as fatias a 34 graus Celsius por 30 minutos.
Deixe-os esfriar até a temperatura ambiente por 30 minutos antes de utilizá-los para os registros de eletrofisiologia neste procedimento, transfira uma fatia para a câmara de registro. Inspeccione visualmente a fatia sob iluminação pontual ou I-R-D-I-C. Os astrócitos podem ser identificados pelo seu pequeno corpo celular e núcleo proeminente para estimulação sináptica.
Posicione um eletrodo bipolar de aço inoxidável a cerca de 100 micrômetros de distância do astrócito que você pretende realizar o patch. Realize o patch no astrócito e estabeleça a configuração de célula inteira aplicando uma sucção muito suave. Em seguida, alterne estímulos únicos e pareados a cada 10 a 20 segundos para isolar as porções facilitadas da ocorrência de transporte ativado sinapticamente.
Primeiro, faça a média de pelo menos 20 varreduras obtidas com estimulações pareadas em condições controladas e na presença de 10 micromolar do antagonista de amplo espectro do transportador de glutamato. TBOA, em seguida, faça a média de um número idêntico de varreduras obtidas com estimulações únicas em condições controle e em 10 micromolar de TBOA. Subtraia a trajetória média obtida com estimulações únicas da trajetória média obtida com estimulações pareadas. Este passo permite isolar o STO geométrico e a corrente sustentada de potássio evocada pelo segundo estímulo.
No próximo deslocamento, subtraia do traço médio obtido com estimulações únicas por um intervalo de tempo que corresponde ao intervalo PUL usado para entregar pulsos emparelhados, o tempo deslocado, a resposta média obtida com estimulações únicas da resposta média ao segundo estímulo obtida anteriormente. Este passo isola uma porção facilitada da corrente do transportador evocada pelo segundo estímulo. Na maioria dos casos, este passo remove completamente a corrente de potássio sustentada.
Se este for o caso, o isolamento do FSTC está completo e você pode prosseguir com a análise de desconvolução e obter o curso temporal da remoção de glutamato pelos astrócitos. Em alguns casos, no entanto, uma pequena corrente sustentada de potássio ainda está presente e é necessária uma análise adicional. Meça a amplitude da corrente sustentada de potássio remanescente após a realização.
A análise descrita anteriormente ajusta a amplitude da função monoexponencial à amplitude da corrente residual sustentada de potássio, definindo a amplitude da corrente sustentada de potássio medida como a nesta equação. No entanto, a constante de tempo de ascensão representa o valor médio da ascensão estimado em experimentos separados nos quais uma corrente sustentada de potássio é isolada. Farmacologicamente, utilizando uma concentração saturante elevada de TBOA, subtrai-se então a função monoexponencial resultante da FSTC e da corrente sustentada de potássio.
Para concluir o isolamento do FSTC. Para isolar a ocorrência de transporte ativada por flash. Obtenha em média pelo menos 20 varreduras com o caminho óptico aberto em condições controle e em 10 micromolar de TBOA, em seguida, obtenha em média o mesmo número de varreduras com o caminho óptico fechado em condições controle e em 10 micromolar de TBOA; subtraia a trajetória média obtida com o caminho óptico bloqueado da trajetória média obtida com o caminho óptico aberto.
Este passo permite remover o artefato do estímulo e isolar os FTCs. Neste passo, ajuste a corrente de transporte, seja FSTC ou FTC registrada em condições controle e em 10 micromolar de TBOA, utilizando uma função multiexponencial. Crie uma função que aumente instantaneamente e decaia monoexponencialmente de acordo com essa função e que melhor descreva a fase de decaimento da corrente do transportador registrada em 10 micromolar de TBOA. Em seguida, desdobre a função monoexponencial do ajuste da corrente do transportador registrada em 10 micromolar de TBOA para derivar o filtro. Depois, desdobre o filtro do ajuste da corrente do transportador em condições controle.
Para obter uma estimativa quantitativa do curso temporal geral da eliminação de glutamato, calcule o OID da forma de onda enquanto realiza este procedimento. É importante confirmar que as ocorrências de transporte são registradas sob condições experimentais nas quais o filtro opera em um regime linear e introduz apenas distorções lineares do transporte. A forma da corrente a partir destes pode ser verificada mediante manipulações que alteram o tamanho da corrente de transporte.
Não altere seu curso de carimbo. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como usar gravações astrocíticas para extrair informações sobre glutamato, difusão e captação no cérebro.
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Este estudo apresenta um método analítico para estimar a meia-vida do glutamato nas membranas astrocitárias utilizando gravações eletrofisiológicas. O foco está em compreender a eliminação do glutamato pelos astrócitos após a liberação sináptica.
Este método permite a medição direta, com alta resolução temporal, da cinética da eliminação de glutamato a partir das membranas astrocitárias, fornecendo uma leitura quantitativa da função dos transportadores em tecido nativo. Ao isolar o curso temporal da remoção de glutamato, independente da cinética dos receptores ou artefatos de difusão, oferece uma ferramenta mecanicista de redução de riscos para a validação de alvos em modelos de doenças neurodegenerativas. A abordagem proporciona confiança preditiva na avaliação da capacidade de captação astrocitária como biomarcador ou alvo terapêutico em condições envolvendo desregulação do glutamato.
O método se insere no continuum de descoberta ao permitir a validação de alvos por meio da avaliação funcional dos transportadores de glutamato, orientar a identificação de compostos líderes por meio da modulação da cinética de captação e apoiar a avaliação pré-clínica da eliminação de glutamato relevante para a doença.