-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Open Source High Content Analysis Используя Автоматизированное время жизни флюоресценции визуализ...
Open Source High Content Analysis Используя Автоматизированное время жизни флюоресценции визуализ...
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
Open Source High Content Analysis Utilizing Automated Fluorescence Lifetime Imaging Microscopy

Open Source High Content Analysis Используя Автоматизированное время жизни флюоресценции визуализации микроскопии

Full Text
12,438 Views
09:30 min
January 18, 2017

DOI: 10.3791/55119-v

Frederik Görlitz*1, Douglas J. Kelly*1, Sean C. Warren1, Dominic Alibhai2, Lucien West3, Sunil Kumar1, Yuriy Alexandrov1, Ian Munro1, Edwin Garcia1, James McGinty1, Clifford Talbot1, Remigiusz A. Serwa4, Emmanuelle Thinon4, Vincenzo da Paola3, Edward J. Murray5, Frank Stuhmeier6, Mark A. A. Neil1, Edward W. Tate4, Christopher Dunsby1,7, Paul M. W. French1

1Photonics Group, Department of Physics,Imperial College London, 2Institute for Chemical Biology, Department of Chemistry,Imperial College London, 3MRC Clinical Sciences Centre,Hammersmith Hospital, 4Chemical Biology Section, Department of Chemistry,Imperial College London, 5Retroscreen Virology Ltd, 6Pfizer Global Research and Development,Pfizer Limited, Sandwich, Kent, UK, 7Centre for Histopathology,Imperial College London

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Мы представляем высокое содержание анализа (HCA) инструмент с открытым исходным кодом с использованием автоматизированного пожизненную флуоресцентной томографии (FLIM) для опробования белковых взаимодействий с использованием Forster резонансного переноса энергии (FRET) отсчеты основе. Сбор данных для этого openFLIM-HCA инструмента контролируется программное обеспечение , написанное в μManager и анализ данных осуществляется в FLIMfit.

Общая цель этой процедуры — продемонстрировать, как реализовать флюоресцентную микроскопию с временным стробированием, или FLIM, в автоматизированном рабочем процессе многолуночных планшетов с использованием программного обеспечения с открытым исходным кодом и базовых инструментов. Эта методология может быть применена к считыванию на основе FLIM в серии фиксированных или активных клеток. И это особенно полезно для считывания обработки клеточного сигнала или белковых взаимодействий.

Основные преимущества этого метода заключаются в том, что FLIM обеспечивает надежные количественные показания и может обеспечить фракцию взаимодействия популяции за одно измерение. Применение методов глобального анализа к тысячам ячеек в сотнях полей зрения позволяет нам использовать передачу энергии смолы Фостера, или считывание FRET. И с помощью, например, изменения времени жизни примерно до 20 пикосекунд.

Вместе с Фредериком Горлицем эту процедуру продемонстрируют Сунил Кумар, наш научный сотрудник, и Ян Манро, разработчик программного обеспечения. Начните с запуска микроменеджера и откройте плагин openFLIM-HCA. На вкладке Управление FLIM выберите файл калибровки коробки задержки и откройте файлы калибровки.

Выберите файл калибровки для конкретной комбинации генератора задержки и интересующей частоты лазерного повторения. В меню файлов выберите пункт Установить базовую папку и выберите папку, в которую будут сохраняться данные. После подтверждения того, что все соответствующие параметры были установлены, вручную установите ширину затвора в четыре наносекунды на блоке управления стробированным оптическим усилителем на весь эксперимент.

Чтобы получить данные изображения функции отклика прибора, вручную поместите блок луча в кассету с фильтром перед объективом, чтобы предотвратить утечку лазерного света, и наклоните блок луча так, чтобы свести к минимуму любое отражение обратно в раму микроскопа. На вкладке «Управление световым путем» установите фильтры возбуждения, дихроии и излучения в блоке вращающегося диска таким образом, чтобы можно было визуализировать долю возбуждающего света, рассеянного от вращающегося диска Нипкова, без насыщения системы в течение как минимум 200 миллисекунд времени интеграции камеры. На вкладке Управление FLIM используйте функцию поиска максимальной точки во всем диапазоне задержек, охватываемых программируемым блоком быстрой задержки.

Затем проверьте отображаемую трассировку вывода. И установите время задержки курса таким образом, чтобы полный профиль функции отклика прибора находился в пределах диапазона сканирования окна быстрой задержки. Отрегулируйте плотность нейтрали и параметры времени экспозиции.

А также накопление кадра, чтобы камера не насыщалась яркостью временным стробом и эффективное время интегрирования было не менее 200 миллисекунд. В меню управления FLIM выберите поле быстрой задержки и установите шаг задержки 25 пикосекунд для всего диапазона задержки. Затем выберите «Заполнить задержки» и нажмите «Прикрепить изображение FLIM», чтобы получить изображение функции отклика прибора.

И дождаться, пока приобретение будет завершено. В меню управления световым путем выберите нейтральную плотность и нажмите блокированный, чтобы заблокировать лазер. Откройте меню управления FLIM и выберите поле быстрой задержки, чтобы уменьшить количество шагов задержки за счет увеличения значения в поле приращения.

Затем нажмите «Прикрепить FLIM-изображение», чтобы получить фоновое изображение с камеры. Чтобы получить данные опорного кристалла, перейдите на вкладку управления XYZ и введите скважину H4 в диалоговом окне перехода к скважине. Далее перейдите на вкладку управления световым путем и выберите соответствующие фильтры возбуждения, дихроии и излучения для визуализации флуоресцентного белка M бирюзового цвета с помощью функции поиска максимальной точки во всем диапазоне окна быстрой задержки.

Затем установите соответствующие параметры для получения исходных данных кристалла и соответствующего фонового изображения, как показано выше. Чтобы получить данные FLIM из образца с несколькими луночными планшетами, перейдите в меню настройки последовательного сбора данных HCA. Выберите вкладку «Позиции XYZ» и укажите, какие скважины должны быть визуализированы, а также количество полей обзора, которые должны быть получены для каждой скважины.

Выберите репрезентативное поле зрения, содержащее образец, который необходимо изобразить, и установите оптимальный фильтр нейтральной плотности во время интеграции камеры, чтобы достичь 75% динамического диапазона считывающей камеры. На вкладке «Управление XYZ» выберите «Возврат управления фокусом» в диалоговом окне автофокусировки и вручную сфокусируйте микроскоп на интересующих клетках или структурах. Установите диапазон поиска автоматической фокусировки на 2000 микрометров и нажмите Enter.

Затем нажмите AF now, чтобы запустить процедуру автофокусировки. Значение смещения появится в поле автофокусировки со смещением фокуса. Введите это значение смещения в окно смещения AF и дважды нажмите AF now, чтобы повторить процедуру автофокусировки.

Теперь значения смещения должны быть установлены в ноль, что указывает на правильную работу системы автоматической фокусировки. Затем на вкладке Управление FLIM выберите функцию автоматического стробирования, чтобы обеспечить логарифмическую выборку точек задержки. Задайте для параметра Накапливаемые кадры значение, которое дает желаемое общее время сбора данных.

Затем в диалоговом окне сбора данных FLIM нажмите кнопку «Начать последовательность HCA», чтобы запустить сбор данных с помощью многолуночного планшета FLIM и получить фоновое изображение с камеры, как показано выше. Здесь показан репрезентативный анализ FLIM на ладах с использованием модельной системы ладов, выраженной в коцеллах и многолуночной пластине, с примерами автоматически получаемых изображений времени жизни флуоресценции типичных полей зрения, видимых в каждой лунке. В этом эксперименте отрицательные контрольные лунки имели самое длительное время жизни, а донорские лунки показали самые низкие ладовые конструкции с наименьшей длиной линкера.

В целом, средний срок службы, усредненный по всем полям зрения в каждой скважине, варьировался по многолуночным планшетам. Усреднение профиля затухания интенсивности донорной флуоресценции по всем клеткам, визуализированным в лунке А1, вместе с подгонкой к моноэкспоненциальной модели распада и функцией отклика инструмента, показывает, что модель подгонки верна. Дальнейший анализ среднего времени жизни флуоресценции для каждой колонки многолуночной пластины, полученный из моноэкспоненциальной подгонки по пикселям, демонстрирует уменьшение времени жизни в конструкциях ладов при более короткой длине линкера, моделируя эксперимент с различной эффективностью ладов.

В этом эксперименте данные FLIM анализа действия различных ингибиторов на олигомеризацию белков были подобраны с одной моделью экспоненциального распада. Карта времени службы флуоресцентной пластины иллюстрирует среднее время жизни на скважину, усредненное по восьми полям зрения. Один небольшой набор, визуализирующий четыре поля зрения на лунку, в то время как наш анализ FLIM может быть завершен примерно за два с половиной часа, включая время на получение функции отклика инструмента, данных эталонного кристалла и проведение анализа в FLIM fit.

При выполнении анализа FLIM важно помнить о необходимости получения данных о функции отклика прибора и эталонных кристаллах вместе с их фоновыми изображениями, чтобы у вас была вся информация, необходимая для анализа данных FLIM. Используя наше программное обеспечение с открытым исходным кодом, FLIM fit, также можно вписать эти данные в более сложные модели распада. Например, позволяет определять долю населения ладов.

Наша технология FLIM HCA помогает исследователям в сообществе разработчиков лекарств проводить надежные измерения ладов. Мы надеемся, что в будущем эта технология позволит измерять константы диссоциации в клеточных анализах. Мы надеемся, что этот видеодокумент, а также информация в нашей Wiki помогут другим исследователям создать свои собственные инструменты FLIM HCA и применить их для ладов и других анализов.

Не забывайте, что работа с лазерами может быть опасной, и что при использовании таких приборов всегда следует принимать меры предосторожности, такие как закрытие всех лазерных лучей.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Биофизики выпуск 119 флуоресцентная микроскопия FLIM HCA с открытым исходным кодом лада автоматизированная микроскопия обнаружение наркотиков

Related Videos

Флуоресценции жизни молекулярных роторов в живых клетках

09:45

Флуоресценции жизни молекулярных роторов в живых клетках

Related Videos

25.9K Views

Анализ амилоидных структур в срезе ткани с помощью флуоресцентной пожизненной микроскопии

03:26

Анализ амилоидных структур в срезе ткани с помощью флуоресцентной пожизненной микроскопии

Related Videos

516 Views

Флуоресцентная визуализация агрегации белка PolyQ в нейронах Caenorhabditis elegans

05:36

Флуоресцентная визуализация агрегации белка PolyQ в нейронах Caenorhabditis elegans

Related Videos

512 Views

Workflow для высокого содержания, отдельная клетка количественной флуоресцентных маркеров из Всеобщей микроскоп данных, поддерживаемые ПО с открытым кодом

09:57

Workflow для высокого содержания, отдельная клетка количественной флуоресцентных маркеров из Всеобщей микроскоп данных, поддерживаемые ПО с открытым кодом

Related Videos

13.5K Views

Imaging амилоида тканей витражи с светящиеся конъюгированных Oligothiophenes путем использования гиперспектральных конфокальная микроскопия и флуоресценции жизни изображений

10:04

Imaging амилоида тканей витражи с светящиеся конъюгированных Oligothiophenes путем использования гиперспектральных конфокальная микроскопия и флуоресценции жизни изображений

Related Videos

14K Views

Визуализация внутриклеточных SNARE людьми флуоресценции жизни изображений микроскопия

08:55

Визуализация внутриклеточных SNARE людьми флуоресценции жизни изображений микроскопия

Related Videos

10.1K Views

Автоматизированных слайд сканирование и сегментации в дневно меченых тканей, с использованием системы анализа Widefield высоким содержанием

09:33

Автоматизированных слайд сканирование и сегментации в дневно меченых тканей, с использованием системы анализа Widefield высоким содержанием

Related Videos

8.4K Views

Визуализация живых клеток одноклеточных массивов (LISCA) - универсальный метод количественной оценки клеточной кинетики

10:24

Визуализация живых клеток одноклеточных массивов (LISCA) - универсальный метод количественной оценки клеточной кинетики

Related Videos

4.2K Views

Флуоресцентный пожизненный макротомограф для биомедицинских применений

06:01

Флуоресцентный пожизненный макротомограф для биомедицинских применений

Related Videos

1.1K Views

Одновременная безметочная автофлуоресцентная мультигармоническая микроскопия

09:19

Одновременная безметочная автофлуоресцентная мультигармоническая микроскопия

Related Videos

586 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code