21 de outubro de 2015
Organização celular dos ossos craniofaciais tem sido a hipótese, mas nunca diretamente visualizado. Rotulagem célula multi-espectral e in vivo ao vivo imaging permite a visualização do comportamento das células dinâmica no peixe-zebra maxilar inferior. Aqui, nós detalhe o protocolo para manipular Zebrabow peixes transgénicos e observar diretamente intercalação celular e alterações morfológicas de condrócitos na cartilagem de Meckel.
O objetivo geral do experimento a seguir é visualizar a intercalação e extensão de condrócitos por meio da análise clonal de células zebra bow. Isso é conseguido gerando uma linhagem SOX10 ERT2 Cre zebra bow M para obter recombinação específica de tecido na cartilagem craniofacial de embriões para análise clonal. Em seguida, os embriões são expostos ao tamoxifeno no estágio de 10 somitos durante três horas, a fim de induzir o processo de recombinação.
Em seguida, os embriões são selecionados pela expressão da atividade CRE e pela expressão intensa de fluorescência vermelha ou RFP, e são montados para a obtenção de imagens da cartilagem craniofacial em C. Os resultados demonstram uma análise celular multiespectral dos condrocitos craniofaciais com base em imagens confocais. A principal vantagem desta técnica em relação a métodos existentes, como coloração em azul de S ou linhagens transgênicas como so e GFP ou SOX e kde, é que o zebra bow nos permite observar e acompanhar especificamente populações celulares clonais envolvidas na formação de um órgão.
Para se preparar para a coleta de embriões no primeiro dia, monte vários pares de machos e fêmeas de sox, 10 ERT dois Cree zebra bow M peixes-zebra transgênicos em tanques de acasalamento divididos entre as 17 e 18 horas do dia seguinte, após verificar sob microscópio óptico que os embriões atingiram a fase de 10 células, utilizando um microscópio fluorescente com filtro RFP. Isole os embriões vermelho-avermelhados e transfira-os para um novo recipiente de Petri com meio E três fresco para induzir a recombinação Cree. Adicione solução de hidroxitamoxifeno a 10 micromolar ao recipiente de Petri e incube os embriões a 28,5 graus Celsius por três horas.
Em seguida, decante a solução de Tamoxifeno para um recipiente de resíduos biológicos e use a solução E3 para lavar os embriões várias vezes após incubá-los durante a noite até o estágio de 28 a 29 hóspedes, transfira os embriões para uma solução de E3 com PTU e devolva-os ao incubador. Para visualizar as estruturas craniofaciais completamente desenvolvidas, selecione embriões com quatro DPF que apresentem um sinal vermelho intenso e expressão de Yellow Cree na retina. Após anestesiar um embrião em Trica, de acordo com o protocolo descrito, transfira-o para uma placa de Petri contendo uma gota de Metilcelulose sobre uma lâmina limpa para microscopia confocal.
Coloque uma gota de Metilcelulose fresca e use uma ponteira de microcarga para montar o embrião posicionado dorsalmente, tomando cuidado para não tocá-lo diretamente com uma lamínula de 25 por 25. Cubra o embrião e use a lamínula para manipular o embrião, se necessário. Para imagens do embrião, utilize uma objetiva seca de 20 x.
Para focar no espécime, pressione o botão L 100 no microscópio e, em seguida, selecione o botão de configuração confocal. Clique em automático e selecione CFP para o canal um, GFP para o canal dois e RFP ou M cherry para o canal três. Em seguida, feche a janela.
Ligue os canais dois e três antes de clicar no botão remover intertravamento. Em seguida, clique em reproduzir para iniciar a varredura. Após ajustar as configurações, capture as imagens desejadas e salve no formato de software confocal, bem como no formato TIF para processamento de imagem por canal.
Para realizar a imagem de CFP, desligue os canais dois e três e ligue o canal um sem alterar a área de foco. Reajuste as configurações de varredura antes de capturar as imagens, salve as imagens conforme descrito acima e realize o processamento de imagem conforme descrito por Pan e colegas, conforme mostrado aqui. A visualização tradicional da cartilagem por coloração com azul de Sian em preparações inteiras tem sido indispensável para observar o desenvolvimento da cartilagem de Meckel e é comumente usada para visualizar a organização celular final, a fim de analisar ainda mais os condrócitos em desenvolvimento ao longo do tempo por meio de rastreamento de linhagem.
O uso de linhagens transgênicas SOX 10 de 10 kDa tem sido empregado para estudar a migração celular e a convergência e extensão em embriões vivos, por meio de imagens em tempo real da linhagem transgênica de peixe-zebra m. Para estudar ainda mais a organização dos condrócitos na estrutura esquelética craniofacial, revela-se o processo de intercalação e alongamento dos condrócitos que media a extensão e o crescimento da cartilagem de Meckel. Esta figura mostra a mandíbula inferior de embriões transgênicos UI peixe-zebra M Sox 10 ERT dois Cree entre 3D PF e cinco dias pós-fertilização.
A mandíbula é melhor visualizada em vista ventral, permitindo uma visão clara da organização celular na cartilagem meles, como mostrado aqui. As cores mantidas e herdadas de forma estável permitem um rastreamento de linhagem fácil e o mapeamento do destino celular das células da crista neural craniana. A única célula azul parece migrar e se integrar com suas células vizinhas, depois se alonga ao longo do eixo anterior-posterior para formar um sítio condral com formato uniforme, mantendo assim a forma global da cartilagem meles à medida que se estende anteriormente.
Essa técnica abre caminho para que pesquisadores na área de desenvolvimento de gatos examinem o condro na formação esquelética de peixe-zebra.
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Este estudo apresenta um protocolo para visualizar a intercalação e extensão de condrócitos na cartilagem craniofacial de peixe-zebra utilizando peixes transgênicos Zebrabow. A técnica permite a observação direta do comportamento dinâmico celular durante a formação de órgãos.
O entendimento da organização dos condrócitos na cartilagem craniofacial fornece subsídios mecanicistas sobre a morfogênese da mandíbula, contribuindo para a validação de alvos terapêuticos em distúrbios craniofaciais. A abordagem de análise clonal Zebrabow permite a visualização direta dos comportamentos celulares responsáveis pela extensão do tecido, reforçando a confiabilidade preditiva em modelos pré-clínicos de desenvolvimento mandibular. Esse valor mecanicista de redução de riscos auxilia na priorização de hipóteses terapêuticas relacionadas ao padrão esquelético e ao crescimento.
O método de análise clonal Zebrabow integra-se aos fluxos de trabalho de descoberta inicial ao fornecer leituras diretas da intercalação e alongamento de condrócitos, auxiliando nas etapas de validação de alvos e identificação de compostos promissores.