-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Developmental Biology
Биоинжиниринг гуманизированных микроуровней костного мозга в мышах и их визуализация с помощью Li...
Биоинжиниринг гуманизированных микроуровней костного мозга в мышах и их визуализация с помощью Li...
JoVE Journal
Developmental Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Developmental Biology
Bioengineering of Humanized Bone Marrow Microenvironments in Mouse and Their Visualization by Live Imaging

Биоинжиниринг гуманизированных микроуровней костного мозга в мышах и их визуализация с помощью Live Imaging

Full Text
12,203 Views
10:03 min
August 1, 2017

DOI: 10.3791/55914-v

Diana Passaro*1, Ander Abarrategi*1, Katie Foster1, Linda Ariza-McNaughton1, Dominique Bonnet1

1Haematopoietic Stem Cell Laboratory,The Francis Crick Institute

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Представлен метод создания и живого изображения различных гуманизированных нитей костного мозга у мышей. Основываясь на поддерживающей нише, созданной человеческими мезенхимальными клетками, добавление эндотелиальных клеток человека индуцирует образование сосудов человека, в то время как добавление rhBMP-2 индуцирует образование мышино-мышиной химерной зрелой костной ткани.

Общая цель этого метода заключается в имплантации каркасов человеческих клеток мышам для создания гуманизированных ниш костного мозга, а затем в реальном времени наблюдать за поведением человеческих клеток внутри имплантатов. Этот метод поможет ответить на ключевые вопросы в области гемопоэза человека, поскольку позволяет воспроизводить и получать живое изображение с разрешением одной клетки различных компонентов костного мозга. Универсальность этой системы является одним из ее главных преимуществ, так как она позволяет имплантировать различные нишевые компоненты по одному или в комбинации.

Эта методология потенциально может быть применена в других областях исследований, таких как метастазирование опухоли или скрининговые исследования лекарств. Используя соответствующую стерильную технику, начните с разрезания стерилизованной желатиновой губки на 24 кусочка одинакового размера. Восстановите желатиновые каркасы путем погружения в этанол, а затем в PBS.

Затем аккуратно промокните каждый каркас на стерильной ткани, чтобы удалить лишнюю жидкость, и перенесите каркасы в отдельные лунки сверхнизкой прикрепленной 24-луночной пластины. С помощью инсулинового шприца осторожно ввести один раз от 10 до 10 до 10 до 10 до 6 стромальных клеток в 50 микролитров питательной среды в каждый каркас и поместить планшет в инкубатор для клеточных культур. При введении клеток в каркас убедитесь, что из каркаса не происходит утечки.

Через час заполните каждую лунку тремя миллилитрами свежей среды для клеточных культур и верните скаффолды в инкубатор. Через 24 часа введите один раз от 10 до пятого гемопоэтических клеток в каркасы, после чего следует инкубация с дальнейшим добавлением среды, а также 24-часовая инкубация, как показано выше. Для получения рекомбинантного морфогенетического белка кости человека двух скаффолдов-носителей поместите восстановленные каркасы в отдельные лунки 96-луночной пластины с U-образным дном и добавьте пять микролитров рекомбинантного морфогенетического белка кости человека по два к каждому каркасу.

Затем накройте каркасы 20 микролитрами тромбина и 20 микролитрами фибриногена. Для хирургической имплантации биоинженерных скаффолдов сначала побрейте операционную область на спине экспериментальной мыши, а затем используйте ватную палочку, смоченную в разведенном хлоргексидине, чтобы очистить открытую поверхность кожи три раза в каждом направлении. Затем с помощью стерильных щипцов и скальпеля сделайте разрез на коже на расстоянии от 0,5 до 0,7 сантиметра спереди и сзади, и вставьте щипцы под подкожную клетчатку, чтобы сделать карман.

Вставьте скаффолт глубоко в карман, а разрез закройте хирургическим клеем. Дайте имплантированным каркасам развиться в течение восьми-24 недель до экспланта. После внутривенного введения флуоресцентных веществ и усыпления животных необходимо простерилизовать кожу, как показано выше, и сделать продольный разрез кожи на спине животного, рядом с первоначальным местом имплантации.

Осторожно отделите кожу от подкожного кармана, в который был имплантирован каркас, затем с помощью пинцета аккуратно возьмитесь за каркас и осторожно разрежьте остаточную мембрану и ткани, окружающие каркас, чтобы восстановить структуру. Используйте быстродействующий клей, чтобы закрепить строительные леса к чашке Петри размером 35 на 10 миллилитров. Для двух каркасов костного морфогенетического белка, прежде чем заполнить пластину PBS, используйте хирургическую микродрель под микрохирургическим микроскопом для истончения поверхности кости, что позволяет визуализировать флуорофоры и получать изображения с высоким разрешением.

Будьте особенно осторожны в процессе сверления, потому что толщина кости обычно варьируется в зависимости от каркаса, и важно не сломать поверхность. Наполните блюдо ПБС комнатной температуры. Для получения изображений биоинженерных каркасов с помощью 2-фотонной микроскопии поместите каркас на предметный столик конфокального микроскопа и выберите водную иммерсионную линзу с яркостью 20 раз 1,0 NA.

Затем в режиме сбора данных программного обеспечения для обработки изображений выберите поле «Показать ручные инструменты». В меню лазера включите 2-фотонный лазер и дайте лазеру нагреться и стабилизироваться. Когда лазер будет готов, в меню настройки изображения активируйте режим канала и переключайте дорожку для каждого кадра.

В меню светового пути выберите неразсканированный и дальний свет светоделителя MBS 760 plus. Активируйте четыре детектора, не подлежащих сканированию, и установите конфигурацию, как показано на схеме. В меню каналов установите длину волны лазера на 890 нанометров и мощность на 50%Установите мастер-коэффициент усиления на 500–600, цифровое смещение — на ноль, а цифровое усиление — на 15 для каждого канала.

В режиме получения данных задайте соответствующие параметры для получения изображений с высоким разрешением без повреждения тканей и отбеливания флуорофоров. Затем установите зум на единицу для первоначального сканирования изображения. Когда все параметры будут установлены, опустите линзу до тех пор, пока она не коснется солевого раствора, и вручную установите фокусировку линзы, используя лампу в качестве источника света.

Теперь активируйте меню Z-stack и выберите первую последнюю функцию. Установите необходимый интервал между двумя последовательными срезами и выберите Live для отображения сканирования образца в реальном времени, регулируя цифровое усиление и цифровое смещение по мере необходимости для оптимальной экспозиции. Чтобы визуализировать несколько каналов одновременно, выберите функцию разделения.

В меню рабочей области, находясь в режиме реального времени, отсканируйте изображение и отметьте интересующие области, такие как расположение костных полостей. Когда сканирование образца будет завершено, перейдите к первой области интереса и используйте функции «Установить первым» и «Установить последний» в режиме реального времени, чтобы установить верхнюю и нижнюю части 3D-стека Z, окружающих область интереса. Затем установите центральную точку C и нажмите кнопку «Начать эксперимент», чтобы начать получение изображения Z-стека в интересующей области.

Когда сбор данных будет завершен, сохраните изображения в указанной папке и отсканируйте следующую интересующую область. На этих репрезентативных изображениях можно наблюдать общую морфологию различных скаффолдов, полученных от иммунодефицитных мышей NSG через восемь недель после имплантации. Совместное посев с эндотелиальными клетками человека увеличивает васкуляризацию каркаса, в то время как добавление рекомбинантного морфогенетического белка кости человека 2 индуцирует формирование кости.

Эти скаффолды, визуализированные с помощью 2-фотонной микроскопии в реальном времени, показывают наличие кровеносных сосудов в каркасах и долгосрочное приживление гемопоэтических клеток человека в паренхиме каркаса. Скаффолды, засеянные эндотелиальными и мезенхимальными стромальными клетками человека, иллюстрируют участие эндотелиальных клеток человека в формировании сосудов внутри каркаса, что приводит к образованию мышечно-человеческой химериальной сосудистой сети. Формирование костной ткани может быть визуализировано с помощью 2-фотонной микроскопии, а также образование полостей в гуманизированной сосудистой сети в эндостальной ткани, которая очень напоминает эндостальную ткань костного мозга.

Кроме того, в рекомбинантном костном морфогенетическом белке человека с двумя несущими каркасами морфология ткани внутри каркаса напоминает зрелый костный мозг с жировой тканью, что позволяет предположить, что мезенхимальные стромальные клетки человека также вносят свой вклад в формирование жировой ткани. После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее представление обо всех биоинженерах и основных мышиных каркасах. Всегда помните о поддержании аскетической среды и будьте особенно осторожны при обращении с лесами.

Имейте в виду ограничения, связанные с этим методом, такие как химеры тканей человека и мыши. Помните, что после визуализации образцы могут быть использованы для дальнейших исследований, так как скаффолды могут быть переварены, а значит, из них можно извлечь живые клетки.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Биология развития выпуск 126 живое изображение двухфотонная микроскопия костный мозг строма микроокружение очеловеченная ниша человеческие гемопоэтические стволовые клетки лейкоз человека сосудистая сеть эндотелиальные клетки мезенхимальные стромальные клетки BMP2

Related Videos

Биоинженерия правам микрососудистой сети в иммунодефицитных мышей

06:55

Биоинженерия правам микрососудистой сети в иммунодефицитных мышей

Related Videos

12.7K Views

Жить изображений на наркотики Ответы на микроокружение опухоли в мышиных моделях рака молочной железы

08:26

Жить изображений на наркотики Ответы на микроокружение опухоли в мышиных моделях рака молочной железы

Related Videos

25.4K Views

В естественных условиях клоновых Tracking гемопоэтических стволовых и клеток-предшественников оцениваться пятью флуоресцентных белков с помощью конфокальной и многофотонной микроскопии

17:08

В естественных условиях клоновых Tracking гемопоэтических стволовых и клеток-предшественников оцениваться пятью флуоресцентных белков с помощью конфокальной и многофотонной микроскопии

Related Videos

13.6K Views

В Vivo 4-мерном Tracking гемопоэтических стволовых и клеток-предшественников в взрослой мыши свода черепа костного мозга

12:54

В Vivo 4-мерном Tracking гемопоэтических стволовых и клеток-предшественников в взрослой мыши свода черепа костного мозга

Related Videos

14.3K Views

Отслеживание костного мозга мышей моноцитов В Vivo

12:08

Отслеживание костного мозга мышей моноцитов В Vivo

Related Videos

10K Views

Бедро Window камера Модель В Vivo Отслеживание Cell в мышиных костного мозга

08:41

Бедро Window камера Модель В Vivo Отслеживание Cell в мышиных костного мозга

Related Videos

8.6K Views

Сочетая прижизненной флуоресцентной микроскопии (IVFM) с генетической модели для изучения динамики приживления кроветворных клеток костного мозга ниши

11:06

Сочетая прижизненной флуоресцентной микроскопии (IVFM) с генетической модели для изучения динамики приживления кроветворных клеток костного мозга ниши

Related Videos

8.3K Views

В городе Vivo Двухфотонная визуализация мегакариоцитов и проплацелетов в костном мозге черепа мыши

07:58

В городе Vivo Двухфотонная визуализация мегакариоцитов и проплацелетов в костном мозге черепа мыши

Related Videos

4.8K Views

Упрощенные внутрибедренные инъекции с использованием живых мышей позволяют проводить непрерывный анализ костного мозга

06:28

Упрощенные внутрибедренные инъекции с использованием живых мышей позволяют проводить непрерывный анализ костного мозга

Related Videos

3.7K Views

Прижизненная продольная визуализация сосудистой динамики в кальвариальном костном мозге

10:49

Прижизненная продольная визуализация сосудистой динамики в кальвариальном костном мозге

Related Videos

1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code